一种新的诱导体细胞重编程的方法，试剂盒及用途

一种新的诱导体细胞重编程的方法，试剂盒及用途
【专利摘要】本发明提供了一种新的诱导体细胞重编程的方法，试剂盒及用途。本发明涉及外胚层分化发育相关因子和/或中内胚层分化发育相关因子作为诱导因子用于诱导多潜能干细胞产生的用途。本发明通过向分化的细胞提供诱导因子从而诱导产生诱导多潜能干细胞(iPS细胞)，所述诱导因子包含中内胚层分化发育相关因子、Sox2、Klf4和任选地c-Myc；外胚层分化相关因子、Oct4、Klf4和任选的c-Myc；或中内胚层分化发育相关因子、外胚层分化相关因子、Klf4和任选的c-Myc。在本发明中获得的iPS细胞具有和鼠胚胎干细胞相似的特性，即具有维持自我更新的能力以及分化的全能性。
【专利说明】一种新的诱导体细胞重编程的方法，试剂盒及用途

【技术领域】
[0001] 本发明涉及一种诱导体细胞重编程的方法，试剂盒及用途。

【背景技术】
[0002] (一）胚胎干细胞简介
[0003] 胚胎干细胞（embryonic stem cells, ESCs，简称ES细胞。）胚胎干细胞是早期胚 胎（原肠胚期之前）分离出来的一类细胞，它具有体外培养无限增殖、自我更新和多向分化 的特性。
[0004] (二）干细胞多能性（pluripotency)的特点：
[0005] 胚胎干细胞因为具有向三个胚层细胞的分化能力而被称为"多潜能"干细胞，此 夕卜，胚胎瘤（EC)细胞和胚胎生殖（EG)细胞均具有和胚胎干细胞类似的多能性。多潜能干 细胞共同的特点是：ES细胞具有与早期胚胎细胞相似的形态结构，细胞核大，有一个或几 个核仁，胞核中多为常染色质，胞质胞浆少，结构简单。体外培养时，细胞排列紧密，呈集落 状生长。细胞克隆和周围存在明显界限，形成的克隆细胞彼此界限不清，细胞表面有折光较 强的脂状小滴。细胞克隆形态多样，多数呈岛状或巢状（人胚胎干细胞较扁平，而小鼠胚胎 干细胞较为隆起，细胞界限不明显）。具有AP酶活性，特异地表达SSEA4等表面标志（小鼠 胚胎干细胞还特异性地表达SSEA1，而人胚胎干细胞不表达SSEA1)，及0ct4, Nanog，Sox2， Rexl(ZFP42)，⑶F3, Lin28等标志性基因。此外，还可以在悬浮培养条件下，形成胚胎小体 (Embryonic bodies)结构，并发生自发分化，EB形成6-9天后贴壁培养，可检测到向内、中、 外三个胚层分化的细胞。
[0006] (三）胚胎干细胞的研究
[0007] 哺乳动物在正常情况下永远不会发生的事情是细胞的"去分化"--细胞倒转发 育的进程，回归为一种更加原始的类型。事实上对于这条规则的唯一例外是肿瘤细胞，相比 于其来源的组织细胞，它们的分化程度比较低。一些肿瘤细胞会无止境的分裂，显示了永生 化的特点，而多能性细胞也具有相似的特点。
[0008] 直到最近，将一个正常成体细胞内的生物钟倒转的唯一办法是通过一种精细操 作，让细胞回归成为胚胎样细胞的状态，这个过程被称为细胞的重编程。实现重编程的最古 老的方法是体细胞的核移植技术，或者称为"克隆"，其具体操作是将一个正常成体细胞内 的遗传物质通过显微注射进入卵细胞内，而卵细胞本身的DNA之前被去除掉。这种DNA与卵 细胞形成的杂合体能够发育成为早期胚胎，从这种早期胚胎中可以提取多能性的干细胞。
[0009] 自从1997年多利羊的诞生和1998年首次分离得到人类胚胎干细胞以来，核移植 技术作为一种可以量身定制获得多能性细胞的途径，进而能够移植替换疾病受损组织和创 伤组织，受到了广泛的关注。卵细胞内的某些因子（我们了解得还很少）的确将成年供体 细胞内的遗传物质变得年轻了，甚至包括端粒。端粒就像一顶帽子一样保护着染色体的末 端，并随着年龄的增长逐渐变短，但重编程仍能让端粒保持年轻化的状态。尽管克隆技术在 动物体内取得了长足的进展，但将之用于生成人类胚胎干细胞的努力仍然是不成功的。
[0010] (四）诱导多能性干细胞（iPS细胞）的研究
[0011] 2006年8月，日本京都大学再生医学科学研究所教授山中伸弥（Shinya Yamanaka)实验室首先宣布在小鼠的成纤维细胞中导入4个基因（0ct4, Sox2, c-Myc和 Klf4)成功地将其诱导重编程成为全能性的干细胞，其性质和胚胎干细胞类似。（Takahashi and Yamanaka, 2006)从而首次揭示了通过转基因可以在分化的细胞中建立全能性。
