本发明属于乳液制备技术领域，具体涉及一种蛋白稳定的高内相水包油型乳液及制备方法。
背景技术：
高内相乳液通常是指分散相(内相)体积百分比大于74％的乳液，在化工产品、日化用品、药品、食品及保健品行业具有出色的应用现状与巨大的应用潜力。但是，常见的高内相乳液的制备与稳定通常需要大量的表面活性剂，而这些表面活性剂通常在其生产制备过程中产生或本身具有对人体健康或生态环境不利的因素。因此，利用于人体无害、环境友好或可降解型的乳化剂制备高内相乳液具有十分重要的社会、环境与经济效益。近年来，满足以上要求的纳米级的两亲性(亲水性与亲油性)蛋白已成为食品领域常见的用以制备水包油型乳液的乳化剂，以达到提高油相的贮存稳定性或实现油溶性生物活性物质的靶向缓释的目的。而利用来源充足的动植物蛋白制备应用范围更为广泛的高内相水包油型乳液的报道与发明依然很少。
中国发明专利申请2016110095755与201611004761x分别开了利用小麦醇溶蛋白与玉米醇溶蛋白制备高内相水包油型乳液的方法。但这两种方法均建立在首先通过繁琐的化学或物理方法处理(如反溶剂法)制备两种蛋白胶体颗粒的基础上，操作不便，成本较高。因此，利用天然或简单处理的蛋白制备新型高内相水包油型乳液具有更重要的意义。
常见的具有表面活性的纳米级蛋白可分为无序蛋白与球蛋白。其中，最典型的常见的无序蛋白为酪蛋白酸钠；而球蛋白又可分为单体(血清蛋白、卵清蛋白、溶菌酶等)、二聚体(β-乳球蛋白等)、三聚体(豆类7s蛋白等)、六聚体(豆类11s蛋白等)与混合球蛋白(大豆分离蛋白、乳清分离蛋白等)等。这些蛋白均含有部分疏水基团(通常掩埋于内部)与部分携带电荷的极性基团，从而赋予其优良的两亲性，能够吸附在油水界面，降低界面张力，属于理想的水包油型乳化剂。但除传统表面活性剂外，目前流行的高内相水包油型乳液一般由改性后的微米级的无机或有机pickering颗粒或人工合成高分子稳定，操作过程难免出现较多有毒有害的环节或产物。并且相对较大的粒径虽提高了这些pickering颗粒从油水界面解吸所需最低能量，但也削弱了其相应的乳化效率。有关利用来源于自然界的乳化剂进行高内相水包油型乳液制备的报道与发明十分有限，利用天然的或简单处理的纳米级动植物蛋白制备新型高内相水包油型乳液并予以应用的报道与发明更是未见公开。综上，利用天然的或简单处理的蛋白制备的高内相水包油型乳液属于一种新型高内相水包油型乳液，这种乳液的制备极具创新性、挑战性与应用前景。
技术实现要素：
针对以上现有技术存在的缺点和不足之处，本发明的首要目的在于提供一种蛋白稳定的高内相水包油型乳液的制备方法。
本发明的另一目的在于提供一种通过上述方法制备得到的蛋白稳定的高内相水包油型乳液。
本发明目的通过以下技术方案实现：
一种蛋白稳定的高内相水包油型乳液的制备方法，具体制备步骤如下：
将蛋白分散于水中，充分水化后得到水相蛋白溶液，然后加入油相乳化，直接得到油相体积百分含量不低于75％的蛋白稳定的高内相水包油型乳液，或待乳液静置分层后去除下层水相，得到油相体积百分含量不低于75％的蛋白稳定的高内相水包油型乳液；
所述蛋白为酪蛋白酸钠、血清蛋白、卵清蛋白、溶菌酶、β-乳球蛋白、豆类7s蛋白、豆类11s蛋白、大豆分离蛋白或乳清分离蛋白中的至少一种；所述油相为正十二烷、含有β-胡萝卜素的正十二烷、正己烷、柠檬精油、玫瑰精油、大豆油、花生油、橄榄油和调和油中的至少一种。
优选地，所述蛋白稳定的高内相水包油型乳液中油相体积百分含量为75％～92％。更优选为80％～92％。
优选地，所述水相蛋白溶液中进一步添加无机盐离子或多糖。
优选地，所述水相蛋白溶液乳化前进一步加热预处理。
优选地，所述水相蛋白溶液中蛋白的质量浓度为0.2％～5.0％。
