一种草鱼出血病病毒抗体elisa检测试剂盒及其制备方法

文档序号:8255457阅读:275来源:国知局
一种草鱼出血病病毒抗体elisa检测试剂盒及其制备方法
【技术领域】
[0001] 本发明设及兽用生物制品技术领域,具体设及一种草鱼出血病病毒抗体化ISA检 测试剂盒及其制备方法。
【背景技术】
[0002] 草鱼是我国淡水养鱼的主要品种,其产量约占淡水养殖总产量的20%。草鱼出血 病是鱼种培育阶段一种流行地区广泛、流行季节长、发病率高、死亡率高、危害性大,是危害 草鱼最为严重的病毒性疾病,造成重大的经济损失。目前,没有治疗草鱼出血病的特效药 物,主要通过疫苗、养殖环境等方面控制草鱼出血病疫情的发生。在评价疫苗效果方面,草 鱼出血病疫苗免疫鱼产生的抗体效价是重要的指标。目前,市场上没有关于检测草鱼出血 病病毒抗体的化ISA试剂盒。
[0003] 本发明主要根据草鱼出血病病毒繁殖和其产生抗体的特征,专口制备了相应检测 抗体的化ISA试剂盒。

【发明内容】

[0004] 为了克服现有技术的不足,本发明的目的在于提供一种草鱼出血病病毒抗体 ELISA检测试剂盒,该试剂盒中ELISA板包被的草鱼出血病病毒纯度高,检测更灵敏;经过 酶解胶原蛋白封闭、戊二醒固定、干燥后有效延长保存期。
[0005] 为解决上述问题,本发明所采用的技术方案如下:
[0006] 一种草鱼出血病病毒抗体化ISA检测试剂盒,其包括鼠抗兔IgG的酶标记物、包被 有草鱼出血病病毒的化ISA板。
[0007] 上述的化ISA检测试剂盒还包括标准血清、洗漆液、TMB底物显色液、终止液。
[000引本发明还提供了上述草鱼出血病病毒抗体的化ISA检测试剂盒的制备方法,其包 括W下几个步骤:
[0009] 1化LISA板包被抗原的制备;采用CIK细胞接种草鱼出血病病毒获得病毒悬浮液; 对病毒悬浮液进行离屯、、超滤浓缩后得到浓缩液,将浓缩液依次经过分子筛层析、阴离子交 换层析、超滤浓缩后获得精纯病毒液;
[0010] 2)包被液的制备:包被液为0. 05mol/L磯酸盐缓冲液,该包被液的抑为9?9. 8 ;
[0011] 3)洗漆液的制备:洗漆液为0. 15mol/L含吐温-20的磯酸盐缓冲液,该洗漆液的 抑为7. 4,吐温-20的体积浓度为0. 05% ;
[0012] 4)封闭液的制备;在上述洗漆液中加入50?500 y g/ml的酶解胶原蛋白,即得封 闭液;
[0013] 5化LISA板的制备;将步骤1)制得的精纯病毒液加入到包被液中进行稀释至浓度 为0.5?10 yg/ml的病毒蛋白稀释液,将病毒蛋白稀释液加入到化ISA板的每孔中,2? 8°C解育过夜;然后使用洗漆液洗漆,接着向化ISA板每孔中加入100 y 1封闭液后置于2? 8°C冰箱中解育过夜;再使用洗漆液洗漆后,加入0. 3ml含有浓度为0. 5?2%的戊二醒的 洗漆液在2?8°C下解育过夜;使用洗漆液洗漆后在37°C下干燥12?2化,干燥后使用膜 封闭化ISA板,37°C保存。
[0014] 具体地,在上述的步骤1)中采用CIK细胞接种草鱼出血病病毒具体包括W下步 骤:
[0015] a、在无菌条件下采用孔径为10?100K的超滤膜对胎牛血清进行超滤,收集滤出 液,得到营养液;较佳的超滤膜孔径为30K ;
[0016] b、采用M199培养基培养CIK细胞,长满单层后加入膜蛋白酶进行消化,然后使用 移液管反复轻轻吹打成单细胞悬浮液,在25°C下按照体积比1:3接种传代培养;
