专利名称：基因工程用工具菌及其应用的制作方法
技术领域：
本发明涉及基因工程领域，尤其涉及在分子克隆中可防止重复DNA序列重组的工具菌及其构建和应用。
背景技术：
众所周知，含有同源序列的两个DNA序列之间可以发生交换重组，即同源重组。在基因工程领域，业已开发出多种同源重组技术以及许多工程菌用于各种各样的基因操作。L Red/ET 同源重组Red/ET重组是上个世纪末发明的一种新型的基因工程技术。在Reda/Redi3或 RecE/RecT重组酶系统的相互配合作用下，两端带有短同源臂(35 50bp)的供体DNA分子能直接重组到靶标DNA分子上，实现对受体分子的取代、插入、缺失、突变等多种修饰。Red/ ET重组对靶标DNA快速、精确、高效的修饰，同源臂短，不受内切酶位点和DNA片段大小限制的独特优势，给基因工程领域带来了又一场重大变革。该技术已经在大肠杆菌(E. coli)染色体修饰、基因簇的克隆与修饰、质粒的构建、基因打靶载体的构建等领域得到广泛应用。2.诵i寸Cre-LoxP系统实现的位点特异件重会目来源于Pl噬菌体的Cre重组酶是属于位点特异性重组酶家族中的重要成员，它是一个大小为38KD的蛋白，能介导两个LoxP位点(序列)之间的特异性重组，使LoxP位点间的基因序列被删除或重组[Hamilton DL 等，JMol Biol. 1984，Vol. 178，No. 2，p. 481-6]。 Cre-LoxP重组系统的一个最大优点是对于有效的重组作用不需要任何补充的辅助因子或者序列元件，以及不依赖细胞外环境。3.大肠杆菌.頂109野牛型(WT)菌株该菌株在使用pUC系列质粒载体进行DNA转化或用M13噬菌体载体进行转染时， 由于载体DNA产生的Lac^i多肽和JM09编码的LacZ Δ Ml5进行α -互补，从而显示β -半乳糖苷酶活性，由此很容易鉴别重组体菌株。该菌基因型为recAl，endAl，gyrA96，thi-1, hsdR17,supE44,relAl, Δ (la-proAB)/F’ [traD36,proAB, laclq,IacZ ΔM15]。4.大肠杆菌 HS996、HS996~gyrA96 和 BG2005 菌株大肠杆菌HS996 (Gene Bridges GmbH)在以往的BAC修饰和基因克隆中被用作宿主菌来使用。该菌基因型为F-mcrA. (mrr-hsdRMS-mcrBC) φ801αοΖ.Μ15. lacX74 recAl deoR araD139. (ara-leu) 7697 galU galK rpsL(StrE) endAl nupG fhuA:: IS2 (赋予噬菌体 Tl抗性)。大肠杆菌HS996-gyrA96菌株由于gyrA96基因突变可以产生针对萘啶酸的抗性，所以它是带有萘啶酸抗性被优化了的基因工程用菌。该菌基因型为F-mCrA. (mrr-hsdRMS-mcrBC)lacX74 recAl gryA deoRaraD139. (ara-leu)7697 galU galK rpsL (StrK) endAl nupG fhuA: : IS2 (赋予噬菌体 Tl 抗性)。大肠杆菌BG2005菌株是来源于经优化的HS996菌株，并且在此菌基础上通过将 rdd-alpha和recT两个基因从基因组中缺失，从而被进一步优化了的基因工程用菌。它相对于HS996菌株具有非常明显提高的DNA稳定性的优势特性。该菌基因型为F-mCrA. (mrr-hsdRMS-mcrBC) φ801αοΖ. Μ15. lacX74 recAl deoR araD139. (ara-leu)7697 galU galK rpsL(StrE) endAlnupG fhuA: : IS2 (赋予噬菌体 Tl 抗性)Δ red-alpha Δ recT。5.大肠杆菌Β.