染色体核型分析骨髓g带制备方法
【专利摘要】本发明公开了一种医学检验领域中用于染色体核型分析骨髓G带制备方法，包括在终止培养时，将溴化乙锭和秋水仙胺加入到培养基中。在终止细胞培养时加入一定量的溴化乙锭（EB）可以使分裂相中染色体的长度更长，带纹更加清晰，具有省时、省力的优势，且准确性更高，在医学检验领域具有更广泛的应用前景。
【专利说明】染色体核型分析骨髓G带制备方法
【技术领域】
[0001]本发明属生物【技术领域】，特别涉及一种医学检验领域中用于染色体核型分析骨髓G带制备的方法。
[0002]
【背景技术】
[0003]G显带因为染色体主要是被Giemsa染料染色后而显带，故称之为G显带技术，其所显示的带纹分布在整个染色体上。人们将用各种不同的方法，以及用不同的染料处理染色体标本后，使每条染色体上出现明暗相间，或深浅不同带纹的技术称为显带技术(bandingtechnique)。本世纪70年代以来，显带技术得到了很大发展，且在众多的显带技术中(Q带、G带、C带、R带、T带)，G带是目前被广泛应用的一种带型。
[0004]研究发现，人染色体标本经胰蛋白酶、NaOH、柠檬酸盐或尿素等试剂处理后，再用Giemsa染色,可使每条染色体上显示出深浅交替的横纹,这就是染色体的G带。每条染色体都有其较为恒定的带纹特征，所以G显带后，可以较为准确的识别每条染色体，并可发现染色体上较细微的结构畸变。
[0005]近年来，随着分子生物学与细胞遗传学的发展，骨髓染色体核型分析在血液系统疾病的诊断、治疗和预后中发挥了越来越重要的作用。骨髓染色体的制备因骨髓中有大量脂肪颗粒的干扰，骨髓中各种细胞系的细胞周期不固定，不统一，难以区别对待而使得骨髓染色体分裂指数低，染色体短粗，分散度差，且成本较高。
[0006]因此，建立一种具有分裂相多、分散度好、带纹清晰、长度适中等特征的骨髓G带制作方法尤为重要。
[0007]
【发明内容】
[0008]为了克服现有技术中的存在的问题，本发明提供了一种染色体核型分析骨髓G带制备方法，包括步骤:
(A)接种:将骨髓细胞接种到骨髓细胞培养基中；
(B)终止培养:将溴化乙锭和秋水仙胺加入到步骤(A)所述的培养基中；
(C)收取骨髓细胞培养物，用于染色体制片；
(D)染色体标本制片:利用染料染色后获得具有G显带的染色体标本。
[0009]进 一步地，溴化乙锭的浓度为1.5~5.5mg/ml，秋水仙胺的浓度为8~15μ g/ml。
[0010]进一步地，以培养基用量为5ml计，加入50 μ I的溴化乙锭和25 μ I的秋水仙胺。
[0011]进一步地，以培养基用量为5ml计，加入将50 μ I浓度为3mg/ml的溴化乙锭和25 μ I浓度为12 μ g/ml的秋水仙胺。
[0012]进一步地，终止培养时，将溴化乙锭和秋水仙胺加入培养基，摇晃均匀后37°C，5.0%C02培养箱孵育1小时。[0013]进一步地，收取骨髓细胞培养物的方法包括:
(1)离心获得骨髓细胞；
(2)将步骤(1)中的骨髓细胞进行低渗处理；
(3)将步骤(2)中的骨髓细胞用固定液进行预固定；
(4)将步骤(3)中的骨髓细胞用固定液固定；
(5 )将固定后的骨髓细胞制成浓度适中的悬液用于G带制片。
[0014]进一步地，染色体制片的方法包括:
a.玻片的准备；
b.滴片；
c.烤片老化；
d.配制消化液；
e.配制染色液；
进一步地，所述 的染料为Giemsa。
[0015]进一步地,所述的Giemsa染料与pH6.8的磷酸缓冲液按照1:20混合使用。
[0016]进一步地，将骨髓细胞以I~3X IO6个/ml的密度接种到骨髓细胞培养基中，放入37°C，5.0%C02培养箱培养24小时。
[0017]本发明的有益效果是:在终止细胞培养时加入一定量的溴化乙锭(EB)可以使染色体长度增加，使分裂相中染色体的长度更长，带纹更加清晰，具有省时、省力的优势，且准确性更高，在医学检验领域具有更广泛的应用前景。
[0018]
【专利附图】
【附图说明】
[0019]图1是利用实验组I所得染色体标本镜检结果。
[0020]图2是利用实验组2所得染色体标本镜检结果。
[0021 ] 图3是利用实验组3所得染色体标本镜检结果。
[0022]图4是利用对照组所得染色体标本镜检结果。
【具体实施方式】
[0023]下面结合具体实施例，进一步阐述本发明。
[0024]实施例1配制骨髓细胞培养终止液
