利用基因芯片检测小檗碱诱导RMMVECs基因表达谱的方法

文档序号:483751阅读:251来源:国知局
利用基因芯片检测小檗碱诱导RMMVECs基因表达谱的方法
【专利摘要】本发明提供一种利用基因芯片检测小檗碱诱导RMMVECs基因表达谱的方法,包括以下步骤:(1)制备并纯化大鼠心肌膜微血管内皮细胞RMMVECs;(2)培养二代RMMVECs,将小檗碱溶解于维持培养基中,浓度为10μg/ml,在37℃、5%CO2的条件下,将RMMVECs继续培养9h;等九步步骤;本发明成功培养了RMMVECs,并且利用基因芯片技术从基因表达水平充分验证了,提高微血管舒缩活动振幅的中药有效成分Ast和Ber能双向调节RMMVECs相关细胞因子的表达,维持细胞因子分泌的平衡,维持MVECs的正常生理功能,从而阻断了致病因子对微血管内皮细胞的伤害,发挥治疗疾病的作用。
【专利说明】
【技术领域】
[0001] 本发明涉及基因工程【技术领域】,尤其是涉及一种利用基因芯片检测小檗碱诱导 RMMVECs基因表达谱的方法。 利用基因芯片检测小檗碱诱导RMMVECs基因表达谱的方法

【背景技术】
[0002] 基因芯片(gene chip)又称为DNA阵列,为生物芯片的一种,是指将大量DNA或寡 核苷酸探针密集排列形成的探针阵列。基因芯片的技术原理是DNA的碱基配对和互补,基 础是杂交测序(SBH)。基因芯片采用光导原位合成或微量点样的方法,将寡核苷酸或cDNA 有序地固化于支持物的表面,与已标记的待测生物样品的cDNA或cRNA杂交,通过激光共 聚焦扫描等特殊设备对杂交信号的强度进行检测分析,从而判断样品中靶分子的数量。从 二十世纪八十年代初SBH概念的提出,到目前的商品化基因芯片在这十几年时间里,芯片 的制作技术不断完善、芯片的概念不断延伸、芯片的应用范围不断拓展,使得生物芯片技术 对二十一世纪生命科学和医学的发展产生无法估量的影响。芯片所带来的巨大学术价值、 社会价值和经济价值引起了多家大公司及多国政府机构的极大兴趣,并投以可观的财力, 这又使芯片技术得以迅速发展。
[0003] 目前基因芯片按功能可以分为表达谱基因芯片和DNA测序芯片两大类;按探针的 长短可分为长探针芯片和短探针芯片。
[0004] 基因芯片是后基因组时代一项重要技术,它的出现为中医药学的现代化提供了一 个很好的切入点,其特点是可以在同一时刻对成千上万个基因的表达情况进行分析,形成 完整的细胞基因表达谱,解决了传统中药药理研究方法周期长、耗时多、产出少的问题。微 血管内皮细胞能够通过其分泌功能发挥信息的传导和调节功能,保证血液与组织液之间、 血液与淋巴液之间以及血液本身的有形成分与血浆之间复杂的生理、生化以及血流动力 学的内环境平衡,同时分泌多种细胞因子和局部激素,参与一系列生理和病理过程。但是 在现今的微血管内皮细胞的相关研究领域中,基因芯片技术的应用还不是很普遍。张斌 等应用基因芯片技术分别检测正常浓度和高浓度D-葡萄糖培养基中培养后内皮细胞的 基因表达谱。结果表明高糖可能通过影响微血管内皮物质代谢、信号转导、细胞膜结构和 细胞外基质等的表达而导致血管内皮功能素乱,为进一步研究1?糖对微血管内皮细胞基 因表达谱的影响提供资料。ΥμΕ Fei等采用基因芯片技术研究了碱性成纤维细胞生长因 子(basic fibroblast growth factor, bFGF)对小鼠脑微血管内皮细胞(microvascylar endothelial cell, MVEC)株bEnd. 3中血管新生相关基因表达谱的改变,结果提示:bFGF具 有上调促血管新生基因表达,下调抑制血管新生基因表达的作用,两者协同作用,促进血管 新生。


【发明内容】

[0005] 本发明解决的一个技术问题就是通过对小檗碱诱导体外培养的RMMVECs产生的 差异性基因表达谱的分析,来探讨提高微血管舒缩活动振幅的分子机制,从基因表达水平 充分验证了,提高微血管舒缩活动振幅的中药有效成分Ber能双向调节RMMVECs相关细胞 因子的表达,维持细胞因子分泌的平衡,维持MVECs的正常生理功能,从而阻断了致病因子 对微血管内皮细胞的伤害,发挥治疗疾病的作用。