Τ5183和DY380菌株大肠杆菌 BJ5183 (源于 Dr. Douglass Hanahan) (Takahashi N 等，Gene. 2003， Vol. 303，p. 89-97)的基因型为:recBC sbcBC endA galk met thi-1 bioThsdR StrE0在大肠杆菌BJ5183中recE和recT两个基因被整合到其基因组中并且产生它们的基因产物，recET蛋白对于DNA双链的修复起作用。另外，大肠杆菌BJ5183还携带一个编码内切酶I的endA基因的突变体，这个突变与recBC和sbcA的突变一同赋予对 BJ5183菌株内部的DNA双链较高的修复活性(Kobayashi I等，Adv Biophys. 1992, Vol. 28, ρ· 81-133 ；Takahashi NK 等，J Bacteriol. 1993，Vol. 175，No. 16，p. 5176-85)。大肠杆菌DY380(来自斯坦福大学)是通过缺陷型λ噬菌体整合到大肠杆菌的染色体组中产生的。该菌的重组系统依赖于来自λ噬菌体的Exo、Beta和Gamma重组蛋白， 而不是依赖RecA蛋白。通过该重组系统，人们可以进行质粒、BAC和细菌染色体组的修饰。尽管目前已有各种各样的用于分子克隆的工程菌，例如以上大肠杆菌菌株，然而对于带有多个同源序列的某些基因或者大片段的真核生物DNA片段，由于在进行分子克隆时这种基因或DNA片段中的同源序列间自发地发生重组，故用这些工程菌难以实现对这种基因或DNA片段的克隆。因此，需要对这种带有多个重复的DNA序列的基因、特别是对大片段的真核生物的DNA序列稳定、能够对这些基因或大片段真换生物DNA序列进行克隆的工程菌。
发明内容
本发明提供一种新的基因工程用工具菌，该工程菌对带有多个重复的DNA序列的基因、特别是对大片段的真核生物DNA序列稳定，能够对这些基因或大片段真换生物DNA序列进行克隆。本发明的工程菌优选具有较高的质粒转化率。具体而言，本发明涉及一种细菌，例如大肠杆菌，其优选来源于大肠杆菌JM109野生型菌株，其中一个或更多个重组酶基因被敲除。在一个实施方案中，在所述细菌中，Red α ,Red^、RecE和RecT重组酶基因中的一个更多个被敲除。在一个优选实施方案中，RecE和RecT重组酶基因中的一个或两个被敲除。在进一步的实施方案中，RecE和RecT重组酶基因皆被敲除。在一个优选实施方案，fhuA基因被进一步敲除。在上述实施方案中，所述细菌可选地具有链霉素抗性。本发明也提供一种多拷贝质粒，其含有一个第一抗性基因、一个第二抗性基因和两个缺失型第三抗性基因，其中第二抗性基因位于两个缺失型第三抗性基因之间，这两个缺失型第三抗性基因所缺失的部分不同，因此可通过同源重组产生完整的第三抗性基因。 所述抗性例如为抗生素抗性。在一个实施方案中，所述第一抗性基因为氨苄青霉素抗性(AmpK)基因，第二抗性基因为卡那霉素抗性(KmK)基因，第三抗性基因为氯霉素抗性(CmK)基因。在一个优选实施方案中，所述质粒为pUC-cm-r印eats质粒。
本发明还提供检测细菌中DNA稳定性的方法，其包括将上述任一种的多拷贝质粒转化到所述细菌中，测定所述细菌是否能够在含有第三抗性所针对的抗生素如氯霉素的培养基中生长。如果细菌能够在含有该抗生素如氯霉素的培养基中生长，则表明在细菌中DNA 的稳定性较差。
图1是recET和fhuA基因之菌落PCR产物的限制性内切酶电泳图谱，其中泳道1，2，7，8 :JM109(WT)；泳道3，5 :JM109-StrE- Δ RecET- Δ fhuA泳道4，6 :JM109-StrE- Δ RecET ；泳道9，11 JM109-StrE- Δ RecET- Δ fhuA ；泳道10，12 :JM109-StrE- Δ RecET ；M为分子量标记。图加是通过GCK分子克隆软件显示recET的菌落PCR产物的限制性内切酶图谱模型。图2b是通过GCK分子克隆软件显示fhuA的菌落PCR产物的限制性内切酶图谱模型。图3 (左图)经NcoI消化的pUC-cm-r印eats的凝胶图谱。