优选地，所述乳化是指采用剪切均质乳化、超声均质乳化和高压微射流均质乳化中的至少一种。所述剪切均质乳化的转速为2000～30000rpm，时间为0.5～3min；所述超声均质乳化的功率为100～900w，间歇时间为1～5s，总时间为0.5～3min；所述高压微射流均质乳化的压力为40～100mpa，处理次数为1～3次。
一种蛋白稳定的高内相水包油型乳液，通过上述方法制备得到。
本发明的制备方法及所得到的产物具有如下优点及有益效果：
(1)发明所用动植物蛋白来源广泛、制取成本低，属环境友好、可降解型乳化剂，并且对人体无害，甚至具备一定营养价值。
(2)本发明所用蛋白乳化效率高，在无需任何凝固剂或表面活性剂辅助的前提下，仅需低浓度(最低可达0.04g/100g于整个乳液体系)的蛋白即可成功制备稳定的高内相水包油型乳液。
(3)本发明所得高内相水包油型乳液可有效包埋体积百分比超过90％的油相。
(4)本发明所得高内相水包油型乳液粘弹性好、热稳定与贮存稳定性高，对油相具有优异的保护或控释效果；凝胶性好，可塑性与重塑性强，利于进一步加工。
(5)本发明的制备方法对设备要求低、简单易行、成本低、能耗低，适合大规模工业化生产与加工，所得高内相水包油型乳液在化工产品、日化用品、药品、食品及保健品行业具有广阔的应用空间。
附图说明
图1是本发明实施例1所得不同油相体积百分比的水包油型乳液于室温静置2h后的外观图。
图2是本发明实施例1所得油相体积百分比为80％的高内相水包油型乳液于室温静置2h后的光学显微镜图。
图3是本发明实施例1所得油相体积百分比为50％的乳液于室温静置2h后，去除下层析出水相得到的浓缩型高内相水包油型乳液光学显微镜图。
图4是本发明实施例3只剪切均质所得油相体积百分比为50％的乳液于室温静置2h后，除去下层析出水相得到的浓缩型高内相水包油型乳液光学显微镜图。
图5是本发明实施例3先剪切均质后超声均质法制备的油相体积百分比为50％的乳液，并于室温静置2h后，除去下层析出水相得到的浓缩型高内相水包油型乳液光学显微镜图。
图6是本发明实施例3先剪切均质后高压微射流均质法制备的油相体积百分比为50％的乳液于室温静置2h后，除去下层析出水相得到的浓缩型高内相水包油型乳液光学显微镜图。
图7是本发明实施例4卵清蛋白在不同蛋白质量浓度时制备的油相体积百分比为80％的凝胶状高内相水包油型乳液具有优良可塑性与重塑性的效果图。
图8是本发明实施例4卵清蛋白在蛋白质量浓度为0.16g/100g(于整个乳液体系而言)时制备的油相体积百分比为80％的高内相水包油型乳液的热处理与冻融处理前后外观图。
图9是本发明实施例4卵清蛋白在蛋白质量浓度低至0.04g/100g(于整个乳液体系而言)时制备的油相体积百分比为80％的高内相水包油型乳液于室温贮存60d前后的外观图、光学显微镜图与粘弹性流变学剪切频率扫描图。
具体实施方式
下面结合实施例及附图对本发明作进一步详细的描述，但本发明的实施方式不限于此。
实施例1
(1)准确称取1g酪蛋白酸钠喷雾干燥样品，将其分散于99g蒸馏水中(默认蒸馏水的密度为1.00g/ml)，并于室温连续搅拌2h，使蛋白充分分散。
(2)将所得酪蛋白酸钠分散液于4℃低温静置12h(静置前于蛋白分散液中添加质量浓度为0.02g/100g的叠氮钠，防止微生物的生长)，使蛋白充分水化，以获得质量浓度为1g/100g的酪蛋白酸钠贮存液。
(3)制备乳液前，将酪蛋白酸钠贮存液于室温搅拌0.5h，使其温度恢复至室温，并促进蛋白分散均匀。
(4)分别取4.5ml、4.0ml、3.5ml、3.0ml、2.5ml、2.0ml、1.5ml、1.25ml、1.0ml、0.5ml、0.45ml与0.4ml酪蛋白酸钠贮存液于内径为2.0cm的样品瓶，作为乳液水相。