[0006] 为了解决上述问题,本发明提供一种利用基因芯片检测小檗碱诱导RMMVECs基因 表达谱的方法,包括以下步骤:
[0007] (1)制备并纯化大鼠心肌膜微血管内皮细胞RMMVECs ;
[0008] (2)培养二代RMMVECs,将小檗碱溶解于维持培养基中,浓度为10 μ g/ml,在37°C、 5% C02的条件下,将RMMVECs继续培养9h ;
[0009] (3)将RMMVECs充分裂解,提取总RNA ;
[0010] (4)纯化、定量总RNA ;
[0011] ⑶反转录合成 First-strand cDNA ;
[0012] (6)合成 Second-strand cDNA ;
[0013] (7)体外转录合成cRNA ;
[0014] (8)cRNA 反转录;
[0015] (9)荧光标记后进行基因芯片杂交,最后进行数据分析。
[0016] 所述方法,步骤(1)中采用差速贴壁法对所制备的RMMVECs进行纯化。
[0017] 所述方法,步骤(3)中充分裂解的方法为:将RMMVECs用37°C预热的PBS清洗3 遍,加入2ml Trizol溶液,静置5min,用移液枪吹打,使RMMVECs充分裂解,转入离心管, 于-80°C冰箱保存待用;
[0018] 提取总RNA的方法为:将于-80°c冰箱保存的溶于Trizol液中的细胞样品解冻, UOOOrpnufC离心5min,弃沉淀,将上清转入一新的离心管内;按Trizol :氯仿为5 :1的体 积量加入氯仿,剧烈振荡混勻至粉牛奶状,室温静置3min,12000rpm,4°C离心15min,取上 清至一新离心管,加入等体积异丙醇,混勻,室温静置5min,12000rpm,4°C离心15min,可见 白色RNA沉淀;弃去上清,缓慢地沿管壁加入75%乙醇lml,使沉淀悬浮于乙醇中,7500rpm, 4°C离心15min ;弃去上清,再加入75%乙醇lml,重复上步;而后吸去所有上清,待残余乙醇 挥发尽后加入50 μ 1 DEPC水溶解RNA沉淀,-20°C冷冻保存。
[0019] 所述方法,步骤(5)中反转录合成First-strand cDNA的方法步骤为:
[0020] E.取总RNA 500ng,调整体积到4μ L ;
[0021] F.加入基因表达谱外参1 μ 1 ;
[0022] G.配制反转录Master Mix,其中 First Strand Β μ ffer Mix4 μ L,First Strand Enzyme Mix 1 μ L,轻轻混勻,短暂离心置于冰上;取配好的5 μ L Master Mix分别转移至含 有总RNA样品的0. 2mL离心管中;
[0023] H.轻轻混匀溶液,瞬时离心后42°C反应2小时;将PCR仪的热盖温度也设置成 42°C,避免溶液蒸到管壁上;反应完后冰浴5分钟。
[0024] 5、根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(6)中合成Second-strand cDNA的方法步骤为:
[0025] D.配制 Second-strand Master Mix,其中 Ν μ clease-free Water 13 μ L, Second-strand Buffer Mix 5 μ L,Second-strand Enzyme Mix 2 μ L,轻轻混勻,短暂离心 后冰浴;取上步反应完毕的样品管中加入配好的20 μ L Second Strand Master Mix ;
[0026] Ε·轻轻混匀,16°C反应 1 小时,65°C lOmin ;
[0027] F.反应结束后将反应物置于冰上继续合成反应,或者迅速冻存于_20°C。
[0028] 6、根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(7)中体外转录合成cRNA 的方法步骤为:
[0029] E. cRNA 合成:配制体外转录 Master Mix,其中 Νμ clease-free Water4 μ L,T7 B μ ffer Mix 20 μ L,T7 Enzyme Mix 6L,轻轻混勻,短暂离心,往上一反应中准备好的样品 管中加入 30 μ L Master Mix ;
[0030] R轻柔混勻,40°C反应16. 5小时;
[0031] G.反应完成后,准备纯化cRNA ;
[0032] Η·纯化、定量 cRNA。
[0033] 所述方法,步骤(8)中cRNA反转录的方法步骤为:
[0034] A.取cRNA纯化产物5 μ g,调整体积到7. 5 μ 1,加入到0. 2ml无核酸酶离心管中, 加入4 μ 1随机引物,混匀,65°C反应5分钟,冰浴5分钟;
[0035] B.配制反转录Master Mix,其中4XCbcScript II Βμ ffer 5μ L,0. 1M DTT 2μ L, CbcScriptll 1.5yL,轻轻混勻,短暂离心;往反应完的样品管中加入8. 5μ1 Master Mix ;
[0036] C.轻轻混匀,25°C反应10分钟,37°C反应1. 5小时;
[0037] D.反应结束后加入 Terminate Sol μ tion 5 μ 1,混勻;
[0038] Β. (5) 65 °C反应10分钟,室温5分钟;
[0039] E.加入 Ne μ tralize Sol μ tion 1 μ 1,混勻,准备纯化;
[0040] F.纯化、定量反转录产物。
[0041] 所述方法,步骤(9)中荧光标记的方法步骤为:
[0042] Ε.将纯化后反转录得到的cDNA真空浓缩到14μ L,60°C,5min,加入4μ L随机引 物,混匀;95 °C反应3分钟,冰浴5分钟;
[0043] F.反应结束后加入1 μ L Cy3 ;
[0044] G.配制 Mix,其中 5 XKlenow Β μ ffer 5 μ L,Klenow Fragment 1· 2 μ L,向上述混 合液中加入6. 2 μ L Mix,混匀,瞬离,37°C反应1. 5小时,70°C反应5分钟,冰浴5分钟,准备 纯化;
[0045] H.纯化、定量标记产物;
[0046] 所述方法,步骤(9)中基因芯片杂交的方法步骤为:
[0047] A.芯片的准备:
[0048] a.水合:已选定的芯片于65°C水浴锅上离水面10cm左右,蒸10-15秒;瞭干10-15 秒,再蒸10-15秒;
[0049] b.紫外交联:设置250 ;
[0050] c.第一遍洗:0· 5% SDS,微波炉加热至42-45°C,摇床lOmin,洗去cy3 ;
[0051] d.第二遍洗:纯水42°C,漂洗去SDS,转入下一个洗片槽;
[0052] e.第三遍洗:纯水42°C,摇床l_2min,将SDS洗去,甩干;
[0053] B.样品的准备:
[0054] a.将cy3/cy5分别浓缩至19. 2 μ L左右,在cy3 (cy5)中加杂交液41. 6 μ L,再将 cy5(cy3)吸至cy3(cy5)中,混勻,震荡,瞬离;
[0055] b.其中杂交液配制:甲酰胺 20yL,20*SSC 12yL,10*SDS 1.6yL,50*Dehart 8 μ L ;
[0056] c. 95°C,3min,期间剪1 X4cm滤纸,放入芯片盒中,加100-180 μ L蒸馈水,准备洗 液 l:600mL,洗液 2:1L ;
[0057] cL取出PCR管,骤冷,放入架子上,准备上样;
[0058] e.用吸耳球吹吹芯片,加样时靠左点成1.5cm左右的直线,然后用枪头辅助将盖 玻片盖上;
[0059] f.用枪头调整一下盖玻片的整齐程度,放入芯片盒,放入杂交仪,配平,放一水瓶 保湿;设置:42°C,23小时,6转,开始Hyb杂交,杂交23小时;
[0060] C.杂交结束准备读片:杂交后洗片,扫描仪预热lOmin,选择小块区域:power-80, PMT-800,先扫红通道,再扫绿通道,保证饱和点(白点数)小于千分之5,扫描完成后,保存。