泳道1 分子量标记； 泳道2-7限制性内切酶NcoI消化后的质粒pUC-cm-r印eats的凝胶电泳图谱。图3 (右图)经NcoI消化的pUC-cm-r印eats的GCK软件模拟图谱。图4显示pUC-cm-r印eats在不同大肠杆菌菌株中的转化效率。图5显示pBAC-cm-r印eats在不同大肠杆菌菌株中的重组率。2#JM109 :JM109-StrE- Δ RecET- Δ fhuA ；4#JM109 :JM109-StrK-ARecET。图6显示pBAC-cm-r印eats在不同大肠杆菌菌株中的DNA重组率。2#JM109 :JM109-StrE- Δ RecET- Δ fhuA ；4#JM109 : JM109_StrK-Δ RecET。图7显示pUC-cm-r印eats在不同大肠杆菌菌株中的DNA重组率。2#JM109 :JM109-StrE- Δ RecET- Δ fhuA ；4#JM109 : JM109_StrK-Δ RecET。图8显示pUC-cm-r印eats在不同大肠杆菌菌株中的DNA重组率。2#JM109 :JM109-StrE- Δ RecET- Δ fhuA ；4#JM109 : JM109_StrK-Δ RecET。图9显示Red/ET重组条件下pBAC-cm-r印eats在不同大肠杆菌菌株中期望的DNA
重组率。2#JM109 :JM109-StrE- Δ RecET- Δ fhuA ；4#JM109 : JM109_StrK-Δ RecET。图10显示Red/ET重组条件下pBAC-cm-r印eats在不同大肠杆菌菌株中不期望的
DNA重组率。2#JM109 :JM109-StrE- Δ RecET- Δ fhuA ；4#JM109 : JM109_StrK-Δ RecET。
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图Ila和b显示LAWRIST-mTFIIA粘粒在不同菌株中转化和检测结果。其中M表示分子量标记。2#JM109 :2#JM109-StrE- Δ RecET- Δ fhuA ；4#JM109 :4#JM109-StrE-Δ RecET0图12为LAWRIST7-mTFIIA粘粒的I^stI酶切电泳图谱，其中泳道1为分子量标记， 泳道2为LAWRIST7-mTFIIA粘粒样品。
具体实施例方式如上所述，当有待克隆的基因或DNA片段、尤其是大片段的真核生物DNA分子含有多个同源序列时，在分子克隆中其同源序列间会自发地发生重组，导致该基因或DNA片段的分子克隆无法实现。小鼠胚胎肝细胞中的TFIIA基因(粘粒LAWRIST7-mTFIIA，(GeneBridges GmbH)) 的产物是基因特异性转录因子IIA，该因子可以促进和调节DNA在体内与TBP(TATA盒结合蛋白)结合，并与启动子相结合参与转录的起始[Liu Q等，Mol Cell Biol. 1999, Vol. 19, No. 12，p. 8673-85]。由于TFIIA基因中包含有许多相当长度和相同序列的DNA同源片段 [Jamsai D等，Genomics. 2003，Vol. 82，No. 1，p. 68-77]，所以在对该基因进行分子克隆时， 其同源序列间自发地发生了重组作用，导致在克隆实验后，限制性内切酶消化后的电泳图谱的预期的理想结果与实际酶切结果往往是不一致的，即无法进行分子克隆。经过分析，发现其原因主要为外界环境不稳定，在这些重复序列之间发生了重组或者在不同粘粒中发生了同源序列之间的重组。本发明人利用该TFIIA基因(Cosmids-LAWRIST7-mTFIIA)以及构建的多拷贝检测质粒pUC-cm-r印eats，用不同的细菌菌株例如大肠杆菌菌株对DNA结构的稳定性进行了研究，意想不到地发现该基因和所述多拷贝检测质粒在大肠杆菌JM109野生型菌株中比较稳定，未发生重组，而在其它的大肠杆菌菌株中则十分不稳定。实验方法和结果见实施例3和 5。