骨髓细胞培养终止液包括1.5~5.5mg/ml的溴化乙锭和8~15 μ g/ml的秋水仙胺。
[0025]其中所述溴化乙锭和秋水仙胺的配制方法可以采用本实施例所述的方法，也可以采用本领域其它的方法配制。
[0026]A配制溴化乙锭
a.配制储藏液(浓度为9mg/ml)
在100ml蒸馏水中加入0.9g溴化乙锭，磁力搅拌数小时以确保其完全溶解，然后用铝箔包裹容器或转移至棕色瓶中，保存于室温。
[0027]b.配制工作液(浓度为3mg/ml)
储藏液以1:2 (EBiddH2O)的比例稀释成浓度为3mg/ml的工作液。[0028]B配制秋水仙胺
a.配制储藏液(浓度为120 μ g/ml)
称取12 mg秋水仙胺，加入8.5g/L NaCl溶液lOOmL，待完全溶解后，经5.516 X IO4Pa(81bf/in2) 15min高压蒸汽灭菌后避光保存于4°C冰箱中。
[0029]b.配制工作液(浓度为12 μ g /ml)
取120μ g/ml秋水仙胺溶液ImL加入8.5g/L NaCl溶液9mL即为12Pg/mL的秋水仙胺。
[0030]实施例2制备骨髓染色体标本
本实施例按如下方法制备骨髓细胞染色体标本。包括以下步骤:
(A)接种:将骨髓细胞接种到骨髓细胞培养基中；
(B)终止培养:将实施例1中所述的终止液加入到步骤(A)培养基中；
(C)收取骨髓细胞培养物，用于染色体制片；
(D)染色体标本制片:利用染料染色后获得具有G显带的染色体标本。
[0031]在本实施例中以培养基用量为5ml计，加入50 μ I浓度为1.5~5.5mg/ml的溴化乙锭和25 μ I浓度为8~15 μ g/ml的秋水仙胺。
[0032]在本实施例中 终止培养时，将溴化乙锭和秋水仙胺加入培养基，摇晃均匀后37°C，5.0%C02培养箱孵育I小时。
[0033]其中将骨髓细胞以I~3X IO6个/ml的密度接种到骨髓培养基中，放入37°C，
5.0%C02培养箱培养24小时。所得骨髓培养物可用于骨髓染色体制片。
[0034]其中，收取骨髓细胞培养物可按如下方法收集，也可按本领域常用的其它方法收集。
[0035](I)温和的摇晃培养瓶，并将培养物转入相应的15ml离心管中。抒紧培养瓶盖，并确保样品没有相混。1，000 rpm离心lOmin。吸去上清液，留下约0.5到1.0 ml涡旋混匀。
[0036](2)低渗:加入IOml 37°C温箱预热的0.075M KCl溶液。涡旋或反复颠倒几次使其与样品混匀，37°C水浴孵育20~30min，期间将离心管左右摇晃三次以使细胞低渗均匀。
[0037](3)预固定:低渗结束后加入Iml的固定液(甲醇:冰醋酸=3:1)，拧紧盖子并反复颠倒三次。I, 000 rpm离心lOmin。吸去上清液，留下约0.5到1.0 ml。
[0038](4)将沉淀物涡旋混匀后，逐滴加入8ml新鲜固定液。
[0039](5)润旋混匀后1，000 rpm离心lOmin。吸去上清液，留下约0.5到1.0 ml。
[0040](6)混匀细胞沉淀后加入8ml新鲜固定液。
[0041](7)同 5 和 6。
[0042](8)润旋混匀后1，000 rpm离心lOmin。吸去上清液，留适量固定液,并加入数滴冰醋酸以制成浓度合适的细胞悬液，静置15min后制片。
[0043]其中本实施例中的染色体标本制片方法如下:
a.玻片的准备:提前将玻片用1% HCl浸泡过夜，用大量的清水进行冲洗后浸于95%乙醇中备用。使用前将浸泡的玻片取出，用大量清水清洗后放置于2-8°C冰箱中待用。
[0044]b.滴片:吸取细胞悬液后，将滴管置于一定的高度，滴4-5滴细胞悬液于玻片上，使细胞向玻片标记端远侧流动。适当过火，帮助染色体分散。一般一个病人滴片1-2张。
[0045]c.烤片老化:置于60°C烤箱中烘烤过夜或80°C烘烤I小时。[0046]d.配制胰酶:新鲜配制50ml 0.3%胰蛋白酶(用HANKS缓冲液稀释)溶液置于染片缸中，37°C水浴箱中预热半小时以上。胰蛋白酶和HANKS缓冲液均购自Invitrogen公司。
[0047]e.配制Giemsa染液:临用时将Gimesa原液与pH6.8的磷酸缓冲液按照1:20混合使用。具体的配制方法可以按下列步骤的a和b，也可按本领域常用的其它方法配制。
[0048]a.制备贮备液
Giemsa 粉Ig
纯甘油66ml
甲醇66ml
