星虫多肽的制备方法及其应用的制作方法

专利名称：：星虫多肽的制备方法及其应用的制作方法
技术领域：
：本发明涉及一种食品生物
技术领域：
中蛋白质多肽制造方法和其应用。
背景技术：
：可口革囊星虫肉味鲜美，因富含蛋白质，可煮汤成冻后食用，深受沿海居民喜爱，多种本草中记载，星虫肉质脆嫩、味道鲜美，富含蛋白质、多种氨基酸、微量元素，有"海滩香肠"的美誉，深受国内外消费者青睐，具有显著的延缓衰老、抗氧化、抗疲劳、耐缺氧、耐高温及促进小鼠乳汁分泌等功效。我国多种药典中记载了其食用和药用价值，有些地区用其代替中药冬虫夏草。据记载,星虫性寒、味甘、咸，具有滋阴降火、清肺补虚活血强身及补肾养颜等功能，可治疗骨蒸潮热、阴虚盗汗、肺虚喘咳、胸闷痰多以及妇女产后乳汁稀少等症，对治疗肺痨咳嗽、神经衰弱、小儿脾虚与肾亏而夜尿频繁等症均有效果。我们前期研究中发现，根据氨基酸分析仪自动分析结果，总共分析了17种氨基酸的组成，各氨基酸总和累计为61%。其中，必需氨基酸占总氨基酸的比例高达30.68%，其中精氨酸占总氨基酸的9.93%。近些年来，在医学与生物领域中对精氨酸做了非常广泛的研究，它在体内起到非常关键的作用，大量研究表明，精氨酸可促进胰腺(胰岛素和胰高血糖素)、垂体前叶(生长激素和催乳素)和胎盘催乳素分泌，从而调节蛋白质、氨基酸、糖和脂肪酸的代谢和孕体发育。精氨酸还可作为过氧化物和羟基自由基有效清除剂，在细胞的氧化还原作用和抗氧化作用中发挥重要作用；精氨酸促进和稳定所有NOS，因而可阻断eN0S和nN0S产生过氧化物，在细胞的氧化还原作用和抗氧化作用中发挥重要作用。又有人研究发现精氨酸通过增加T细胞抗原受体C链，CD3CmRNA的稳定剂，调节CD3S的表达，从而调节T细胞的功能和增殖。在有关临床研究中发现，应用精氨酸可逆转许多血管危险因子8高胆固醇血症、高血压、糖尿病等，引起的内皮细胞功能紊乱，改善常见心血管疾病症状，还能改善生殖、呼吸、肾功能、胃肠道、肝功能及免疫功能，有利于创面愈合；精氨酸具有对创伤性休克也具有保护作用和强化肠内营养及对颅脑外伤患者营养及免疫功能的影响；同时也能安全有效地治疗老年充血性心力衰竭，对治疗冠心病有一定的作用°我们对星虫混合肽中浓度较高的5个多肽进行液相质谱分析，它们的结构分别为Phe隱Asp-Pro-Tyr:Asn、Ala-Pro-Ala-Val-Ala-Thr-Ala-Ala-Phe、His-Thr'-Arg-Asp-Gly-Ser-Asp-Leu-Val-Leu、Arg-Ser-Asp-Val-Asp-Pro-Asp-Val、Lys-Glu-Met-Asp-Asp-Trp-Asn-Thr-Val-Ile。根据国内外相关文献，我们从理论上推断出这些肽可能具有一定的抗氧化作用。一方面我们对水解的混合肽在体外抗氧化模型中，证实具有显著的抗DPPH自由基、羟基自由基和抑制亚油酸自氧化等作用。根据国夕卜相关文献EreshaMendis,etal.AntioxidantPropertiesofaRadical-ScavengingPeptidePurifiedfromEnzymaticallyPreparedFishSkinGelatinHydrolysate[J].J.Agric.FoodChem.2005,53:581-587报道，他们对从鱼皮中提取出来的胶原蛋白用胰蛋白酶进行水解，发现His-Gly-Pro-Leu-Gly-Pro-Leu(797Da)清除自由基作用最强，然后进一步对它进行正常人肝细胞模型中实验，发现该肽链对维持细胞的氧化还原起到显著作用，显著提高了肝细胞中SOD、GSH-PX和CAT酶的表达，他们在体外细胞模型验证了具有提离抗氧化酶的活性，从这篇文章中报道，我们可以推论或许星虫肽被吸收后具有促使体ri抗氧化酶系活性的提高作用。