因此，本发明人选择大肠杆菌JM109野生型菌株，通过对其进行进一步的修饰，敲除其中的一个或多个重组酶基因，获得了显著提高对带有多个重复DNA序列，特别是对大片段的真核生物的DNA序列的稳定性的工程菌。可以对本发明的工程菌做出进一步的修饰，例如引入抗性基因或敲除其fhuA基因，从而获得具有额外标记或提高质粒的转化效率的工程菌。本申请中用于构建新型工程菌的方法也可用于其他细菌、真菌或动物细胞，以构建其他的基因工程用菌或细胞。靶基因的敲除可以采用本领域已知的能够改变或破坏靶基因或其调控序列的结构、使靶基因功能完全丧失的任何技术，例如同源重组技术来实施。这些技术是本领域已知的。本发明的工程菌可以用于克隆含有多个同源序列的基因或大片段真核生物DNA 分子。由于本发明的工程菌的内部环境缺乏重组酶，因此当利用基因的同源序列进行分子克隆时，可以通过带有重组酶的质粒进行转化或共转化来实施同源重组。本申请中各种操作可以用本领域技术人员已知的方法、例如以下文献中描述的方法和本申请中所述方法来实施Jos印h Sambrook, et. al.，Molecular Clonning A Laboratory Manual,3rd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press,2001 ；禾口 Carl W. Dieffenbach禾口Gabriela S.Dveksler,PCR primer :A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1995 等。实施例1.使用的材料1.1 细菌所使用的细菌包括大肠杆菌JM109野生型菌株(Gene Bridges GmbH)、 HS996 (Invitrogen) > HS996-gyrA96 (Gene Bridges GmbH) > GB2005 (Gene Bridges GmbH) > BJ5183(Dr. Douglass Hanahan) > DY380 (University of Stenford)胃_。1.2 引物用来进行DNA扩增的引物1#-12#(SEQ ID NO 1-12)都在SIGMA公司定制。2.使用的方法质粒的提取、DNA的分离与纯化、限制性内切酶的消化、琼脂糖凝胶电泳、感受态细胞的制备、质粒的电转化、菌落PCR反应、PCR扩增反应等操作按照本领域的标准技术，例如 Joseph Sambrook 等，Molecular Clonning :A Laboratory Manual, 3rd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press,2001 ；禾口 Carl W. Dieffenbach 禾口 Gabriela S.Dveksler, PCR primer :A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory Press，1995等中描述的方法来实施。2. 1细菌培养细菌预培养取2-10ml已经高压灭菌的LB培养液到15ml试管中，再用消毒过的牙签挑取单克隆菌株到试管中，在37°C下、1025rpm条件下过夜培养。细菌主培养按照1 50-1 100的比例从预培养的细菌培养液取菌液接种，进行大量培养， 在37°C下、1025rpm摇床条件下培养。2. 2Red/ET 重组1.将pSClOl-BAD-γ β α A (Gene Bridges GmbH)通过电转化(1250V下电击转化) 转化到细菌细胞中，然后将PCR产物和目标克隆分子共同电转化到该细菌细胞中；2.紧接着将这些细菌转化子在带有不同抗生素筛选压力的LB平板培养皿表面涂平板，并且在30°C细菌培养箱中过夜培养；3.第二天，用消毒的牙签在平板上挑取所选取的阳性克隆，随即将其移到1.5ml 的Ependorf管中，将菌株浸没入其中的LB培养液中并多次旋转，使细菌充分溶解在其中并且在30°C、1050rpm条件下培养；4.