[0012] 在该实验中，Yamanaka等人首先选取了和小鼠胚胎干细胞自我更新及维持多能性 相关的24个基因，分别将他们克隆到逆转录病毒载体，对胚胎成纤维细胞进行共转染，在 进行基于Fbxl5报告体系的筛选之后，他们观察到了 ES-like的细胞集落的形成。经过对 这24个基因的进一步分析，他们发现，仅转导0ct4, Sox2, c-Myc，Klf4就可以使胚胎成纤 维细胞完全转变成为诱导的多潜能干细胞（iPS细胞-Induced Pluripotent Stem Cells, 俗称"诱导的多潜能干细胞"）。该iPS细胞拥有正常的核型，表达类似胚胎干细胞的分子 标志，可以在体外被诱导分化为内、中、外三个胚层的终末分化的细胞，能够在裸鼠体内形 成畸胎瘤，在畸胎瘤中含有内、中、外三个胚层的分化细胞。
[0013] 同时，研究发现只用0ct4，Sox2和Klf4 一样可以获得iPS细胞，c-Myc并不是体 细胞重编程所必需的转录因子。
[0014] 此后，采用Yamanaka的策略，一些新的用于产生诱导多能干细胞的因子被筛选 出来。新加坡的Huck-Hui Ng研究组发现Nr5a2和Klf4，Sox2，cMyc -起完成重编程 (Jian-Chien Dominic Heng et al.，2009)，并且 0ct4,Esrrb，Klf4,和 cMyc -起也可以完 成重编程。同时，研究发现只用0ct4并且在特殊的细胞类型，如神经干细胞（Kim et al.， 2009)，滋养外胚层细胞（Tong mi et al.，2011)等就可以实现将体细胞重编程为诱导多能 干细胞。并且，在加上小分子的情况下还能实现将小鼠成纤维细胞转变为诱导多能干细胞 (Yanqin Li et al. ,2010)以及人的角质化细胞转变为诱导多能干细胞（Saiyong Zhu et al.，2010)。
[0015] 迄今为止，不同研究组已经在许多种不同类型的细胞上尝试了重编程技术，并取 得了成功。在诱导的方法学上也有了许多的改进。2008年，Hochedlinger课题组利用 不整合基因组的腺病毒（Adenovirus)载体成功诱导了 iPS细胞（Matthias Stadtfeld et al. ,2008);同年，Yamanaka利用质粒载体也成功诱导了 iPS细胞（Keisuke Okita et al. ,2008) ;piggyBac转座子体系后来也证实可以切除掉外源插入基因的方法完成重编程 (Woltjen K et al.，2009);后来Ding Sheng课题组利用四因子的蛋白也成功诱导iPS细 胞（Zhou H et al.，2009);最近，用 RNA(Luigi Warren et al.，2010)和小RNA(micro RNA) 也能实现成功的重编程（FrederickAnokye-Danso et al.，2011and Alessandro Rosa et al·，2011)。
[0016] S0X7, CEBPa，HNF4a，GRB2作为中内胚层分化基因已经被广泛报道，但其在重编程 过程中的作用目前还没有报道。GMNN作为外胚层分化基因已经被广泛报道，但其在重编程 过程中的作用目前还没有报道。
[0017](五）应用前景
[0018] 诱导多能干细胞的建立很好的解决了胚胎干细胞研究的伦理问题，对于生命科学 以及人类的健康有着重要意义。诱导多能干细胞的研究可以帮助揭示人及动物的发育机制 及影响因素；建立转基因动物或基因打靶动物，制备人类疾病模型；体外诱导分化提供各 种类型的人体细胞，进行药学研究；通过形成嵌合体，在严格控制下使动物的某些器官来源 于人体细胞，从而用于临床移植；最诱人的前景就是用于细胞治疗和基因治疗的靶细胞，为 细胞移植提供无免疫原性的材料以及通过基因修饰改造的人体细胞移植回体内，达到治愈 疾病的目的等等。


【发明内容】