[0061] 所述方法,步骤(9)中数据分析的方法步骤为:用Lμ xScan 3. 0软件将扫描图像 转化为信号值;根据探针信号值的P值确定基因表达(P值< 〇. 05)、临界表达(0. 05 < P 值< 0. 065)和不表达(P值> 0. 065);分别对6张芯片的信号值做归一化处理后,将6组 分别与空白组比较,判别某一基因是否发生表达变化:当信号比值> 2时,视为基因表达上 调;当信号比值< 〇. 5时,视为基因表达下调;当比值介于两者之间时,视为基因未发生有 生物学意义的表达变化;最后用Microsoft Excel、S μ Μ和C1 μ ster等软件对各组数据进 行统计和聚类分析。
[0062] 1(^8/!^的六8七和861'分别作用冊1^〇8 911后基因芯片结果显示,各组与空白对 照组相比,差异表达基因数量如下:Ast组共2231个,其中上调2166个,下调65个;Ber组 共576个,其中上调513个,下调63个。结合pathway分析结果表明,Ast和Ber组中大多 数通路上有功能相近、差异表达却相反的成对基因,说明两者能双向调节RMMVECs相关细 胞因子的表达。Ast和Ber组共同发生差异性表达的基因共47个,参与22个信号通路,包 括肌动蛋白细胞骨架调节、钙信号通路、Notch蛋白介导的信号通路、紧密连接、粘着连接等 信号通路,涉及血管容量调节、N0合酶生物合成的调节,内皮细胞分化,细胞生长和维持,平 滑肌细胞的调节,蛋白质代谢与修饰,糖代谢,DNA复制等功能。
[0063] 本发明成功培养了 RMMVECs,并且利用基因芯片技术从基因表达水平充分验证了, 提高微血管舒缩活动振幅的中药有效成分Ast和Ber能双向调节RMMVECs相关细胞因子的 表达,维持细胞因子分泌的平衡,维持MVECs的正常生理功能,从而阻断了致病因子对微血 管内皮细胞的伤害,发挥治疗疾病的作用。

【专利附图】

【附图说明】
[0064] 图1为RMMVECS正常形态A :倒置显微镜镜下照片(10X4) ;B :爾F-Ag免疫细胞 化学鉴定阳性结果(10X20);
[0065] 图2为甲醛变性电泳的生物质量鉴定,其中:(1-6:对照组RMMVECs, 7-9:Ast处理 组 RMMVECs ; 10-12: Ber 处理组 RMMVECs ;上为 28S,下为 18S);
[0066] 图3RMMVECS的Ast组比对照组组的信号散点图;
[0067] 图4RMMVECS的Ber组比对照组的信号散点图;
[0068] 图5RMMVECs的Ast组比对照组3个生物学重复的聚类图;
[0069] 图6RMMVECS的Ber组比对照组的3个生物学重复的聚类图。

【具体实施方式】
[0070] 下文中将结合附图对本发明的实施例进行详细说明。需要说明的是,在不冲突的 情况下,本申请中的实施例及实施例中的特征可以相互任意组合。
[0071] 1.1主要仪器设备
[0072]

【权利要求】
1. 利用基因芯片检测小檗碱诱导RMMVECs基因表达谱的方法,其特征在于:包括以下 步骤: (1) 制备并纯化大鼠心肌膜微血管内皮细胞RMMVECs ; (2) 培养二代RMMVECs,将小檗碱溶解于维持培养基中,浓度为10μ g/ml,在37°C、5% C02的条件下,将RMMVECs继续培养9h ; (3) 将RMMVECs充分裂解,提取总RNA ; (4) 纯化、定量总RNA ; (5) 反转录合成 First-strand cDNA; (6) 合成 Second-strand cDNA ; (7) 体外转录合成cRNA ; (8) cRNA反转录; (9) 荧光标记后进行基因芯片杂交,最后进行数据分析。
2. 根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(1)中采用差速贴壁法对所制 备的RMMVECs进行纯化。