次日，将30μ1过夜培养的菌液加入到1.細1培养液中，并在30°C、1050Xg条件下培养2小时，至OD值为0. 2，然后向菌种加入20 μ 1 10 %的L-阿拉伯糖，紧接着在 37 0C、1050rpm 条件下培养 40min ；5.两次在1200rpm，2°C，30秒离心，并用900 μ 1冰水清洗，6. 1300rpm、2°C下离心30秒，去除上清液，然后向其中加入PCR产物和目标克隆质粒，并且混合；7.将混合液加入到电转化杯中，并在1350V的电压下，进行电转化；8.在电转化杯中加入900 μ 1新鲜的LB培养液，然后将其全部移到1. 5ml的新的 Ependorf管中，并在37°C、1050rpm条件下培养1小时，然后在带有不同抗生素的平板上涂平板，在37 °C培养箱中过夜培养。2. 3 Cre重组酶重组1.将 pSC101-BAD-cre 质粒(Gene Bridges GmbH)在 1350V 下电转化到大肠杆菌菌中；2.电转化后在电转化杯中加入900 μ 1新鲜的LB培养液，并在30°C下1050Xrpm 震荡培养90min ；3.将所培养的细菌在含有150 μ g/ml的氯霉素、氨苄青霉素和卡那霉素混合筛选压力的LB培养皿上涂平板；4.在30°C细菌培养箱培养过夜培养；5.挑选单克隆菌株到Iml含有150 μ g/ml氨苄青霉素的培养液中，并在30°C下培养2-3小时；6.转换培养温度到37°C条件下过夜培养；7.提取质粒DNA并酶切消化，再通过琼脂糖凝胶电泳来鉴定检测。实施例1.基因被敲除的大肠杆菌JM109(WT)的构建使用因rpsL基因发生突变而具有链霉素抗性的大肠杆菌JM109野生型菌株 (JM1094trK，得自 Gene Bridges GmbH)，构建 rec/ET 基因被敲除(JM109_StrK-Δ recET，也称为 4#JM109)以及 fhuA 基因被敲除(JM109-StrK- Δ recET- Δ fhuA,也称为 ^JM109)的大肠杆菌菌株。为了从染色体组中将rec/ET基因敲除，通过引物1#和姊(AAATATTTCAAGTTG GCGGTGCATTACACCGCCAGGCTGAATACCGTTCGTATAATGTATGCTATACGAAGTTATTCAGAAGAACTCGTCAA GAAGAAAGTTTCCATGGAAAAGAGAAG, SEQ ID NO 1 ；和 TGAACAAAACGAATTTTAATCTGAGTTGAGGTTA AAAAACATACCGTTCGTATAGCATACATTATACGAAGTTATTCACGCTGCCGCAAGCACTCAG, SEQ ID NO 2), 以质粒pBeloBACll-rpsL-neo-zeo(Gene Bridges)为模板，通过PCR扩增获得含有卡那霉素抗性(neo基因)的rpsL-neo基因盒。按照上述的Red/ET重组的基本步骤，用fpsL-neo 基因盒替换染色体组中的rec/ET基因；同样通过引物5#和6# (CTCGTTTACGTTATCATTCACTT TACATCAGAGATATACCATACCGTTCGTATAGCATACATTATACGAAGTTATTCACGCTGCCGCAAGCACTCA, SEQ ID NO :5 ；和 GAAGGTTGCGGTTGCAACGACCTGACGTTCTGCGCCCCAGAATACCGTTCGTATAATGTATGCTAT ACGAAGTTATTCAGAAGAACTCGTCAAGAAG, SEQ ID NO 6)，借助 red/ET 重组，用 rpsL-neo 基因盒进一步替换染色体组中的fhuA基因，得到具有卡那霉素抗性的菌株克隆。卡那霉素抗性克隆通过引物3i^P4#(GCCAGAAATGGCAGGTATTCG，SEQ ID NO 3 ；和TGGCTTTCACCGTTACTGATGG， SEQ ID NO 4)以及PCR可以扩增得到长度约为1.71Λ的DNA片段。