[0017] C、待CIK细胞生长至单层致密后接种0.03M0I的草鱼出血病病毒,加入步骤a所 制得的营养液后25°C下培养4?6天后获得病毒悬浮液。
[0018] 具体地,在上述的步骤1)中所述的离屯、是将病毒悬浮液在4000?6000r/min的 转速下进行离屯、,离屯、时间为20?60min,然后收集上清液。其中,较佳的方案中,离屯、转速 为4500?6000r/min,离屯、时间为30?60min。
[0019] 将上述离屯、步骤后得到的上清液采用孔径为10?300K的超滤膜进行超滤,收集 非滤出液,得到浓缩液。较佳的方案中超滤膜的孔径为10?100K。
[0020] 具体地,在上述的步骤1)中的分子筛层析采用填料为Superdex? 200、填料高度 为20?80cm的层析柱;上样前用PH为7. 2的0. Olmol/L磯酸盐缓冲液平衡层析柱,然后 将体积为填料体积的5?20%的浓缩液上样至层析柱中,使用PH为7. 2的0. Olmol/L磯酸 盐缓冲液进行洗脱,收集第一洗脱峰样品,得到初纯液。
[002U 具体地,在上述的步骤1)中的阴离子交换层析采用填料为Cellufine Sul化te的 层析柱;上样前用PH为7. 2的0. Olmol/L磯酸盐缓冲液平衡层析柱,然后将初纯液上样至 层析柱中,使用0. 5mol/L化C1溶液进行梯度洗脱,收集第二洗脱峰样品,得到精纯液。
[0022] 将经阴离子交换层析得到的精纯液采用孔径为10?300K的超滤膜进行超滤,收 集非滤出液,得到精纯病毒液。较佳的方案中,超滤膜的孔径为10?100K。
[0023] 在上述步骤4)中,封闭液的制备具体包括W下步骤:
[0024] A、在5?lOg明胶中加入200ml用超纯水配制的PBS溶液,完全溶解后进行湿热 高压灭菌,温度为121°C、灭菌时间为20min ;
[0025] B、灭菌结束后自然冷却至常温,加入0.25%膜酶溶液,37°C下消化8-2化;重复该 步骤1-3次后得到膜酶消化液;
[0026] C、使用孔径为100K的超滤膜对膜酶消化液进行超滤,收集滤出液;然后使用孔径 为30K的超滤膜对上述滤出液进行超滤,收集非超滤液,得到酶解胶原蛋白;
[0027] D、将上述酶解胶原蛋白W 50?500 y g/ml的量加入到步骤3)所述洗漆液中,即 得封闭液。
[002引相比现有技术,本发明的有益效果在于:
[0029] 1、本发明通过采用胎牛血清中30KDa W下的小分子营养物质培养、收获草鱼出血 病病毒,然后经过超滤、分子筛层析、阴离子交换层析等步骤纯化,获得纯度非常高的病毒, 其病毒滴度(TCIDw)大于1〇7 5/0. 1ml时,蛋白含量小于100 y g/ml,使得本发明所述的试剂 盒检测草鱼出血病病毒抗体更加灵敏精准;其中,超滤膜超滤是为了去除小于超滤膜孔径 的蛋白质,同时具有浓缩的作用;而分子筛层析去除的是与草鱼出血病病毒在层析过程中 能够很好分离开的蛋白质;而阴离子交换层析去除的是与草鱼呼肠孤病毒带负电荷差异较 大的蛋白质。
[0030] 2、本发明通过对包被有高纯度的草鱼出血病病毒的化ISA板采用分子量为30? lOOKDa酶解胶原蛋白进行封闭、并采用0. 5-2%的戊二醒进行固定、干燥,能够有效延长试 剂盒的保存期,可在37°C下保存2个月。
