专利名称：一种驽巴贝斯虫病免疫印迹检测方法及试剂盒制备的制作方法
技术领域：
本发明涉及一种驽巴贝斯虫病免疫印迹检测方法及试剂盒制备方法，特别涉及一 种使用免疫印迹试验检测驽巴贝斯虫病(Babesia caballi)血清抗体的方法及其诊断试剂 盒的制备方法，属于马属动物血液原虫病检测领域。
背景技术：
驽巴贝斯虫病(Babesia caballi)是由驽巴贝斯虫寄生于马属动物的红细胞内所 引起的血液原虫病，临床表现为高热、贫血、黄疸、水肿等症状。最急性病例比较少见，到发 现时病马已死亡或濒死。该病在世界分布广泛，在欧洲，法国、意大利及俄罗斯南部和东部 大部分地区，直至北纬58度地区，都有驽巴贝斯虫病流行的报道。法国南部驽巴贝斯虫病 血清学调查流行率为11. 3%，在南美洲、拉丁美洲、非洲、亚洲都有驽巴贝斯虫病的报道。巴 西驽巴贝斯虫流行高达59. 4%至65.5% ，特立尼达岛也有驽巴贝斯虫病流行的报道。尼 加拉瓜驽巴贝斯虫阳性率为41%，南非驽巴贝斯虫病血清学调查阳性率高达61. 9%，蒙古驽 巴贝斯虫病分布广泛，血清学调查阳性动物达40. 1%。我国驽巴贝斯虫病主要流行于东北、 内蒙古东部及青海等地，在我国有14个省区都曾有该病散发或地方性流行的报道。甘肃、 黑龙江、吉林、新疆也是驽巴贝斯虫病流行地区。马匹耐过驽巴贝斯虫病后，带虫免疫可持续达4年。疫区的马匹由于经常遭受蜱 的叮咬，反复感染，因此一般不发病或只表现轻微症状而耐过，但由外地进入疫区的新马及 新生的幼驹由于没有这种免疫性，容易发病。在没有疫情但有蜱类活动的地区，对外来马匹 要严格进行驽巴贝斯虫病的检疫，防止带虫马进入。由于该病在世界范围内分布广泛，为严重传播性疾病，难以根除，因此各国均把该 病列为重要监测的马病之一，因此病对国际贸易产生重要影响，世界动物卫生组织(OIE)将 该病列为对国际贸易产生重要影响的疾病，我国农业部将其列为二类动物传染病。在国际 贸易中，大多数国家签署的双边检疫协定中，将该病列为法检项目。由于该病感染动物后，常不表现为明显的临床症状，因此很难从症状上诊断。此类 疾病主要是通过实验室检验方法进行确诊。病原鉴定主要通过血液涂片和PCR，实验室检 验方法常采用血清学检测方法，主要有间接荧光抗体试验、补体结合试验、酶联免疫吸附试 验(世界动物卫生组织(OIE).陆生动物诊断和疫苗手册[M]，2008 1-2.)。血液涂片法只 有动物处于急性感染期才是可行的诊断方法，PCR目前虽已建立但仍需发展和完善，且PCR 因受制于病原核酸的提取，其试验的敏感性和特异性还有待提高。间接荧光抗体试验敏感 性不强，且容易受操作者主观因素影响结果判断。补体结合试验现为许多国家推荐的检验 方法，但此法会受到抗补体因素的影响而不能判断样品的实验结果，酶联免疫吸附试验虽 然操作简便，敏感性较强，但易发生交叉反应，出现假阳性结果。探讨研究新的检测方法是 科学技术发展的必由之路，也是疾病检测技术发展的要求。免疫印迹法是根据抗原抗体的特异性结合检测复杂样品中的某种蛋白的方 法。该法是在凝胶电泳和固相免疫测定技术基础上发展起来的一种新的免疫生化技术。由于免疫印迹具有SDS-PAGE的高分辨力和固相免疫测定的高特异性和敏感性，现已成为蛋 白分析的一种常规技术，但多用于鉴定某种蛋白，将其用于疫病检测方面的研究并不多。国内用免疫印迹法检测动物疫病的研究很少，没有关于驽巴贝斯虫病免疫印迹检 测方法的研究报道。
发明内容
本发明人进行了大量的实验工作，终于建立了一种驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断试 剂盒的制备方法。本发明采集健康小型马红细胞体外培养驽巴贝斯虫，经过扩大培养，将获 得的培养物制成免疫印迹诊断抗原，并经实验室感染马匹获得驽巴贝斯虫抗体阳性对照血 清。同时，在获得诊断抗原和阳性对照血清的基础上建立了驽巴贝斯虫病免疫印迹检测方 法。本发明目的是提供一种驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断试剂盒及其制备方法，本发明 目的通过以下技术方案实现
(1)制备虫体培养用红细胞
无菌采集健康马血，离心处理后用VYM’ S缓冲液洗涤、悬浮得到； 离心条件:4°C _8°C，低速，30士5 min ；
(2)建立及扩大驽巴贝斯虫体外培养