(5)然后依次分别添加0.5ml、1.0ml、1.5ml、2.0ml、2.5ml、3.0ml、3.5ml、3.75ml、4.0ml、4.55ml与4.6ml正十二烷于水相上部，无需任何混匀操作。每个样品瓶中的油水体系总体积均为5ml。
(6)对每个油水混合体系进行剪切乳化。其中，所用剪切机械头直径为1cm，剪切速率为5000rpm，剪切时间为2min。对于油相体积超过90％的乳液剪切均质采用剪切速率为2800rpm，剪切时间为1min。
本实施例制备的酪蛋白酸钠乳液中蛋白质量浓度均为1g/100g(于水相而言)，通过包埋不同油相体积，分别得到不同油相体积百分比(10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、91％与92％)的酪蛋白酸钠水包油型乳液。所得乳液均于室温静置2h，然后用于观察与其他测试。
所得不同油相体积百分比的水包油型乳液于室温静置2h后的外观图如图1所示，当油相百分比等于或低于70％时，所得乳液分层明显。并且随着油相体积百分比的增加，所得乳液的乳析指数逐渐降低。当油相体积百分比达到或超过80％时，将所得乳液转移至内径1cm离心管后，倒置不流动，乳液的油滴粒径较小且均一，所得油相体积百分比为80％的高内相水包油型乳液于室温静置2h后的光学显微镜图如图2所示。取一定量所得乳液进行粘弹性流变学测试，所用平板直径为2.783cm，测试温度为25℃，高度为0.1cm，应变为0.5％，剪切频率范围为0.1hz～10hz(测试前将平板边缘多余乳液擦拭干净)。除另作说明外，以下实施例中粘弹性流变学测试所用条件同实施例1。在所测剪切频率范围内，乳液的弹性模量与粘性模量均不受剪切频率变化的影响。在剪切频率为1hz时，所得油相体积百分比为80％与92％的乳液的弹性模量分别为153pa与549pa，粘性模量分别为48pa与66pa。这表明所得油相体积百分等于或大于80％的乳液具有优良的粘弹性。
本实施例将低油相(油相体积百分比低于75％)乳液静置分层稳定后，用带针头注射器将底部析出的水相全部抽取出来，水相回收率超过92％，剩余的乳化层则为油相体积百分比超过75％水包油型乳液。所得油相体积百分比为50％的乳液于室温静置2h后，去除下层析出水相得到的浓缩型高内相水包油型乳液光学显微镜图如图3所示。所得高内相水包油型乳液属浓缩型高内相乳液，同样具有倒置不流动，油滴致密且粒径均一的特点。
实施例2
按照实施例1的方法，制备牛血清蛋白稳定的浓缩型高内相水包油型乳液。除蛋白换作牛血清蛋白冻干样品，油相换作大豆油，乳化方式换作先剪切均质(剪切速率为5000rpm，剪切时间为2min)再超声均质(超声功率为285w，超声间歇时间为3s，超声处理总时间为2min)外，其他操作同实施例1。对比操作为只采用相同参数的剪切均质。待乳液静置分层稳定后，用带针头注射器将底部析出的水相全部抽取出来，水相回收率超过92％，剩余的乳化层则为油相体积百分比超过75％水包油型乳液。所得浓缩型高内相水包油型乳液倒置不流动，且具有比只剪切均质所得浓缩型高内相乳液更小的油滴粒径与更高的弹性模量。
实施例3
按照实施例1的方法，制备溶菌酶稳定的浓缩型高内相水包油型乳液，除蛋白换作溶菌酶冻干样品，油相换作花生油，乳化方式换作先剪切均质(剪切速率为5000rpm，剪切时间为2min)再高压微射流均质(均质压力为40mpa，处理次数为1次)外，其他操作同实施例1。对比操作为只采用相同参数的剪切均质或按照实施例2所述方法的先剪切均质再超声均质。待乳液静置分层稳定后，用带针头注射器将底部析出的水相全部抽取出来，水相回收率超过92％，剩余的乳化层则为油相体积百分比超过75％水包油型乳液。所得油相体积百分比为50％的乳液于室温静置2h后，去除下层析出水相得到的浓缩型高内相水包油型乳液倒置不流动，且油滴粒径为纳米级，其光学显微镜图如图6所示。具有比只剪切均质(显微镜图见图4)或超声均质(显微镜图见图5)所得浓缩型高内相乳液更小的油滴粒径与更高的弹性模量。