[0019] 本发明提供了一种通过导入中内胚层分化相关基因和/或外胚层分化基因诱导 细胞重编程的方法，这类基因可替代0ct4和/或Sox2,同其它重编程基因一起，诱导产生诱 导多潜能干细胞（iPS细胞）。该方法通过向分化的细胞中提供中内胚层分化发育相关的 基因（如GATA3)并且在外源Sox2等其它基因的共同作用下，或向分化的细胞提供外胚层 分化发育相关的基因（如GMNN)并且在外源0ct4等其它基因的共同作用下，或向分化的细 胞同时提供中内胚层和外胚层分化相关的基因，在其他重编程基因一起，诱导产生iPS细 胞 -诱导的多潜能干细胞（Induced Pluripotent Stem Cells)。
[0020] 因此，本发明一方面涉及中内胚层和/或外胚层分化发育相关因子作为诱导因子 用于诱导多潜能干细胞产生的用途。
[0021] 本发明还一方面涉及一种制备诱导多潜能干细胞的方法，包括向分化的细胞提供 诱导因子的步骤。在本发明的一些实施方案中，本发明的制备方法包括将分化的细胞与诱 导因子接触的步骤。在本发明的一些实施方案中，所述诱导因子包含中内胚层和/或外胚 层分化发育相关因子。在本发明的一些实施方案中，所述诱导因子包含中内胚层分化发育 相关因子、Sox2和Klf4的组合。在本发明的一些实施方案中，所述诱导因子进一步包含 c-Myc。在本发明的一些实施方案中，所述诱导因子包含中内胚层分化发育相关因子、Sox2、 Klf4和c-Myc的组合。在本发明的一些实施方案中，所述诱导因子包含外胚层分化发育 相关因子、0ct4和Klf4的组合。在本发明的一些实施方案中，所述诱导因子进一步包含 c-Myc。在本发明的一些实施方案中，所述诱导因子包含外胚层分化发育相关因子、0ct4、 Klf4和c-Myc的组合。在本发明的方法中，中内胚层基因能替代0ct4和/或c-Myc，因此 不必使用0ct4和/或c-Myc。在本发明的方法中，夕卜胚层基因能替代Sox2和/或c-Myc， 因此不必使用Sox2和/或c-Myc。在本发明的方法中，中内胚层基因和外胚层基因能同时 替代0ct4和Sox2,因此不必使用0ct4和Sox2/或c-Myc。
[0022] 在本发明中，所使用的分化的细胞可以是本领域已知的任何分化的细胞，例如，皮 肤细胞，肝细胞，胃细胞，角质细胞或血液细胞，优选地，所述细胞来自胚胎期，刚出生后或 成体期。
[0023] 在本发明中，所使用的分化的细胞可以来源于哺乳动物或非哺乳动物。在本发明 的一些实施方案中，本发明使用的分化的细胞来源于人。在本发明的一些实施方案中，本发 明使用的的分化的细胞来源于非人哺乳动物。在本发明的一些实施方案中，本发明使用的 分化的细胞来源于鼠如小鼠或大鼠或灵长类动物。
[0024] 本发明又一方面涉及一种制备诱导多潜能干细胞的试剂盒，包括诱导因子。在本 发明的一些实施方案中，所述试剂盒还包括用于转化细胞的试剂和载体。所述载体可以 是例如慢病毒系统的载体。本发明的试剂盒中还可以包括培养基和说明书。在本发明的 一些实施方案中，所使用的诱导因子包括中内胚层分化发育相关因子Sox2、Klf4和任选 地c-Myc。在本发明的一些实施方案中，本发明的试剂盒包括中内胚层分化发育相关因子， Sox2和Klf4的组合。在本发明的一些实施方案中，本发明的方法包括中内胚层分化发育相 关因子、Sox2、Klf4和c-Myc的组合。在本发明的一些实施方案中，本发明的试剂盒中的诱 导因子包括外胚层分化发育相关因、0ct4、Klf4,任选地，所述诱导因子还包括c-Myc。在本 发明的一些实施方案中，本发明的试剂盒中的诱导因子包括中内胚层分化发育相关因子、 外胚层分化发育相关因子、Klf4,任选地，所述诱导因子还包括c-Myc。在本发明的一些实 施方案中，试剂盒中的中内胚层分化发育相关因子包括GATA3, GATA6, GATA4, PAX1，S0X7， CEBPa，HNF4a或GRB2中的至少一个，例如，GATA3,试剂盒中的外胚层分化发育相关因子包 括S0X1，S0X3或GMNN中的至少一个，例如，GMNN。
[0025] 在本文中，诱导因子以其最广泛意义使用，包括产生诱导多潜能干细胞的基因 (其编码多核苷酸或其蛋白产物）或基因的组合，诱导因子可以是核酸如DNA，mRNA或蛋白 形式。