无菌采集感染驽巴贝斯虫病马的抗凝血，经离心处理，用3x VYM’ s缓冲液洗涤、悬浮 获得染虫红细胞后，采用HL-I组织培养液培养，当染虫率达到1. 5%- 时即进行分代培养； 之后每当染虫率达到m或以上时即扩大培养；
培养环境为93%N2，2. 0%02, 5%C02 ；一个培养周期为24小时；
(3)制备驽巴贝斯虫病免疫印迹杂交诊断抗原
当步骤(2)培养物的染虫率超过3%时，收集培养物，经离心、洗涤，最后以PI buffer+l%NP40 溶解至清亮，再力口入 LDSsample buffer (4x) 、ample Reducing Agent (10x)，充分混勻。煮沸，迅速冷却，得驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断抗原。(4)制备阳性对照血清通
将25mL用等量10%常规异源马血清磷酸盐缓冲液混合的驽巴贝斯虫红细胞培养物，静 脉注射至脾未切除的小型马体内，3天后用大约10000个蜱(约0. 5克)未饲喂的蜱幼虫，装 在一个布袋中，放置在小型马上。13天后拿走已变成饱满的蛹的蜱，蜱养6天，第6天将蜱 放到实验用小型马匹上8天，两个星期后采集血清，补体结合试验可检测到驽巴贝斯虫抗 体，即获得阳性对照血清。取(1)驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断抗原、(2)辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊 抗马结合物、(3)阳性对照血清、阴性对照血清、(4)底物(peroxide solution+Luminol enhancer solution)、(5)蛋白分子量标准标记物(Marker)、(6)4 -12 % Bis-Tris 胶、(7) 硝酸纤维膜、(8)M0PS SDS Running Buffer (20x)、(9)NuPAGE Antioxidant、(10)转印缓 冲液、(11)磷酸盐缓冲液(pH7. 3)、(12)封闭液、(13)洗液、(14)感光胶片、(15)使用说明 书置纸质盒中，得到驽巴贝斯虫病免疫印迹检测试剂盒。本技术方案的优点和特点是
抗原制备用虫体的染虫率只需超过3 %即可用于免疫印迹诊断用抗原，且抗原制备周期更短，大大缩短了生产试剂盒的周期。本发明的另一个目的是提供一种驽巴贝斯虫病免疫印迹检测方法，本方法是以辣 根过氧化物酶标记的羊抗马二抗结合物、化学发光底物在获得诊断抗原和阳性对照血清的
基础上建立的。本发明目的通过以下技术方案实现
(1)取4-12 % Bis-1Tris胶板，洗涤干净；
(2)以SDSRunning Buffer和NuPAGE Antioxidant为溶剂，采用电泳法分离抗原蛋 白得到含有抗原蛋白的胶板；
(3)用冷藏的转印缓冲液将抗原蛋白转移至纤维膜；
(4)血清与抗原孵育
将转印有抗原蛋白的膜置于封闭液中在摇床上孵育；之后将膜取出再置于以封闭液按 1:100 1:500稀释的血清样品中，振荡感作；
(5)酶结合物孵育
将膜转置于以封闭液按1:5000 1:10000稀释的辣根过氧化物酶标记的羊抗马二抗 结合物，振荡感作；
(6)底物孵育将膜移置于底物中，避光感作；得含底物孵育物的膜；
(7)曝光，显影:
吸干膜上的水，用保鲜膜将膜包好，置暗夹中，红灯下，取感光胶片放在膜上，扣上暗 夹，曝光；在红灯下取出胶片，放入显影机中显影；得显影感光胶片；
(8)结果判断:
当阳性血清对照在25kDa和37kDa间出现一个条带，位置约在33kDa处时，阳性对照 成立；当阴性血清对照无条带出现时，阴性对照成立；这时可进行检测样品的判定当在 25kDa和37kDa间出现一个条带，条带位置与阳性对照相同时，判定为阳性样品；当在25kDa 和37kDa间无条带出现时，判定为阴性样品。所述底物是 peroxide solution+Luminol enhancer solution。为了获得更好的效果，抗原蛋白的工作浓度优选1:1000。本技术方案的优点和特点是 1、试剂用量少、成本低
本发明所用的二抗工作浓度为1:5000 1:10000，二抗的用量少，节省了试剂的消耗， 节约了成本。2、操作更快捷
本发明方法灵敏、快速，且无毒无害、特异性高。3、试验所需的条件低、试验结果易判定和长期保存.