[0031] 3、本发明所述的试剂盒的制备方法操作简单易行。
[0032] 下面结合附图和【具体实施方式】对本发明作进一步详细说明。
【附图说明】
[0033] 图1为本发明所述的浓缩液经过分子筛层析的分离效果图;
[0034] 图2为本发明所述的初纯液经过阴离子交换层析的分离效果图。
【具体实施方式】
[0035] 一种草鱼出血病病毒抗体化ISA检测试剂盒,其包括鼠抗兔IgG的酶标记物、包被 有草鱼出血病病毒的化ISA板。
[0036] 上述的草鱼出血病病毒抗体化ISA检测试剂盒还包括标准血清、洗漆液、TMB底物 显色液、终止液。
[0037] 上述草鱼出血病病毒抗体的化ISA检测试剂盒的制备方法,其包括W下几个步 骤:
[003引 1化LISA板包被抗原的制备;采用CIK细胞接种草鱼出血病病毒获得病毒悬浮液; 对病毒悬浮液进行离屯、、超滤浓缩后得到浓缩液,将浓缩液依次经过分子筛层析、阴离子交 换层析、超滤浓缩后获得精纯病毒液;
[0039] 2)包被液的制备:包被液为0. 05mol/L磯酸盐缓冲液,该包被液的抑为9?9. 8 ;
[0040] 如洗漆液的制备;洗漆液为0. 15mol/L含吐温-20的磯酸盐缓冲液,该洗漆液的 抑为7. 4,吐温-20的体积浓度为0. 05% ;
[004U 4)封闭液的制备;在上述洗漆液中加入50?500 y g/ml的酶解胶原蛋白,即得封 闭液;
[0042] 5化LISA板的制备;将步骤1)制得的精纯病毒液加入到包被液中进行稀释至浓度 为0.5?10 yg/ml的病毒蛋白稀释液,将病毒蛋白稀释液加入到化ISA板的每孔中,2? 8°C解育过夜;然后使用洗漆液洗漆,接着向化ISA板每孔中加入100 y 1封闭液后置于2? 8°C冰箱中解育过夜;再使用洗漆液洗漆后,加入0. 3ml含有浓度为0. 5?2%的戊二醒的 洗漆液在2?8°C下解育过夜;使用洗漆液洗漆后在37°C下干燥12?2化,干燥后使用膜 封闭化ISA板,37°C保存。
[0043] 具体地,在上述的步骤1)中采用CIK细胞接种草鱼出血病病毒具体包括W下步 骤:
[0044] a、在无菌条件下采用孔径为10?100K的超滤膜对胎牛血清进行超滤,收集滤出 液,得到营养液;较佳的超滤膜孔径为30K ;
[0045] b、采用M199培养基培养CIK细胞,长满单层后加入膜蛋白酶进行消化,然后使用 移液管反复轻轻吹打成单细胞悬浮液,在25°C下按照体积比1:3接种传代培养;
[0046] c、待CIK细胞生长至单层致密后接种0. 03M0I的草鱼出血病病毒,加入步骤a所 制得的营养液后25°C下培养4?6天后获得病毒悬浮液。
[0047] 具体地,在上述的步骤1)中所述的离屯、是将病毒悬浮液在4000?6000r/min的 转速下进行离屯、,离屯、时间为20?60min,然后收集上清液。其中,较佳的方案中,离屯、转速 为4500?6000r/min,离屯、时间为30?60min。
[0048] 将上述离屯、步骤后得到的上清液采用孔径为10?300K的超滤膜进行超滤,收集 非滤出液,得到浓缩液。较佳的方案中超滤膜的孔径为10?100K。
[0049] 具体地,在上述的步骤1)中的分子筛层析采用填料为Su
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