先将Giemsa粉置于研钵中加少量甘油，充分研磨，呈无颗粒的糊状，再将全部甘油加入，放入56°C温箱中2小时，然后加入甲醇，保存于棕色瓶中；一般两周后使用为好；
b.制备工作液
临用时将a步骤中的贮备液与pH6.8的磷酸缓冲液按照1:20混合。
[0049]f.用胰酶消化染色后用于染色体核型分析。
[0050]实施例3对比实 验
取同一样本经培养后的骨髓细胞，进行对比实验。采用实施例1和实施例2的方法设立实验组1、实验组2和实验组3，三组实验组分别采用不同浓度的细胞培养终止液，其中:实验组I的终止液配方为:
溴化乙锭1.5mg/ml
秋水仙胺8 μ g/ml
实验组2的终止液配方为:
溴化乙锭5.5mg/ml
秋水仙胺15 μ g/ml
实验组3的终止液配方为:
溴化乙锭3mg/ml
秋水仙胺12 μ g/ml
设立对照组，其中:
对照组的终止液配方为:
秋水仙胺12 μ g/ml
对照组制备骨髓细胞染色体标本的步骤包括:(A)接种:将骨髓细胞接种到骨髓细胞培养基中；(B)终止培养:将终止液加入到步骤(A)培养基中，以培养基用量为5ml计，加入25 μ I的秋水仙胺；(C)收取骨髓细胞培养物，用于染色体制片；(D)染色体标本制片:利用染料染色后获得具有G显带的染色体标本。
[0051]在镜下观察制片结果。使用的显微镜型号为:Leica DM2500。图1至图4分别是实验组1、实验组2、实验组3和对照组的镜检结果图。从图1至3的镜检照片中很清晰地看到，使用本发明方法进行G带显色，分裂相中染色体的长度更长，带纹更加清晰，因而诊断时，更加省时省力，诊断结果更加准确。
【权利要求】
1.一种染色体核型分析骨髓G带制备方法，包括步骤: (A)接种:将骨髓细胞接种到骨髓细胞培养基中； (B)终止培养:将溴化乙锭和秋水仙胺加入到步骤(A)所述的培养基中； (C)收取骨髓细胞培养物，用于染色体制片； (D)染色体标本制片:利用染料染色后获得具有G显带的染色体标本。
2.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，溴化乙锭的浓度为1.5~5.5mg/ml,秋水仙胺的浓度为8~15 μ g/mlo
3.根据权利要求2所述的制备方法，其特征在于，以培养基用量为5ml计，加入50μ I的溴化乙锭和25 μ I的秋水仙胺。
4.根据权利要求3所述的制备方法，其特征在于，以培养基用量为5ml计，加入将50 μ I浓度为3mg/ml的溴化乙锭和25 μ I浓度为12 μ g/ml的秋水仙胺。
5.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，终止培养时，将溴化乙锭和秋水仙胺加入培养基，摇晃均匀后37°C，5.0%C02培养箱孵育I小时。
6.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，收取骨髓细胞培养物的方法包括:
(1)离心获得骨髓细胞；
(2)将步骤(1)中的骨髓细胞进行低渗处理； (3)将步骤(2)中的骨髓细胞用固定液进行预固定；
(4)将步骤(3)中的骨髓细胞用固定液固定； (5 )将固定后的骨髓细胞制成浓度适中的悬液用于G带制片。
7.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，染色体制片的方法包括:
a.玻片的准备；
b.滴片；
c.烤片老化；
d.配制消化液； e.配制染色液；
f.制片。
8.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述的染料为Giemsa。
9.根据权利要求8所述的制备方法,其特征在于，所述的Giemsa染料与pH6.8的磷酸缓冲液按照1:20混合使用。
10.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，将骨髓细胞以I~3X106个/ml的密度接种到骨髓细胞培养基中，放入37°C，5.0%C02培养箱培养24小时。
【文档编号】C12Q1/68GK103740811SQ201310592287
【公开日】2014年4月23日 申请日期:2013年11月22日 优先权日:2013年11月22日
【发明者】程建兵, 夏成青, 陈红梅, 郭福晓, 生帅 申请人:南京艾迪康医学检验所有限公司