实施例4
(1)准确称取5g卵清蛋白冻干样品，将其分散于95g蒸馏水中，并于室温连续搅拌2h，使卵清蛋白充分分散。
(2)将所得卵清蛋白分散液于4℃低温静置12h(静置前于卵清蛋白分散液中添加质量浓度为0.02g/100g的叠氮钠，防止微生物的生长)，使卵清蛋白充分水化，以所得质量浓度为5g/100g的卵清蛋白贮存液。
(3)制备乳液前，将卵清蛋白贮存液于室温搅拌0.5h，使其温度恢复至室温，并促进蛋白颗粒分散均匀。
(4)分别用蒸馏水对卵清蛋白贮存液进行稀释，以得到质量浓度分别为0.2g/100g～5.0g/100g的卵清蛋白溶液。
(5)分别取1.0ml不同质量浓度的卵清蛋白溶液于内径为2.0cm的样品瓶或塑料注射器(均质时保证注射孔密封)，然后依次分别添加4.0ml橄榄油于卵清蛋白溶液上部，无需任何混匀操作。每个样品瓶中的油水体系总体积均为5ml。
(6)对每个油水体系进行剪切乳化。对于水相中卵清蛋白质量浓度为0.2g/100g的乳液剪切均质采用剪切速率为2800rpm，剪切时间为0.5min。
本实施例制备的高内相水包油型乳液所含油相体积分数均为80％，分别得到不同卵清蛋白质量浓度(0.04g/100g～1g/100g于整个乳液体系。除另作说明外，以下实施例高内相乳液中蛋白质量浓度均对于整个乳液体系而言)的稳定的凝胶状高内相水包油型乳液。所得乳液均于室温静置2h，然后用于观察与其他测试。
观察结果表明，在蛋白质量浓度为0.04g/100g～1g/100g时，所得乳液均能倒置不流动。卵清蛋白在不同蛋白质量浓度时制备的油相体积百分比为80％的凝胶状高内相水包油型乳液具有优良可塑性与重塑性的效果图如图7所示，所得高内相乳液呈明显凝胶状，即从注射器转移至桌面后的乳液仍旧保持完整圆柱状或剪切均质过程中的乳液直接以圆柱状形态粘附于剪切机械头。并且这种凝胶状高内相乳液具有一定的可塑性(用内径0.3cm的吸管可从得到的乳液体系中吸取转移出直径为0.3cm形态稳定的小圆柱体，且交叉互搭在一起的小圆柱体不能融合)与重塑性(将分离开的凝胶状乳液在注射孔密封的塑料注射器中与空气一起被推挤压缩，即可完成凝胶状乳液的重新融合)，适用于后续加工。粘弹性流变学测试结果同样表明所得乳液具有较强的凝胶强度。在剪切频率为1hz时，所得乳液的弹性模量先由822pa(卵清蛋白质量浓度为0.04g/100g)增至1205pa(卵清蛋白质量浓度为0.32g/100g)，再降至932pa(卵清蛋白质量浓度为0.38g/100g)，最后增至1400pa(卵清蛋白质量浓度为0.4g/100g)。
卵清蛋白在蛋白质量浓度为0.16g/100g(于整个乳液体系而言)时制备的油相体积百分比为80％的高内相水包油型乳液的热处理与冻融处理前后外观图如图8所示，所得乳液具有优良的热稳定性与值得利用的冻融稳定性。将所得乳液(样品瓶严格密封)沸水浴15min，然后立即冰浴5min，使其温度冷却至室温。结果表明，加热后的乳液凝胶强度明显增加。在剪切频率为1hz时，蛋白质量浓度分别为0.04g/100g、0.16g/100g、0.28g/100g与0.4g/100g时的乳液加热后的的弹性模量依次分别由760pa、1001pa、1311pa与1119pa增至946pa、2013pa、4267pa与4410pa。这说明，所得新型的蛋白稳定的凝胶状高内相水包油型乳液具备优异的热稳定性甚至热致增强凝胶强度的能力。将所得乳液均于-20℃冷冻24h，然后于25℃解冻4h至其温度恢复至室温。观察破乳情况。冻融结果表明，所得乳液历经冻融一次基本完全破乳。因此，所得蛋白稳定的凝胶状高内相水包油型乳液可作为易燃易爆或有毒有机液体的贮存与运输载体，且当被包埋有机液体被需要时，一次简单的冻融处理即可重新获得有机液体。而将先沸水浴(15min)后冰浴(5min)处理后的高蛋白浓度(卵清蛋白浓度大于0.6g/100)的凝胶状高内相乳液进行相同的冻融处理后，乳液基本保持原有的外观与微观形态，不破乳，冻融稳定性佳。