按照2. 3所述的方法通过Cre/loxP特异性重组，该rpsL-neo基因盒在Cre酶的作用下被去除，最终只是在染色体组中遗留一个IoxP位点的序列，获得具有链霉素抗性的克隆-菌株JM1094trK- Δ recET 和JM109-MrK- Δ recET- Δ fhuA。最终得到的克隆通过引物3#和4#及引物7#和 8# (CTCGTTTACGTTATCATTCAC, SEQ ID NO 7 ；和 GCCAACCAGCGAGATAGCTTC，SEQ ID NO 8)经 PCR扩增测定，原来rec/ET和fhuA基因位点处的扩增片段大小为585bp和584bp (见图1和2)。与此相对比，以大肠杆菌JM109 (WT)作为模板，通过引物3#和4#及引物7#和8#并通过菌落PCR，可以得到长度分别为3. 9kb和2. 7kb的rec/ET和fhuA基因的扩增片段。这表明，大肠杆菌JM109 (WT)中的rec/ET (和fhuA)基因已被敲除。实施例2.多拷贝质粒pUC-cm-r印eats的构建构建多拷贝质粒pUC-cm-r印eats作为DNA稳定性的检测系统。该质粒含有一个氨苄青霉素抗性(AmpK)基因、一个卡那霉素抗性(KmK)基因和两个互不相连的缺失部分片段的氯霉素抗性(CmK)基因序列，其中卡那霉素抗性基因位于两个缺失型CmK基因之间。pUC-cm-r印eats质粒(6648bp)在发生重组之前和重组之后(得到具有氯霉素抗性的pUC-cm-amp质粒)，始终含有氨苄青霉素抗性(AmpK)，因此带有pUC-cm-r印eats质粒或者pUC-cm-amp (3668bp)质粒的大肠杆菌菌株可以在含有氨苄青霉素的LB平板上生长， 但只带有pUC-cm-amp质粒的大肠杆菌菌株由于两个缺失型CmK基因之间发生重组而获得完整的CmK基因，可以在含有氯霉素的LB的平板上存活。该质粒如下制备。首先将pSClOl-BAD-γβ α A质粒(Gene Bridges GmbH)通过于 1250V下电转化转入 BG2005 菌株中。用引物 11# 和 12# (CATGGAGCGGCGTAACCGTCGCACAGGAAGGACAGAGAAACATGA TCGTGCTCCTGTCGTTG,SEQ ID NO 11 ；和TTTTTTTAAGGCAGTTATTGGTGCCCTTAAACGCCTGGTCTTTA GTGAGGGTTAATTGCG, SEQ ID NO :12)，以 pUC18_amp (Gene Bridges GmbH)作为模板进行 PCR 扩增，获得PCR产物。这些引物含有两段与pBAC-cm-r印eats (即pBelo-BAC-rpsL-neo-new) 质粒中被截短的(CmK)氯霉素抗性基因同源的序列，使得可将pBAC-cm-r印eats中带有被截短的CmK和KmK的片段通过同源重组而被亚克隆到pUC18-amp上。将pUC18-amp的 PCR产物和pBAC-cm-r印eats质粒(Gene Bridges GmbH)通过电转化转化到已经带有 pSClOl-BAD-y β α A质粒的BG2005菌株中。在电转化之后随即发生Red/ET重组，得到质粒pUC-cm-r印eats。带有pUC-cm-r印eats质粒的目标克隆菌株可以在含有AmpK和KmK的 LB细菌培养皿筛选得到。然后将这些目标克隆菌株进行质粒提取，并且用NcoI限制性内切酶消化和琼脂糖凝胶电泳，其结果见图3。实施例3.通过pBAC-cm-r印eats和pUC-cm-r印eats质粒的检测系统进行DNA稳定性检测试验在该试验中，将pBAC-cm-r印eats和pUC-cm-r印eats两种质粒分别被转化到8个不同的大肠杆菌菌株之中。经过预培养和主培养大肠杆菌菌株的数量达到其生长的饱和浓度(0D·值为3. 0)时，可用于DNA稳定性试验。