本发明方法所需时间更短，整个试验在4 h内完成。整个试验在常温下即可完成。且 是将反应条带曝光于胶片上，结果易判定且可长期保存，不存在褪色的问题。4、本发明方法不仅能够对驽巴贝斯虫病血清抗体进行检测，更能够对其他血清学 方法如IFA、CFT、ELISA检测为阳性的结果进行确证，特异性比ELISA更强。5、用本发明检测方法检测马群血清，检测结果均未发现假阳性和假阴性的结果。
图驽巴贝斯虫病免疫印迹检测方法的阴性和阳性对照 M:蛋白质分子量标准；1. 1:驽巴贝斯虫阳性对照血清； 1.2:驽巴贝斯虫病阳性对照血清；2.1:驽巴贝斯虫病阴性对照血清； 2.2:驽巴贝斯虫病阴性对照血清。
具体实施例方式为了理解本发明，下面以实施例进一步说明本发明，但并不限制本发明,实施例1 制备驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断试剂盒
配制试剂Ulx VYM' s缓冲液CaCl2. 2H200.016 gKCl0.400 gKH2PO41.415 gMgSO4. 7H200. 154 gNa2HPO40.077 gNaCl7.077 gGlucose20.500 g(MH2O1 L搅拌溶解后，加入Adenine
0.0423 g、Guanosine 0. 0708 g，调 pH 值至 7. 0-7. 2，真 空抽滤(0.22 Mm)，4°C保存备用。
2、HL-I组织培养液
HL-I培养基400 mL
马血清100 mL
Hepes0.238 g
2 mmol L-glutamine500M-L
Antibiotic-antimycotic(IOOx) 1 mL 磁力搅拌5 !^11，调？!1至7.2，真空抽滤(0.22 Mm)，4°C保存备用 3、 PI buffer Tris3. 03 g
去离子水 500mL 磁力搅拌器搅拌lh，调pH 8. 0，加
EDTA (SIGMA)0. 93g
IODAOACETAMIDE(C2H4INO) (SIGMA) 0. 46g 磁力搅拌过夜，力口
TLCK (C14H22C12N2O3S)18.45 mg
制备诊断用抗原 (1)制备虫体培养用红细胞
无菌采集600 mL健康马血至已灭菌的装有玻璃珠的真空三角瓶中，旋转三角瓶直至出现白色凝块。在超净台内，将马血倒入离心管中，4°C 800 xg离心30 min，吸弃血浆层和白 细胞层。用VYM’s缓冲液洗三次，每次尽可能将血浆层和白细胞层吸弃。之后加入2倍体 积的VYM’ s缓冲液，用移液器轻轻悬浮红细胞泥，4°C 800 xg离心30 min。吸弃血浆层和 白细胞层后再加入2倍体积的VYM’ s缓冲液至红细胞泥中，用移液器轻轻悬浮，得虫体培养 用红细胞，置聚丙烯管中，4 °C保存，备用。(2)建立驽巴贝斯虫体外培养
采集感染驽巴贝斯虫病马的抗凝血，4°C 800 xg离心30 min，用移液器吸弃血浆层和 白细胞层。用3x VYM’ s缓冲液洗三次，每次尽可能吸弃上清液和白细胞层，之后4°C 800 xg离心30 min，得染虫红细胞。将1 mLHL-1组织培养液加入至M孔细胞组织培养板内，吸取50μ 染虫红细胞至 细胞孔内，再吸取所得虫体培养用红细胞150 μ 。将细胞组织培养板置37 °C培养箱中培 养，培养环境为93%队，2. 0%02, 5%C02。每天换1次培养液，方法是不搅动细胞层吸弃约ImL培养液，再加入ImL新的 HL-I培养液。将板重新置前述培养箱中继续培养。当染虫率达到1.5%- 时，进行分代培养。方法是将板取出，吸弃ImL培养液， 再加入ImL新的HL-I培养液，用移液器轻轻悬浮培养物，得第一代培养物。在新的细胞孔 内加入600 μ HL-I培养液，并取600 μ 第一代培养物至新的细胞孔内，轻轻混勻。另取 600 μ HL-I培养液加入至旧的细胞孔内。在新、旧细胞孔内各加入100 μ 虫体培养用红 细胞。将板置前述培养箱继续培养至染虫率超过洲。(3)驽巴贝斯虫体外扩大培养