此外，卵清蛋白在蛋白质量浓度低至0.04g/100g(于整个乳液体系而言)时制备的油相体积百分比为80％的高内相水包油型乳液于室温贮存60d前后的外观图、光学显微镜图与粘弹性流变学剪切频率扫描图如图9所示，在蛋白质量浓度低至0.04g/100g，时制备的高内相乳液在贮存60d后，其外观与微观结构仍保持稳定，凝胶强度几乎不变，这说明所得乳液具有优良的贮存稳定性。
实施例5
按照实施例4的方法，制备油相体积分数均为80％的蛋白稳定的高内相水包油型乳液。不同的是蛋白换作酪蛋白酸钠、血清蛋白、卵清蛋白、溶菌酶、β-乳球蛋白、豆类7s蛋白、豆类11s蛋白、大豆分离蛋白或乳清分离蛋白的冻干样品或喷雾干燥样品，乳液中蛋白质量浓度分别为0.16g/100g、0.28g/100g与0.4g/100g，油相为含有β-胡萝卜素(质量浓度为0.003g/100g)的正十二烷溶液。将所得含有β-胡萝卜素的乳液(样品瓶严格密封)于暗处95℃恒温水浴5h，以促进β-胡萝卜素的氧化与降解。热处理后的乳液立即冰浴使其温度恢复至室温，然后冻融处理，从破乳体系中吸取含有β-胡萝卜素的油相。采用吸光光度法测定β-胡萝卜素的存留率。
结果表明，95℃密封避光热处理5h后，包埋在所有所得乳液中的β-胡萝卜素损失极低，存留率均保持在98％以上；而同样处理的未被乳液包埋的β-胡萝卜素损失明显较高，存留率约为85.7％。因此，结合动植物蛋白的可消化性，这种新型的蛋白稳定的高内相水包油型乳液可作为易与空气接触氧化或易光降解的油溶性生物活性物质的包埋与口服递送缓释载体(油相须改为对人体无害的有机溶剂)，可明显提高被包埋生物活性物质的贮存稳定性，并实现其人体内持续缓慢释放。
实施例6
按照实施例4的方法，制备油相体积分数均为80％的蛋白稳定的高内相水包油型乳液。不同的是蛋白换作酪蛋白酸钠、血清蛋白、卵清蛋白、溶菌酶、β-乳球蛋白、豆类7s蛋白、豆类11s蛋白、大豆分离蛋白或乳清分离蛋白的冻干样品或喷雾干燥样品，乳液中蛋白质量浓度分别为0.16g/100g、0.28g/100g与0.4g/100g，油相为正己烷。将所得乳液置于通风橱内(样品瓶敞口)，于室温静置2h，使正己烷得以挥发。然后对乳液进行冻融破乳处理，通过均质前与破乳后乳液体系高度差法计算正己烷的存留率。
结果表明，挥发试验完毕后，正己烷在卵清蛋白质量浓度分别为0.04g/100g、0.16g/100g、0.28g/100g与0.4g/100g时的乳液中的存留率依次分别约为95.3％、96.2％、97.6％与98.6％；而同样处理的不含任何乳化剂的油水混合物中的正己烷则挥发较严重，其存留率仅约为56.2％。因此，这种新型的蛋白稳定的高内相水包油型乳液可作为易挥发有机液体的包埋载体，结合其他密封措施，能有效抑制其挥发，利于其长期贮存与运输。
实施例7
按照实施例4的方法，制备油相体积分数均为80％的蛋白稳定的高内相水包油型乳液。不同的是蛋白换作酪蛋白酸钠、血清蛋白、卵清蛋白、溶菌酶、β-乳球蛋白、豆类7s蛋白、豆类11s蛋白、大豆分离蛋白或乳清分离蛋白的冻干样品或喷雾干燥样品，乳液中蛋白质量浓度分别为0.16g/100g、0.28g/100g与0.4g/100g，油相为柠檬精油或玫瑰精油。将所得乳液于45℃恒温鼓风干燥箱内加促柠檬精油挥发(样品瓶敞口)，静置14d时间。前7d内，每隔12h取出乳液进行气味辨识；后7d内，则每隔24h取出乳液进行气味辨识。