[0026] 在本文中，中内胚层分化发育相关因子和/或外胚层分化发育相关因子以其最广 泛的意义使用，包括本领域已知的任何中内胚层、外胚层分化发育相关基因、编码所述基因 的多核苷酸、所述基因表达产生的蛋白质。例如，在本发明的一些实施方案中，所述中内胚 层分化发育相关因子包括GATA3, GATA6, GATA4, PAX1，S0X7, CEBPa，HNF4a或GRB2中的至 少一个。在本发明的一些实施方案中，所述中内胚层分化发育相关因子选自GATA3，GATA6， GATA4, PAX1，S0X7, CEBPa，HNF4a或GRB2中的至少一个的至少一个。在本发明的一些实 施方案中，所述中内胚层分化发育相关因子选自GATA3, GATA6, GATA4, PAX1，S0X7, CEBPa， HNF4a或GRB2。在本发明的一些实施方案中，仅使用选自GATA3，GATA6，GATA4，PAX1，S0X7， CEBPa，HNF4a或GRB2中的一个中内胚层分化发育相关因子。在本发明的一些实施方案中， 使用选自GATA3, GATA6, GATA4, PAX1，S0X7, CEBPa，HNF4a或GRB2中的两个或更多中内胚 层分化发育相关因子的组合。在本发明的一些实施方案中，使用的中内胚层分化发育相关 因子为GATA3。所述外胚层分化发育相关因子包括S0X1，S0X3或GMNN中的至少一个。在 本发明的一些实施方案中，所述外胚层分化发育相关因子选自S0X1，S0X3或GMNN中的至少 一个的至少一个。在本发明的一些实施方案中，所述外胚层分化发育相关因子选自S0X1， S0X3或GMNN。在本发明的一些实施方案中，仅使用选自S0X1，S0X3或GMNN中的一个外胚 层分化发育相关因子。在本发明的一些实施方案中，使用选自S0X1，S0X3或GMNN中的两个 或更多外胚层分化发育相关因子的组合。在本发明的一些实施方案中，使用的外胚层分化 发育相关因子为GMNN。
[0027] 本发明又一方面涉及使用本发明的方法或试剂盒制备的诱导多潜能干细胞。
[0028] 本发明还一方面涉及所制备的诱导多潜能干细胞的用途。例如，用于本领域已知 的各种用途。
[0029] 如本发明中所证实的，中内胚层和/或外胚层分化发育相关因子可以用于制备诱 导多潜能干细胞。在这一方面，中内胚层分化发育相关因子可以与Sox2、Klf4和任选地 c-Myc组合用于制备诱导多潜能干细胞。外胚层分化发育相关因子可以与0ct4、Klf4和任 选地c-Myc组合用于制备诱导多潜能干细胞。中内胚层，外胚层分化发育相关因子可以与 Klf4和任选地c-Myc组合用于制备诱导多潜能干细胞。
[0030] 如本发明中所证实的，中内胚层和/或外胚层分化发育相关因子还可以用于提高 重编程效率。在这一方面，中内胚层分化发育相关因子可以与Sox2、Klf4和c-Myc组合用于 提高重编程效率。在另外一个方面，外胚层分化发育相关因子、0ct4、Klf4和任选地c-Myc 组合用于提高重编程效率。在又一个方面，中内胚层分化发育相关因子、外胚层分化发育相 关因子、Klf4和任选地c-Myc组合用于提高重编程效率。

【专利附图】

【附图说明】
[0031] 图1 :中内胚层基因 S0X7, CEBPa，HNF4a，GRB2等可以替代0CT4。MDF为小鼠真皮 成纤维细胞；GFP为绿色荧光蛋白。
[0032] 图2 :外胚层基因 GMNN可以替代S0X2。
[0033] 图3中内胚层基因 GATA3, GATA6, PAX1分别与外胚层基因 S0X1，S0X3和GMNN组 合可以在小鼠重编程过程中同时替代0CT4和S0X2。
[0034] 图4用G6GmKM诱导的iPS细胞系表达多潜能性标志蛋白，如NANOG，UTF-1和 SSEA-1。比例尺为 ΙΟΟμπι。
[0035] 图5用G6GmKM诱导的iPS细胞系，G6GmKM的iPS细胞系注射获得的畸胎瘤以及 G6GmKM的iPS细胞系注射获得的二代小鼠各个组织中都没有0CT4和S0X2外源病毒基因的 整合。
[0036] 图6用G6GmKM诱导的iPS细胞系表达干性标志基因并且外源病毒基因已经基本 沉默。
[0037] 图7用G6GmKM诱导的iPS细胞系的多潜能基因 0ct4, Nanog启动子DNA甲基化水 平很低，和胚胎干细胞类似。
[0038] 图8用G6GmKM诱导的iPS细胞系的基因表达谱和胚胎干细胞接近.