对于携带pBAC-cm-repeats质粒的菌株，在预培养时使用新霉素和卡那霉素两种混合抗生素作为共同的筛选压力，而在主培养过程中，只使用新霉素作为筛选压力。这主要是为了有意去丢失Neo基因(卡那霉素抗性基因)，并诱导这两个缺失型氯霉素抗性基因片段的同源区域发生重组，从而形成一个完整的且有功能的氯霉素抗性基因(CmK)。然后，将达到饱和浓度的菌株分别取等量的体积，涂布在只含有新霉素或只含有氯霉素的LB平板上，并在37°C (DTO80菌株在30°C条件下)细菌培养箱中培养。在只含有新霉素的LB平板上生长的菌落包括已经发生自发性同源重组的菌株和没有发生自发性同源重组的菌株。在只含有氯霉素的LB平板上生长的菌落表现的是pBAC-cm-r印eats质粒的重组情况，这个重组发生在两个不完整的缺失少部分序列的CmK基因的同源片段之间，故DNA稳定性由在这两个含不同抗生素的LB平板上的菌落数的比值所指示。在无抗生素的LB平板上生长的菌落及其数量表示的是已被转化的转化子菌落和未被转化的菌落的总数。而在带有新霉素的LB平板上生长的菌落数表现的是 pBAC-cm-repeats和pUC-cm-r印eats质粒在转化之后，成功发生转化的转化子的生长情况。转化效率由这两种平板上生长的菌落数的比值来指示。对于多拷贝检测质粒pUC-cm-r印eats来说，该质粒含有AmpK和KmK (卡那霉素抗性)基因，而且KmK基因位于两个不完整的缺失部分序列的0^基因片段之间。与 pBAC-cm-repeats质粒同样的原理，先在氨苄青霉素和卡那霉素共同存在并在37°C的条件下进行预培养，然后主培养在只有氨苄青霉素存在且于37°C的条件下进行至饱和浓度 (DY380菌株在30°C条件下)。最后将等量体积的菌液100 μ 1分别涂平板于含有氯霉素和氨苄青霉素的LB平板上，在其表面上生长的菌落数之间的比值代表了其DNA的稳定性。如上所述进行DNA稳定性检测。在表1和2及图5和6中可以清楚地看到，pBAC-cm-repeats的自发重组率在大肠杆菌JM109(WT)、 JM109-StrE- Δ recET- Δ fhuA (2#JM109) JM109-StrE- Δ recET (4#JM109)是最低的， 并且在 JM109-StrR-ArecET-AfhuA(2#JM109)禾Π JM109-StrE- Δ recET (4#JM109) 的自发重组率大约为在JM109(WT)中的一半。而BG2005菌株中的自发重组率是 JM109 (WT)的2倍；在BJ5183、HS996和HS996_gyrA96菌株中的自发重组率是在 JM109-StrE- Δ recET- Δ fhuA (2#JM109)和 JM109_StrK-Δ recET G#JM109)中的数倍；然而在DY380中的自发重组率最高，为0. 19112%。表1 检测系统pBAC-cm-r印eats在不同菌株中DNA稳定性的原始数据
权利要求
1.一种细菌，其中一个或更多个重组酶基因被敲除。
2.权利要求1的细菌，其为大肠杆菌。
3.权利要求1的细菌，其来源于大肠杆菌JM109野生型菌株。
4.权利要求1-3任一项的细菌，其中Reda,Red^、RecE和RecT重组酶基因中的一个更多个被敲除。
5.权利要求1-4任一项的细菌，其中RecE和RecT重组酶基因中的一个或两个被敲除。
6.权利要求1-5任一项的细菌，其中RecE和RecT重组酶基因皆被敲除。
7.权利要求1-6任一项的细菌，其中fhuA基因被进一步敲除。
8.权利要求1-7任一项的细菌，其具有链霉素抗性。
全文摘要
基因工程用工具菌及其应用。本申请涉及基因组中一个或多个重组酶基因被敲除的工程菌。所述工程菌尤其可用于克隆含有多个同源序列的基因或大片段DNA的工程菌。
文档编号C12R1/19GK102344897SQ201110300048
公开日2012年2月8日 申请日期2011年9月30日 优先权日2011年9月30日
发明者于浩洋 申请人:苏静