结果表明，14d内，在40℃加促挥发的前提下，柠檬精油或玫瑰精油在所得乳液中均得到缓慢持续地释放，每次气味辨识都能嗅到明显的柠檬气味或玫瑰香味。而未包埋的柠檬精油或玫瑰精油则挥发较快，12d后几乎嗅不到任何气味，精油体积显著减少。因此，这种新型的蛋白稳定的高内相水包油型乳液可作为精油的包埋与缓释载体，实现精油的长时间的缓慢持续释放。
实施例8
按照实施例4的方法，制备油相体积分数均为80％的蛋白稳定的高内相水包油型乳液，不同的是，蛋白换作大豆7s蛋白冻干样品、芸豆7s蛋白冻干样品、大豆11s蛋白冻干样品、大豆分离蛋白冻干样品或乳清分离蛋白喷雾干燥样品，乳液中蛋白质量浓度固定为0.2g/100g，且作为水相的蛋白溶液中分别含有0mmol/l、50mmol/l、100mmol/l、200mmol/l与300mmol/l的氯化钠，油相为调和油。
结果表明，于室温避光静置2h后，全部能倒置不流动。所得乳液全部为凝胶状高内相乳液。按照实施例4所述方法，测定所得乳液的可塑性与重塑性，结果表明所得乳液均具有良好的可塑性与重塑性，适用于后续加工。粘弹性流变学测试结果表明，随着水相中氯化钠浓度(离子强度)逐渐增加，所得乳液的弹性模量先显著上升后缓慢下降。在水相中氯化钠浓度为50mmol/l或100mmol/l制备的乳液的弹性模量最高，即凝胶强度最高。按照实施例4所述方法，测定所得乳液的热稳定性，结果表明所得乳液均具有良好的热稳定性与热致凝胶强度增强的特性。按照实施例4所述方法，测定所得乳液的冻融稳定性。结果表明，在水相含有不低于100mmol/l的氯化钠时制备的乳液，无论是否按照实施例4进行先沸水浴(15min)后冰浴(5min)处理，乳液均具有良好的冻融稳定性，冻融后乳液的外观与微观形态基本不变。因此，合适的离子强度可提高这种新型的蛋白稳定的高内相水包油型乳液的凝胶特性、可加工性与冻融稳定性。此外，所得乳液均具有优良的贮存稳定性，其贮存60d后的外观与微观结构仍保持稳定，凝胶强度几乎不变。
实施例9
按照实施例4的方法，制备油相体积分数均为80％的蛋白稳定的高内相水包油型乳液，不同的是，蛋白溶液换作预热处理过的大豆11s蛋白(冻干样品)溶液、β-乳球蛋白(冻干样品)与大豆11s蛋白(冻干样品)混合溶液(质量比为1:1)或黄原胶与大豆11s蛋白(冻干样品)混合溶液(质量比1:19)。其中，大豆11s蛋白溶液的预热处理操作为：将质量浓度为5g/100g的大豆11s蛋白贮存液沸水浴15min，然后立即冰浴5min，使其温度冷却至室温。
结果表明，于室温避光静置2h后，全部能倒置不流动。所得乳液全部为凝胶状高内相乳液。按照实施例4所述方法，测定所得乳液相关特性，结果表明所得乳液均具有良好的凝胶性、可塑性与重塑性，适用于后续加工；所得乳液均具有良好的热稳定性与热致凝胶强度增强的特性；在蛋白质量浓度超过0.6g/100g时先沸水浴(15min)后冰浴(5min)处理后的乳液均具有良好的冻融稳定性，多糖的引入(黄原胶)可提高所得乳液的冻融稳定性。此外，所得乳液均具有优良的贮存稳定性，其贮存60d后的外观与微观结构仍保持稳定，凝胶强度几乎不变。因此这种新型的特性优良的蛋白稳定的高内相水包油型乳液的水相中的动植物蛋白不限于简单的预热处理与否，不限于蛋白的种类，不限于多糖的引入与否。
上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其它的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方式，都包含在本发明的保护范围之内。