首先将虫体培养扩大至4个细胞孔。方法是在组织细胞培养板中，向新的细胞孔中加 入600 μ HL-I组织培养液，取100 μ 虫体培养用红细胞至新的细胞孔中；从旧的细胞孔 中吸弃约1.2 mL旧培养液，加入约1.2 mL新的培养液至旧的细胞孔内并吸取600 μ 培养 物至新的细胞孔内。置前述培养箱中培养M小时。制备血涂片，进行染虫率检测。当染虫率超过洲时向三角瓶中扩大培养，方法是取灭菌的三角瓶Α，向其中加入 10 mL HL-I组织培养液、1 mL虫体培养用红细胞及3个细胞孔的培养物后，置前述培养箱 中培养M小时；之后，将三角瓶A取出，从中吸弃7 mL-10 mL旧培养液，用新的HL-I组织 培养液补足吸弃的量，继续置前述培养箱中培养M小时。当染虫率超过21时，再次扩大培养，方法是另取2个三角瓶，向其中各加入6 mL 新的培养液及1 mL虫体培养用红细胞；吸弃三角瓶A中的培养液并加入等量的新培养液， 轻轻混勻后，分别吸取7 mL至2个新的三角瓶中，将它们置前述培养箱中培养M小时。按 照此法，当染虫率超过m时即扩大培养，从2个三角瓶至4个再至8个三角瓶。当8个三角瓶中的染虫率超过3%时，染虫红细胞扩大培养完成。收集其中7个三角瓶中的培养物至2个50 mL离心管中，1500 rpm 4°C离心30 min ；吸弃上清液，获得感染有驽巴贝斯虫的红细胞。再置1.5mL离心管中，3000 rpm 4 V 离心2 min;吸弃上清液，取750 PL细胞泥至新的离心管中，加入750 PL双蒸水，涡旋振荡 轻轻混勻，台式离心机14000 rpm离心3 min。吸弃上清液，加入1. 0 mL磷酸盐缓冲液(pH 7.3)，用移液器吹吸轻轻混勻，再14000 rpm离心3 min ；吸弃上清液，加入1. 0 mL双蒸水， 仍用移液器吹吸轻轻混勻，再以14000 rpm离心5 min ；吸弃上清液。加入磷酸盐缓冲液，混勻，14000 rpm离心10 min，重复1次。吸弃上清液，加入200 μ PI buffer+l%NP40，重
新溶解至清亮。取溶解物200 μ 至1支新的离心管中，加入50 μ LDS sample buffer(4x)、25 PLsample Reducing Agent (10x)，充分混勻。煮沸10分钟，迅速放入冰盒中冷却，即得诊 断用抗原，-20°C保存，备用。制备诊断用阳性对照血清
经带虫蜱Boophilus microplus实验室感染小型马获得阳性对照血清 将25mL用等量10%常规异源马血清磷酸盐缓冲液混合的驽巴贝斯虫红细胞培养物，静 脉注射至脾未切除的小型马体内，3天后用大约10000个蜱(约0. 5克)未饲喂的蜱幼虫，装 在一个布袋中，放置在小型马上。13天后拿走已变成饱满的蛹的蜱，蜱养6天，第6天将蜱 放到实验用小型马匹上8天，两个星期后采集血清，补体结合试验检测到驽巴贝斯虫抗体 时，即获得驽巴贝斯虫病免疫印迹杂交诊断阳性对照血清；-20°C保存，备用。取(1)封装诊断用抗原、(2)辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗马结合物；(3) 封装阳性对照血清、阴性对照血清、(4)底物(peroxide solution+Luminol enhancer solution)、(5)蛋白分子量标准标记物(Marker)、(6) 4 -12 % Bis-Tris胶、(7)硝酸纤维 膜、(8) MOPS SDS Running Buffer (20x)、(9) NuPAGE Antioxidant、(10)转印缓冲液、 (11)磷酸盐缓冲液(pH7. 3)、(12)封闭液、(13)洗液、(14)感光胶片、(15)使用说明书置 纸质盒中，冷藏保存。实施例2 驽巴贝斯虫病免疫印迹检测 试剂配制
UlOx电泳缓冲液 Tris121. 1 g
570g 4L
甘氨酸 蒸馏水
2、转印缓冲液