VictorE.Shashoua,etal.Newsyntheticpeptidescanenhancegeneexpressionofkeyantioxidantdefenseenzymesinvitroandinvivo[J].BrainResearch,2004,1024:34~43，他们研究了CMX-8933,Lys-Lys-Glu-Thr-Leu-Gln-Phe-Arg(Mwl048)和CMX-9236,Lys-Lys-Asp-Gly-Asp-Gly-Asp-Phe-Ala-Ile-Asp-Ala-Pro-Glu(Mw1472)两个肽，能使SD大鼠脑皮下层神经元细胞与心肌细胞的中SOD、CAT、GSH-PX酶的表达上调，他们分析可能这两个肽具有激活体内抗氧化酶活性的功能。根据上述文献我可以推断可能可口革囊星虫多肽中可能存在能提高机体抗氧化酶活性的肽，于是我们将制备的星虫多肽在SD大鼠运动模型中在体内进行了验证。实验证明了可口革囊星虫肽具有有效提高机体抗氧化酶活力的功效，于是说明它具有可开发价值的生物肽。
发明内容本发明所要解决的首要技术问题是提供一种具有生物活性、抗氧化作用的星虫多肽的制备方法，通过本方法获得多肽经过生物学功效验证表明，可口革囊星虫多肽是一种新型的具有抗氧化作用的多肽，具有非常高的营养学功效，可以在运动营养学上得到应用，而且根据我们的工艺，容易实现工业化生产。本发明所要解决的另一个技术问题是提供一种星虫多肽的应用。本发明解决上述首要技术问题所采用的技术方案为一种星虫多肽的制备方法，其特征步骤依次为蛋白质提取步骤，对星虫的蛋白质进行提取；蛋白质水解步骤，用蛋白酶对星虫的蛋白质进行水解；分离纯化步骤，用阳离子交换树脂对星虫蛋白水解多肽进行分离纯化，经浓縮干燥后得到具有一定水解程度的星虫多肽。所述的蛋白质提取步骤其方法为以可口革囊星虫作为原料，用0—0.5mol/LNaCl水溶液作为提取溶剂，用水浴锅加温为60-90°C，在自动搅拌器不断搅拌为提取条件。所述的蛋白质水解步骤其方法为以商品化生产的内裂解型水解酶作为星虫蛋白质水解酶，在温度控制为40-6(TC,pH控制为6.5-9.0，不断搅拌条件下进行水解，得到具有水解度(DH)为3-15%左右的多肽。所述的蛋白质水解步骤，蛋白酶的实施方法可以是直接加酶水解法，或者将酶包埋固定后使用，固定化的方法是釆用戊二醛交链后琼脂或褐藻酸钙包埋的方法。所述的分离纯化步骤为水解结束后经过酶灭活，离心除去沉淀物，过滤得到的水解滤液用强阳性阳离子交换树脂进行分离纯化，用0.5-2mol/L的氨水作为洗脱液进行洗脱，得到的星虫水解多肽洗脱液，洗脱液经旋转蒸发脱氨与浓縮后，再经冷冻干燥，获得星虫水解多肽的干粉。'更具体内容为采用原星虫细胞破碎后与0.05mol/LNaCl溶液，按1:6w/v混合后在水浴锅内，温度控制为6(TC下，经过5个小时后，提取蛋白质含量占总蛋白质的45%-65%。另外采用水煮法可提取的蛋白质含量占总蛋白质的39%。采用Protamex⑧蛋白酶，对提取的蛋白质，按酶与底物0.4AU/g进行水解，水解度控制为10%左右。另外，利用琼脂与褐藻酸钙的方法固定Protamex⑧酶，控制相同条件对提取的星虫蛋白质进行水解，水解度也控制为10%左右。采用阳离子交换树脂，对水解的星虫多肽进行纯化，用水冲洗不吸附的物质，然后用2mol/L氨水充分洗脱吸附在树脂上的多肽，然后旋转蒸发浓缩与脱氨，最后冷冻干燥后获得比较纯的星虫多肽，而且无机盐的含量非常少。本发明解决上述另一个技术问题所采用的技术方案为一种星虫多肽的应用，其特征在于在促进机体红细胞数目增加、提高血红蛋白含量上应用；或者是在于在保.持机体心血管系统稳定与保护心血管上应用；或者是在于在增强机体运动能力及防止运动造成的氧化损伤上应用。