3. 根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(3)中充分裂解的方法为:将 RMMVECs用37°C预热的PBS清洗3遍,加入2ml Trizol溶液,静置5min,用移液枪吹打,使 RMMVECs充分裂解,转入离心管,于-80°C冰箱保存待用; 提取总RNA的方法为:将于-80 °C冰箱保存的溶于Trizol液中的细胞样品解冻, UOOOrpnufC离心5min,弃沉淀,将上清转入一新的离心管内;按Trizol :氯仿为5 :1的体 积量加入氯仿,剧烈振荡混勻至粉牛奶状,室温静置3min,12000rpm,4°C离心15min,取上 清至一新离心管,加入等体积异丙醇,混勻,室温静置5min,12000rpm,4°C离心15min,可见 白色RNA沉淀;弃去上清,缓慢地沿管壁加入75%乙醇lml,使沉淀悬浮于乙醇中,7500rpm, 4°C离心15min ;弃去上清,再加入75%乙醇lml,重复上步;而后吸去所有上清,待残余乙醇 挥发尽后加入50 μ 1 DEPC水溶解RNA沉淀,-20°C冷冻保存。
4. 根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(5)中反转录合成 First-strand cDNA的方法步骤为: A.取总RNA500ng,调整体积到4 μ L ; Β.加入基因表达谱外参1 μ 1 ; C. 配制反转录 Master Mix,其中 First Strand Buffer Mix4 μ L,First Strand Enzyme Mix 1 μ L,轻轻混勻,短暂离心置于冰上;取配好的5yL Master Mix分别转移至含 有总RNA样品的0. 2mL离心管中; D. 轻轻混匀溶液,瞬时离心后42°C反应2小时;将PCR仪的热盖温度也设置成42°C, 避免溶液蒸到管壁上;反应完后冰浴5分钟。
5. 根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(6)中合成Second-strand cDNA的方法步骤为: A. 配制 Second-strand Master Mix,其中 Νμclease-free Water 13 μ L, Second-strand Buffer Mix 5yL,Second_strand Enzyme Mix 2μ?,轻轻混勻,短暂离心 后冰浴;取上步反应完毕的样品管中加入配好的20 μ L Second Strand Master Mix ; B. 轻轻混匀,16°C反应1小时,65°C lOmin ; C.反应结束后将反应物置于冰上继续合成反应,或者迅速冻存于-20°c。
6. 根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(7)中体外转录合成cRNA的方 法步骤为: A. cRNA合成:配制体外转录Master Mix,其中Nyclease-free Water4yL,T7 Buffer Mix 20 μ L,Τ7 Enzyme Mix 6L,轻轻混勻,短暂离心,往上一反应中准备好的样品管中加入 30 μ L Master Mix ; B. 轻柔混匀,40°C反应16. 5小时; C. 反应完成后,准备纯化cRNA ; D. 纯化、定量cRNA。
7. 根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(8)中cRNA反转录的方法步骤 为: A. 取cRNA纯化产物5 μ g,调整体积到7. 5 μ 1,加入到0. 2ml无核酸酶离心管中,加入 4 μ 1随机引物,混勻,65°C反应5分钟,冰浴5分钟; B. 配制反转录 Master Mix,其中 4XCbcScript II Β μ ffer 5 μ L,0· 1M DTT 2 μ L, CbcScriptll 1.5yL,轻轻混勻,短暂离心;往反应完的样品管中加入8. 5μ1 Master Mix ; C. 轻轻混匀,25°C反应10分钟,37°C反应1. 5小时; D. 反应结束后加入Terminate Solution 5 μ 1,混勻; A. (5) 65°C反应10分钟,室温5分钟; E. 加入 Neutralize Solution 1 μ 1,混勻,准备纯化; F. 纯化、定量反转录产物。