IOx电泳缓冲液 100 mL 甲醇200 mL
蒸馏水700 mL
3、封闭液含0.2% Tween-20U0 %脱脂奶粉的磷酸盐缓冲液
4、洗液含0.2 % Tween-20的磷酸盐缓冲液
取 NuPAGE 4% 12% Bis-Tris 胶板，用 1 χ SDS Running Buffer 洗胶孔三次；将胶 板正面朝前放在Mini-Cell垂直电泳仪核心架内，锁紧。在电泳槽内加入200 mL 1 χ SDS Running Buffer 和 500 μ NuPAGE Antioxidant，混合均勻。下槽内加入 600 mL 1 χ SDS Running Buffer。向胶孔内加入7μ 10μ 蛋白分子量标准标记物(Marker)和实施例1 所得抗原样品，抗原蛋白的工作浓度为1:1000，200V 350mA跑胶1小时，得到含有抗原蛋 白的胶板。 之后将抗原蛋白转移至硝酸纤维膜
先将胶、硝酸纤维膜、转印夹、滤纸、纤维垫用转印缓冲液浸泡，然后在转印夹的黑面 上，依次放上纤维垫、滤纸、胶块、纤维膜、滤纸、纤维垫，压走气泡，扣紧转印夹。将转印夹装在转印槽内，向槽内倒入先前置于冰箱中冷藏的转印缓冲液，将槽放于磁力搅拌器上，150 V 350 mA转印1小时。将转印有抗原蛋白的膜在磷酸盐缓冲液(PBS，pH7.3)中冲洗，然后放在含有封闭 液的容器中，置摇床上孵育1小时。将膜取出剪成若干条，正面朝下，放在装有用封闭液按 1 500稀释好的血清样品的容器中，在振荡器上振荡感作30分钟。结束后用洗液洗3次，每 次5分钟。倒掉洗液，然后加入用封闭液按1:10000稀释的辣根过氧化物酶标记的羊抗马二 抗结合物中，振荡感作30分钟。用洗液洗3次，每次5分钟。倒掉洗液，力口入peroxide solution+Luminol enhancer solution底物，避光感作 5分钟。用吸水纸吸干膜上的水，用保鲜膜将膜包好，将膜正面朝上摆好放在暗夹中置暗 室中，红灯下，取1张感光胶片，放在膜上，扣上暗夹，曝光30s-60秒。在红灯下取出胶片，放入显影机中显影。得显影感光胶片。应用例 结果判定方法
取实施例2所得显影感光胶片，显示阳性血清对照在25kDa和37kDa间出现一个条带， 位置约在33kDa处，与阳性对照相同，判定为阳性样品。
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权利要求
1.一种驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断试剂盒，其特征在于包括(1)驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断抗原(2)辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗马结合物(3)阳性对照血清、阴性对照血清(4)底物(5)蛋白分子量标准标记物(6)4 -12 % Bis-Tris胶(7)硝酸纤维膜(8)MOPS SDS Running Buffer(9)NuPAGE Antioxidant(10)转印缓冲液(11)磷酸盐缓冲液(12)封闭液(13)洗液(14)感光胶片(15)使用说明书所述底物是 peroxide solution+Luminol enhancer solution) 根据权利要求1所述一种驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断试剂盒，其特征在于试剂盒中的 驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断抗原通过下述方法制备(1)制备虫体培养用红细胞无菌采集健康马血，离心处理后用VYM’ S缓冲液洗涤、悬浮得到； 离心条件:4°C _8°C，低速，30士5 min ；(2)建立及扩大驽巴贝斯虫体外培养无菌采集感染驽巴贝斯虫病马的抗凝血，经离心处理，用3x VYM’ s缓冲液洗涤、悬浮 获得染虫红细胞后，采用HL-I组织培养液培养，当染虫率达到1. 