与现有技术相比，本发明的优点在于提供一种具有抗氧化作用的星虫生物活性多肽的制备方法及生物学功效验证，采用SD大鼠动物运动模型，对制备的星虫多肽在动物运动模型中验证，实验结果表明制备的星虫多肽不仅可以提高血清与肝组织的SOD、GSH-PX等酶活性，稳定血液中NOS酶作用，而且可以提高红细胞数目、血红蛋白含量、红细胞压积等水平，说明可口革囊星虫多肽具有提高机体抗氧化酶活性、抗缺血和提高机体有氧耐力水平等生物学功效，所以，可口革囊星虫多肽是一种新型的具有抗氧化作用的多肽，具有非常高的营养学功效，可以在运动营养学上得到应用，在国内外并没有人做过此类研究，可以根据我们的工艺，可实现工业化生产，方法合理，容易实施。图1为星虫多肽的水解程度示意图;图2为动物运动模型实验流程图。具体实施方式以下结合附图实施例对本发明作进一步详细描述。实施例子1采用NaCl溶液提取星虫蛋白质将冰冻的可口革囊星虫用冰刀切开，然后用自来水清洗干净后，取出星虫内脏与少量可见脂肪，之后用99.5X的乙醇浸泡2h脱脂。用蒸馏水冲洗初步脱脂的星虫，洗去乙醇，用刀将星虫切成碎片，然后用研磨继续将星虫的细胞破碎，最后用超声波超声15min。然后将样品与0.05mol/LNaCl水溶液1:6w/v混合，通常可在l:3~12w/v,在水浴锅中控制提取温度为6(TC，用自动搅拌器不断地搅拌提取。提取反应经5h结束，反应过程中每隔30min检测蛋白质含量变化。反应结束后，提取的蛋白质样品经过离心后得到蛋白质原液上清液。经测定，蛋白质提取效率达到45%至65%。反应原液如果不直接使用，则加入适量的防腐剂，于低温贮存备用。采用水煮法提取星虫蛋白质将新鲜可口革囊星虫用自来水清洗干净后，取出星虫内脏与少量可见脂肪，然后直接加入蒸馏水，煮沸搅拌提取，提取反应经lh结束，反应结束后，提取的蛋白质样品经离心得到蛋白质原液上清液。经测定，蛋白质提取效率达到39%。反应原液如果不直接使用，放置在冰柜中冷冻保存备用。星虫多肽的水解对于上述两个方法得到的蛋白质上清原液，采用Novozymes公司生产的蛋白水解酶Protamex(1.5AU/g)，先将IOOOml星虫蛋白质提取溶液在恒温水浴锅加热至恒温，温度为5(TC，pH调整为7.0左右，然后加入蛋白质水解酶，酶与底物浓度比为0.4AU/g，用恒速搅拌器轻轻搅拌，速度控制为100r/m。水解结束后，水浴锅温度迅速升至9(TC，保持15min使酶灭活，然后冷却过滤，去除变性的蛋白酶沉淀物。经茚三酮法对水解度进行测定，在10卞小时的水解过程中，最后的水解度为10.2%，即多肽链的长度平均为10个氨基酸残迹左'右。采用茚三酮法对蛋白质水解度的测定，计算方法DH-水解肽摩尔数(mol)/总氮含量(mol)xi00%，总氮含量用凯氏定氮法测得。水解曲线见图l固定化酶的制备与星虫蛋白水解为了节省水解酶的用量，我们采用两种方法对蛋白酶进行固定化。1.褐藻酸钙固定化酶制备，50mL，5mg/mLProtamex⑧加入150mL0.026g/mL褐藻酸钠溶液，充分混匀后得到2%褐藻酸钠溶液。将混合的2%褐藻酸钠溶液滴入0.27mol/LCaCl2溶液中，形成球状颗粒，静置30min固化，用蒸馏水洗涤2次，再用0.027mol/LCaCl2保存待用。2.琼脂固定化酶制备方法，4g琼脂加入200mL蒸馏水中加热至沸腾，使琼脂充分溶解；冷却至50。C，加入0.25克酶，充分混匀，放置培养皿中冷却至固化，用刀片将固定化酶切割成小方块，放置冰箱储存。采用琼脂、褐藻酸钙凝胶对蛋白酶包埋后，对水解酶进行固定化包埋处理后，采用戊二醛对酶再进行适度交链，提高固定化酶的活性，提高重复使用次数。在lmg/ml的蛋白酶缓冲溶液中加入0.01%的戊二醛，在25'C下交链2小时，同时用自动搅拌器轻轻搅拌。交链结束后，用蒸馏水反复冲洗，褐藻酸钙固定化酶继续用PH=7.0的Tris-HCl缓冲液中保存，4'C保存待用，琼脂固定化酶用pl^7.0的磷酸缓冲液中，4'C保存待用。以实施例1同样条件进行水解，水解结束后，水解液可以进行多肽回收，而移出的琼脂块或褐藻酸钙固定化酶，可以进行多次的降解。