[0039] 图9用G6GmKM诱导的iPS细胞系在体内具有三个胚层组织细胞类型的分化能力。 比例尺为50 μ m。
[0040] 图10用G6GmKM诱导的iPS细胞系具有囊胚注射产生嵌合小鼠和种系传递小鼠的 能力。

【具体实施方式】
[0041] 以通过实施例进一步举例说明本发明。本领域的普通技术人员可以理解本发明 并不限于所述实施例，并且本领域的普通技术人员可以基于说明书的教导对实施例进行修 改。这些修改同样包含在本发明由后附的权利要求所定义的本发明的范围内。
[0042] 下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法。
[0043] 1.小鼠品系
[0044] 转基因鼠品系：TgN(G0FGFP) lllmeg(OG)购自 RIKEN BioResource Center。小鼠 品系ICR购自维通利华。
[0045] 2.细胞培养
[0046] 原代小鼠胚胎成纤维细胞（MEF)与成体小鼠皮肤细胞（MDF)均来自ICRX 0G转基 因小鼠。MEF和293T细胞培养基为含10%胎牛血清（FBS，Invitrogen)的DMEM(Hyclone) 培养基。小鼠胚胎干细胞系R1和iPS细胞培养基为 ：80%DMEM/F12(Invitrogen)，N2，B27， ImM L-谷氨酰胺，1%非必需氨基酸，0.055mM beta-巯基乙醇（均购自Invitrogen)以及 1μΜΡ?0325901，3μΜ CHIR99021(Stemgent)。小鼠胚胎干细胞系R1和iPS细胞培养在丝 裂霉素 C处理后的MEF饲养层细胞上，培养基每天换液。用胰酶消化传代。
[0047] 3. iPS 的诱导
[0048] Tet-on慢病毒体系详见（N. Maherali et al.，2008)。慢病毒的制备，收集与感染 详见（Y. Zhao et al.，2008)。细胞感染24小时后的培养基为80% knockout DMEM，10%胎 牛血清，1〇%敲除的血清替代物0?1〇，非必须氨基酸，1〇〇111^仏/1111双抗，111111^-谷氨酰 胺，55μΜβ-巯基乙醇，lyg/mlDox。每3天进行一次换液。感染8天后，细胞的培养基变 为小鼠胚胎干细胞培养基。感染12天后，GFP阳性且形态象iPS的克隆被挑出来并传代到 小鼠胚胎干细胞培养基中。
[0049] 4. iPS 的鉴定
[0050] 基因组PCR，RT-PCR分析，碱性磷酸酶检测，DNA芯片，畸胎瘤与嵌合体鉴定方 法详见（Y.Li et al，.2010)。免疫组化鉴定所用一抗为 SSEA-Ul : 100;Chemicon)， UTF1(1 : 200;Abcam)，and Nanog(l : 100;R&D)。二抗为罗丹明标记的驴抗兔 IgG 和罗 丹明标记的羊抗鼠 IgM(Santa Cruz Biotechnology, 1 : 200)。DAPI用来进行核染。基 因组PCR引物见表格1，RT-PCR引物见表格2。甲基化分析用的试剂盒是the CpGenome? Fast DNA modification kit(Millipore)。甲基化分析所用检测引物详见（K.Takahashi, S. Yamanaka,2006)。
[0051] 表格1基因组PCR引物
[0052]

【权利要求】
1. 外胚层分化发育相关因子或其与中内胚层分化发育相关因子的组合作为诱导因子 用于诱导多潜能干细胞产生的用途，所述中内胚层分化发育相关因子优选为GATA3，GATA6， GATA4, PAX1，S0X7, CEBPa，HNF4a或GRB2中的至少一个，所述中内胚层分化发育相关因子更 优选为GATA3, GATA6, PAX1中的至少一个。