8. 根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(9)中荧光标记的方法步骤为: Α.将纯化后反转录得到的cDNA真空浓缩到14 μ L,60°C,5min,加入4 μ L随机引物,混 匀;95 °C反应3分钟,冰浴5分钟; B. 反应结束后加入1 μ L Cy3 ; C. 配制Mix,其中 5XKlenow Buffer 5uL,Klenow Fragment 1.2uL,向上述混合液 中加入6. 2 μ L Mix,混匀,瞬离,37°C反应1. 5小时,70°C反应5分钟,冰浴5分钟,准备纯 化; D. 纯化、定量标记产物。
9. 根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(9)中基因芯片杂交的方法步 骤为: A. 芯片的准备: a. 水合:已选定的芯片于65°C水浴锅上离水面10cm左右,蒸10-15秒;瞭干10-15秒, 再蒸10-15秒; b. 紫外交联:设置250; c. 第一遍洗:0. 5% SDS,微波炉加热至42-45°C,摇床lOmin,洗去cy3 ; d. 第二遍洗:纯水42°C,漂洗去SDS,转入下一个洗片槽; e. 第三遍洗:纯水42°C,摇床l_2min,将SDS洗去,甩干; B. 样品的准备: a. 将cy3/cy5分别浓缩至19. 2yL左右,在cy3(cy5)中加杂交液41.6yL,再将 cy5(cy3)吸至cy3(cy5)中,混勻,震荡,瞬离; b. 其中杂交液配制:甲酰胺 20yL,20*SSC 12yL,10*SDS L6yL,50*Dehart 8yL; c. 95°C,3min,期间剪lX4cm滤纸,放入芯片盒中,加100-180 μ L蒸馏水,准备洗液 1:60〇11^,洗液2:比; d. 取出PCR管,骤冷,放入架子上,准备上样; e. 用吸耳球吹吹芯片,加样时靠左点成1.5cm左右的直线,然后用枪头辅助将盖玻片 盖上; f. 用枪头调整一下盖玻片的整齐程度,放入芯片盒,放入杂交仪,配平,放一水瓶保湿; 设置:42°C,23小时,6转,开始Hyb杂交,杂交23小时; C.杂交结束准备读片:杂交后洗片,扫描仪预热lOmin,选择小块区域:power-80, PMT-800,先扫红通道,再扫绿通道,保证饱和点(白点数)小于千分之5,扫描完成后,保存。
10.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(9)中数据分析的方法步骤 为:用L μ xScan3. 0软件将扫描图像转化为信号值;根据探针信号值的P值确定基因表达 (P值< 0. 05)、临界表达(0. 05 < P值< 0. 065)和不表达(P值> 0. 065);分别对6张芯片 的信号值做归一化处理后,将6组分别与空白组比较,判别某一基因是否发生表达变化:当 信号比值彡2时,视为基因表达上调;当信号比值< 0. 5时,视为基因表达下调;当比值介 于两者之间时,视为基因未发生有生物学意义的表达变化;最后用Microsoft Excel、Sy Μ 和Cl μ ster等软件对各组数据进行统计和聚类分析。
【文档编号】C12Q1/68GK104087681SQ201410369360
【公开日】2014年10月8日 申请日期:2014年7月30日 优先权日:2014年4月23日
【发明者】董虹, 张涛, 姜代勋, 胡格, 段慧琴, 穆祥, 陈武 申请人:北京农学院
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