星虫蛋白水解多肽的纯化采用阳离子交换树脂对星虫肽进行初步纯化。先将预处理过的阳离子交换树脂，慢慢地将样品装入035mmx350mm的已经清洗好的阳离子交换柱中，将水解得到的含有多肽的水解液离心过滤后，调节pH值至2，以0.5ml/min速度上样，同时用0.1%丙酮-茚三酮(w/v)溶液作为肽与氨基酸的指示剂检测是否过载。待上样结束后，先用蒸馏洗脱，充分地洗脱不吸附物质，速度控制为5ml/min，同时用0.1%丙酮-茚三酮不断地检测。然后采用2mol/L的氨水充分洗脱，直至检测不到有肽与氨基酸为止。将洗脱的样品用旋转蒸发仪浓縮和脱氨，最后用冷冻干燥机干燥，于-2(TC保存备用。应用实施例1.星虫蛋白与多肽对运动影响的实验模型建立根据FernandaMottaVeigaPimenta等发表的方、法[FernandaMottaVeigaPimenta,etal.Physicalperformanceofexercisingyoungratsfedhydrolysedwheyproteinatasub-optimallevel,InternationalDairyJournal16(2006)98^991]建立类似的实验大鼠实验模型如图2。50个SD大鼠随机分成8组，分别为L生理盐水+安静组(n=6);2.星虫蛋白+安静组(11=6);3.星虫水解肽(低剂量)+安静组(n=6);4.星虫水解肽(高剂量)+安静组；5.生理盐水+运动组(11=6);6.星虫蛋白+运动组(11=6);7.星虫水解肽(低剂量)+运动组(11=7);8.星虫水解肽(高剂量)+运动组(n-7)。采用灌胃的方式给SD大鼠给药，空白对照组灌服等量体积的生理盐水；星虫蛋白质高剂量组(0.26g/kg);星虫水解肽低剂量组(0.09g/kg);星虫水解肽高剂量组(0.26g/kg)。实验前与实验结束前观察老鼠体重的变化，结果表明实验前后SD大鼠体重有明显增加,P0.05，但各组之间并无显著性差异，P>0.05}应用实施例2对应用实施例1中实验结束后的血液常规指标测定将实验结束后所有的SD鼠进行了血液常规指标测定，主要测定了RBC、HGB、MCV、HCT等指标测定(表l)。RBC(红细胞数量)分析结果表明补充星虫肽组的安静组与运动组比补充生理盐水组和星虫原蛋白组红细胞的平均数目略高。HGB(血红蛋白)的数据分析表明在安静组(l-4组)比较发现补充低剂量星虫肽组与补充生理盐水组有显著性差异外，P<0.05，其他各组均无显著性差异，P>0.05。在运动组中(5-8组)，补充低剂量星虫肽组比补充生理盐水组含量要高，P<0.05，其他各组均无显著性差异PX).05。HCT(红细胞压积)数据来看，补充低剂量星虫肽运动组红细胞压积水平最高，为35.3±7.2%，(除与补充高剂量肽运动组外)与其他各组均有显著性差异，P<0.05。MCV(平均红细胞体积)和PCT(血小板压积)的数据分析表明各组并未有明显的差异。综上所述，补充低剂量的星虫肽，可以促进红细胞数目增加，提高血红蛋白含量与红细胞压积水平等作用。表1应用实施例1中实验结束后的血液常规指标测定结果组别RBC(红细HGB(血红蛋MCV(平均红HCT(红细胞PCT血小板胞)xl(^/L白)[g/L]细胞体压积)[%〗压积[%]积)[f/L]组l(n=6)5.68±0.66113±10.452.63±1.6729.9±3.80.326±0.16组2(n=6)5.5士0.70116.3±10.952.4±0.4828.8±3.70.381±0.06组3(n=6)5.84±0.53124±3.752.3±1.7630.5±2.00.395±0.09组4(n=6)5.81±0.69114±10.952.7±1.4930.6士3.60.380±0.12组5(n=6)5.68±0.66109.8±21.851.7±2.0831.3±8.00.326±0.13组6(n=6)5.50±0.70120.2±16.15U±1.0230.1±4.30.384±0.05组7(n=7)5.84士0.35133.7±17.652.1±2.1835.3±7.20.392±0.07组8(n=7)5.8U0.69112.7±11.352.7±U632.4±2.90.405±0.12应用实施例3对实施例1中实验结束后血清SOD、GSH-PX、NOS酶活性测定，结果见表2。