5%- 时即进行分代培养； 之后每当染虫率达到m或以上时即扩大培养；培养环境为93%N2，2. 0%02, 5%C02 ；一个培养周期为24小时；(3)制备驽巴贝斯虫病免疫印迹杂交诊断抗原当步骤(2)培养物的染虫率超过3%时，收集培养物，经离心、洗涤，最后以PI buffer+l%NP40 溶解至清亮，再力口入 LDSsample buffer (4x) 、ample Reducing Agent (10x)，充分混勻；煮沸，迅速冷却，即得驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断抗原。
2.根据权利要求1所述一种驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断试剂盒，其特征在于底物是 peroxide solution+Luminol enhancer solution。
3.根据权利要求1所述一种驽巴贝斯虫病免疫印迹诊断试剂盒，其特征在于试剂盒中 的阳性对照血清通过下述方法制备将25mL用等量10%常规异源马血清磷酸盐缓冲液混合的驽巴贝斯虫红细胞培养物，静 脉注射至脾未切除的小型马体内，3天后用大约10000个蜱(约0. 5克)未饲喂的蜱幼虫，装 在一个布袋中，放置在小型马上。
4.13天后拿走已变成饱满的蛹的蜱，蜱养6天，第6天将蜱放到实验用小型马匹上8天，两个星期后采集血清，补体结合试验可检测到驽巴贝斯虫抗体，即获得阳性对照血清。
5.一种驽巴贝斯虫病血清抗体免疫印迹检测方法，是建立在权利要求1基础之上的血 清抗体免疫印迹检测方法，其特征在于包括步骤(1)取4 12% Bis-Tris胶板，洗涤干净；(2)以SDSRunning Buffer和NuPAGE Antioxidant为溶剂，采用电泳法分离抗原蛋 白得到含有抗原蛋白的胶板；(3)用冷藏的转印缓冲液将抗原蛋白转移至纤维膜；(4)血清与抗原孵育将转印有抗原蛋白的膜置于封闭液中在摇床上孵育；之后将膜取出再置于以封闭液按 1:100 1:500稀释的血清样品中，振荡感作；(5)酶结合物孵育将膜转置于以封闭液按1:5000 1:10000稀释的辣根过氧化物酶标记的羊抗马二抗 结合物，振荡感作；(6)底物孵育将膜移置于底物中，避光感作；得含底物孵育物的膜；(7)曝光，显影:吸干膜上的水，用保鲜膜将膜包好，置暗夹中，红灯下，取感光胶片放在膜上，扣上暗 夹，曝光；在红灯下取出胶片，放入显影机中显影；得显影感光胶片；(8)结果判断:当阳性血清对照在25kDa和37kDa间出现一个条带，位置约在33kDa处时，阳性对照 成立；当阴性血清对照无条带出现时，阴性对照成立；这时可进行检测样品的判定当在 25kDa和37kDa间出现一个条带，条带位置与阳性对照相同时，判定为阳性样品；当在25kDa 和37kDa间无条带出现时，判定为阴性样品。
6.根据权利要求5所述一种驽巴贝斯虫病血清抗体免疫印迹检测方法，其特征在于抗 原蛋白的工作浓度是1:1000。
全文摘要
本发明公开了一种驽巴贝斯虫病免疫印迹检测方法及试剂盒，本发明驽巴贝斯虫病免疫印迹检测方法，是以辣根过氧化物酶标记的羊抗马二抗结合物、化学发光底物在获得诊断抗原和阳性对照血清的基础上建立的；本发明方法试剂用量少成本低、特异性高、灵敏度高操作更快捷且无毒无害，所需条件低、试验结果易判定和长期保存，特异性比ELISA更强，用本发明检测均未发现假阳性和假阴性的结果。
文档编号G01N33/569GK102062776SQ20101059133
公开日2011年5月18日 申请日期2010年12月16日 优先权日2010年12月16日
发明者侯艳梅, 左锋, 柴宏森, 王乃福, 王建华, 王玉玲, 赵林立, 赵祥平 申请人:中华人民共和国天津出入境检验检疫局