2. -种制备诱导多潜能干细胞的方法，包括向分化的细胞提供诱导因子的步骤，所述 诱导因子包含外胚层分化发育相关因子、0ct4、Klf4,任选地，所述诱导因子还包含c-Myc。
3. -种制备诱导多潜能干细胞的方法，包括向分化的细胞提供诱导因子的步骤，所 述诱导因子包含中内胚层分化发育相关因子、外胚层分化发育相关因子、Klf4,任选地，所 述诱导因子还包含c-Myc，所述中内胚层分化发育相关因子优选为GATA3, GATA6, GATA4， PAX1，S0X7, CEBPa，HNF4a或GRB2中的至少一个，所述中内胚层分化发育相关因子更优选为 GATA3, GATA6, PAX1 中的至少一个。
4. 一种制备诱导多潜能干细胞的方法，包括向分化的细胞提供诱导因子的步骤，所 述诱导因子包含中内胚层分化发育相关因子、Sox2、Klf4,任选地，所述诱导因子还包含 c-Myc，其中所述中内胚层分化发育相关因子为S0X7, CEBPa，HNF4a和GRB2中的至少一个。
5. 中内胚层分化发育相关因子作为诱导因子用于诱导多潜能干细胞产生的用途，其中 所述中内胚层分化发育相关因子为S0X7, CEBPa，HNF4a和GRB2中的至少一个。
6. 权利要求2-4中任一项的方法，其中所述分化的细胞是皮肤细胞，肝细胞，胃细胞， 角质细胞或血液细胞，优选地，所述细胞来自胚胎期，刚出生后或成体期。
7. 权利要求2-4或7中任一项的方法，其中所述分化的细胞来源于哺乳动物，优选地， 所述哺乳动物是人、鼠或灵长类动物。
8. -种制备诱导多潜能干细胞的试剂盒，包括诱导因子，所述诱导因子包含中内胚层 分化发育相关因子、Sox2、Klf4,任选地，所述诱导因子还包含c-Myc，其中所述中内胚层分 化发育相关因子为S0X7, CEBPa，HNF4a和GRB2中的至少一个。
9. 一种制备诱导多潜能干细胞的试剂盒，包括诱导因子，所述诱导因子包含外胚层分 化发育相关因、0ct4、Klf4,任选地，所述诱导因子还包含c_Myc。
10. -种制备诱导多潜能干细胞的试剂盒，包括诱导因子，所述诱导因子包含中内胚层 分化发育相关因子、外胚层分化发育相关因子、Klf4,任选地，所述诱导因子还包含c-Myc， 所述中内胚层分化发育相关因子优选为GATA3, GATA6, GATA4, PAX1，SOX7, CEBPa，HNF4a或 GRB2中的至少一个，所述中内胚层分化发育相关因子更优选为GATA3, GATA6, PAX1中的至 少一个。
11. 权利要求1的用途或权利要求2-3、6-7中任一项的方法或权利要求9-10的试剂 盒，其中所述外胚层分化发育相关因子包括SOX1，SOX3或GMNN中的至少一个，例如，GMNN。
12. 权利要求1-11任一项的用途、方法或试剂盒，其中所述诱导因子是DNA，mRNA或蛋 白形式。
13. 权利要求2-4和6-12中任一项的方法或试剂盒制备的诱导多潜能干细胞。
14. 权利要求1、5、11或12中任一项的用途，其中所述外胚层分化发育相关因子和/或 中内胚层分化发育相关因子用于制备诱导多潜能干细胞。
15. 权利要求1、5、11或12中任一项的用途，其中所述外胚层分化发育相关因子和/或 中内胚层分化发育相关因子用于提高重编程效率。
【文档编号】C12N5/10GK104120107SQ201310156718
【公开日】2014年10月29日 申请日期:2013年4月28日 优先权日:2013年4月28日
【发明者】邓宏魁, 赵扬, 舒健, 吴晨, 吴业涛 申请人:北京大学