SOD酶活性数据。安静各组间比较分析血清SOD悔活性最高的是补充高剂量的星虫肽组，与补充生理盐水、星虫蛋白质组比较具有显著性差异，P<0.05。但其他各组之间并没显著性差异，P>0.05;运动各组间比较分析补充高剂量的星虫肽，血清SOD酶的活性比补充生理盐水、星虫蛋白、低剂量星虫肽组明显要高，P<0.05，而低剂量星虫肽组比生理盐水组、星虫蛋白组明显要好，PO.05;最后对安静组与运动组之间(l-8组)进行分析，发现补充高剂量星虫肽运动组SOD酶的活性比安静组的生理盐水组、星虫蛋白组、低剂量的星虫肽安静组都要强，P<0.05，另外，补充低剂量星虫肽运动组SOD活性比生理盐水、星虫蛋白安静组要强，P<0.05。从GSH-PX酶活性数据表明，在安静组(l-4组)中补充高剂量的星虫肽组与补充星虫蛋白组、生理盐水组GSH-PX具有显著性差异，P<0.05，其他各组均无显著性差异，P>0.05。在运动组(5-8组)中，发现补充高剂量星虫肽运动组比补充生理盐水、星虫蛋白组的GSH-PX的活性要强，P<0.05。在安静组与运动组之间(l-8组)比较发现，补充高低、^j量星虫肽运动组GSH-PX的活性比补充生理盐水、星虫蛋白、低剂量星虫肽的安静组均要强，P<0.05。从血清中的NOS酶的活性数据来看，从整体来看补充星虫肽组NOS的活性要比其他各组要低，从安静组(l-4组)结果分析，补充星虫肽低剂量组NOS活性较其他组要低，P<0.05。其他各组均无显著性差异。从运动组(5-8组)看，补充高、低剂量星虫肽组比补充生理盐水组与蛋白组要低，P<0.05，但补充高、低剂量星虫肽的两组之间不存在显著性差异，P>0.05;补充生理盐水与星虫蛋白质间也无显著性差异，P>0.05。从运动组与安静组之间(l-8组滩比较，安静组的NOS活性从整体上看要比运动组低，补充高、低剂量星虫肽安静组的比补充生理盐水与星虫蛋白质运动组的NOS活性要明显低，P<0.05。根据上述的实验结果，我们认为补充星虫肽可以提高SD鼠的SOD酶、谷胱甘肽过氧化物酶的活性，尤其在运动中提高的水平更为明显；根据NOS酶活性水平，我们可以发现星虫肽可以保持心血管系统稳定与保护心血管等功能。表2应用实施例1中实验结束后血清SOD、GSH-PX、NOS酶活性测定结果<table>tableseeoriginaldocumentpage8</column></row><table>对应用实施例1中实验结束后肝组织SOD、GSH-PX酶活性测定与LPO含量测定，结果见表3。SOD数据分析。安静组比较补充星虫肽的组比补充生理盐水和星虫蛋白质的组要高，但各组之间并不存在显著性差异，P>0.05;运动组比较补充高、低剂量星虫肽组的SOD活性比补充生理盐水组与星虫蛋白组明显要高，P<0.01，从高低剂量两组比较看来，补充高剂量星虫肽组要明显比补充低剂量星虫肽组的SOD活性要高，P<0.05。GSH-PX数据分析。安静组比较补充高剂量的星虫肽与生理盐水组之间GSH-PX的活性具有显著性差异，PO.05;其他各组相比较都没有显著性差异，P>0.05。运动组比较补充高剂量的星虫肽组GSH-PX的活性比其他各组都要高，而且具有显著性差异，PO.Ol。肝组织LPO水平指标反映了组织的脂质过氧化水平，它与体内的抗氧化酶的活性有着直接的联系，体内抗氧化酶系的活性越高，越不容易造成脂质过氧化反应，但一旦抗氧化化酶系打破平衡就会造成脂质过氧化反应。实验数据分析表明，安静各组LPO的水平高低分别是生理盐水组>补充星虫蛋白质组>低剂量星虫肽组>高剂量星虫肽组，补充高剂量星虫肽，要明显低生理盐水组与蛋白组，P<0.05，但其他各组之间不存在显著性差异，P>0.05。运动各组LPO水平高低分别是生理盐水组>星虫蛋白质组>低剂量星虫肽组>高剂曩星虫肽组；生理盐水组与星虫蛋白质组在运动中，造成脂质过氧化反应较为明显。而补充星虫肽组在运动中脂质过氧化物的量明显比其他两组要低，PO.Ol。因此，根据肝组织的各个抗氧化指标的数据说明了补充星虫肽能使SOD、GSH-PX活性增强，降低肝组织中的脂质过氧化反应。表3应用实施例1中实验结束后肝组织SOD、GSP-PX酶活性测定与LPO含量测定结果<table>tableseeoriginaldocumentpage9</column></row><table>权利要求1.一种星虫多肽的制备方法，其特征步骤依次为(1)蛋白质提取步骤，对星虫的蛋白质进行提取；(2)蛋白质水解步骤，用蛋白酶对星虫的蛋白质进行水解；(3)分离纯化步骤，用阳离子交换树脂对星虫蛋白水解多肽进行分离纯化，经浓缩干燥后得到具有一定水解程度的星虫多肽。2、根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于所述的蛋白质提取步骤其方法为以可口革囊星虫作为原料，用0—0.5mol/LNaCl水溶液作为提取溶剂，用水浴锅加温为60-9(TC，在自动搅拌器不断搅拌为提取条件。3、根据权利要求2所述的制备方法，其特征在于所述的蛋白质水解步骤其方法为以商品化生产的内裂解型水解酶作为星虫蛋白质水解酶，在温度控制为40-60'C，pH控制为6.5-9.0，不断搅拌条件下进行水解，得到具有水解度DH为3-15%左右的多肽。4、根据权利要求3所述的制备方法，其特征在于所述的蛋白质水解步骤，蛋白酶的实施方法可以是直接加酶水解法，或者将酶包埋固定后使用，固定化的方法是采用琼脂或褐藻酸钙包埋后戊二醛再度交链的方法。5、根据权利要求4所述的制备方法，其特征在于所述的分离纯化步骤为水解结束后经过酶灭活，离心除去沉淀物，过滤得到的水解滤液用强阳性阳离子交换树脂进行分离纯化，用0.5-2mol/L的氨水作为洗脱液进行洗脱，得到的星虫水解多肽洗脱液，洗脱液经旋转蒸发脱氨与浓縮后，再经冷冻干燥，获得星虫水解多肽的干粉。6、根据权利要求5所述的制备方法，其特征在于所述的蛋白质水解控制水解度为腦。7、根据权利要求6所述的制备方法，其特征在于所述的NaCl水溶液为0.05mol/L，蛋白酶水解用Protamex蛋白酶或者固定化该酶进行水解，洗脱用2mol/L的氨水。8、一种权利要求1星虫多肽的应用，其特征在于在促进机体红细胞数目增加、提高血红蛋白含量和红细胞压积水平上应用。9、一种权利要求l星虫多肽的应用，其特征在于在保持机体心血管系统稳定与保护心血管上应用。10、一种权利要求l星虫多肽的应用，其特征在于在增强机体运动能力及防止运动造成的氧化损伤上应用。11、一种权利要求l星虫多肽的应用，其特征在于在提高机体抗氧化酶活性、抗缺血或提高机体有氧耐力水平方面应用。全文摘要本发明涉及一种新型的海产品加工方法与加工产品应用的
技术领域：
。该发明提供了一种海洋动物星虫的活性多肽制备方法，该方式是将星虫原体或提取的蛋白质进行酶水解，得到的酶水解液经过离子交换层析纯化，浓缩蒸发脱氨，冷冻干燥制备获得。获得的星虫蛋白多肽在动物实验中表现出具有抗氧化，增强运动能力及防止运动造成的氧化损伤。由星虫多肽制备的产品可以在运动营养方面具有应用。文档编号C12P21/02GK101210261SQ20061015567公开日2008年7月2日申请日期2006年12月29日优先权日2006年12月29日发明者严小军,周迎松,尤仲杰,徐善良,徐继林,鹏朱,陈海敏,骆其君申请人:宁波大学