金纳米生物传感器及其制备方法和在汞离子检测中的应用与流程

本发明属于重金属检测技术领域，具体涉及一种金纳米生物传感器及其制备方法和在汞离子检测中的应用。

汞在生活和生产中应用非常广泛，在环境中存在着各种各样的污染源。汞污染的毒性非常大、污染源非常广，一旦进入生态系统，将会对动植物和人类的健康产生极大的危害，严重影响着威胁整个生态系统的安全。因此，设计一种快速、方便、高灵敏检测汞金属的方法也成为了人们的当务之急。传统检测汞的方法有：荧光分析、诱导耦合等离子体质譜、x射线吸收光谱、原子吸收或发射光谱，但是由于仪器昂贵、操作复杂、不利于现场检测等缺点，大大限制了应用。

近年来，金纳米粒子由于独特的结构和光学性质在生物传感和分子工程上有很广泛的应用，基于金纳米粒子的生物传感器也越来越受到人们的关注。willner课题组利用没有功能化的金纳米粒子和单链dna在加入汞离子前后的构型变化情况,成功实现了对汞离子的快速检测.不过，该方法需要引入有毒的掩蔽剂来避免二价铅离子的干扰。pang等设计了特定的dna序列用于改善该生物传感器的离子选择性，但是灵敏度过低，检测限为16nm。cheng把dna功能化的金纳米当作比色探针，设计了一种对汞离子的检测方法。然而，此方法选择性不高，因而在实际检测中受到了很多的限制。

技术实现要素：

本发明的内容就是提供了一种基于hg²⁺诱导的dna构型的变化和供受体之间的能量共振转移所设计的检测汞离子的生物传感器，并且实现了简单，快速，高选择性和高灵敏的特性。

为实现上述目的，本发明采用的技术方案是，一种金纳米生物传感器的制备方法，包括纳米金的制备、dna溶液的配制和dna修饰。

具体的包括以下步骤：一种金纳米生物传感器的制备方法，包括以下步骤：

（1）纳米金的制备：将100ml质量分数为0.01%的氯金酸水溶液，加热至沸腾，剧烈搅拌下快速加入3.5ml质量分数为1%的柠檬酸三钠溶液，溶液由浅黄色变为酒红色后，继续恒温加热搅拌15分钟，关闭热源，搅拌至室温，所得金纳米粒子经纤维素膜过滤，后再通过离心（4℃、10000r/min、10min）进行浓缩得到高浓度的纳米金溶液；

（2）dna溶液的配制：

将dna溶于含有100mmtcep的20mm的mops-hcl缓冲溶液(ph7.4)中，使dna最终浓度为100μm，将溶液混匀后，反应2h后备用；

所述dna由摩尔比为1︰5的短链dna(5'-sh-cccccccccc-3')和长链dna(5'-sh-c10-cttctttcttcccccttgtttgttg-fam-3'）组成；

（3）dna的修饰：

将步骤（2）所得dna溶液与步骤（1）所得高浓度的纳米金（aunps）溶液于10mm的mops-hcl缓冲溶液(ph7.4)中反应24小时后，向混合溶液中滴加1mnacl/100mmpbs(ph7.4)溶液，使nacl的最终浓度为0.1m,陈化40小时后，通过离心法（离心条件为：4℃、14000r/min、10min；然后用0.1mpbs洗涤3次，离心条件同上）将溶液中游离的dna除去。

本发明采用粒径为13±2nm的金纳米粒子。当金纳米粒子尺寸过大时，其表面具有不稳定性，容易聚合沉降，使检测剂失效（图1为35nm的纳米金透射电镜图）；尺寸过小时，修饰在金纳米粒子表面的dna又会包覆住金纳米，使得对汞离子检测的失效（图2为7nm的au-dna示意图）。因此我们采用粒径为13±2nm的金纳米粒子。

当金纳米粒子上修饰的dna数目较少时，金纳米粒子不能稳定存在，在陈化过程中极易团聚，无法得到aunps-dna纳米探针。在金纳米粒子表面修饰过多的dna时，aunps-dna拥有较强的静电排斥作用，在高盐情况下仍能稳定存在。当hg²⁺与aunps-dna的t碱基特异性结合时，dna的构象由直链折叠为发卡结构以此实现hg²⁺的检测，由于位阻效应使高密度的dna分子从金纳米粒子表面脱落到溶液中，导致背景信号高、灵敏度低，从而影响到荧光检测。因此，我们通过引入短链dna来调控金纳米粒子的修饰。我们同样也在长链dna的3′端追加了10个c碱基，这样引入的短链dna不会对发卡结构的形成产生空间位阻，短链dna可形成保护层，保护层可使得长链dna在修饰数目较少的情况下也不会造成金纳米粒子的团聚。图3为13nm左右aunps-dna的透射电镜图，由于dna磷酸骨架带有负电，静电斥力使得金核更加紧凑，故其粒径相比aunps更小些，外形呈球形，sh-dna的保护使得aunps-dna分散性更好。

本发明所设计的生物传感器灵敏度与长链dna-fam和短链dna的比率密切相关，在100nmhg²⁺存在下，使其nthehelperoligonucleotides:nthelongstrandsofdna–fam=1:2，1:3，1:4，1:5，1:6，1:7，通过对比5种不同修饰配比aunps-dna的荧光强度变化进行验证。最后发现纳米探针在比率(nthehelperoligonucleotides:nthelongstrandsofdna–fam)为1:2时，将会导致纳米颗粒在盐化过程中有纳米颗粒聚沉。当纳米探针上dna修饰的比率为1:3或1:4时，金纳米粒子比表面积比较大，表面修饰的dna密度较低时，由于金纳米粒子对荧光发色团fam有吸附作用，dna处于弓形状态，造成于荧光发色团fam与金纳米粒子距离拉近，因此hg²⁺的添加不会产生很大的荧光变化。当纳米探针上dna修饰的比率为1:6或1:7时，由于空间位阻和dna链之间存在静电斥力，hg²⁺添加后形成的发卡结构会使高密度的dna链从金纳米粒子表面脱落，造成背景信号高和低灵敏度，使得金纳米粒子不能完全猝灭荧光剂。因此我们采用纳米探针上dna修饰的比率为1:5作为本实验设计的生物传感修饰比率。

本发明采用两种长度不同的dna与纳米金制成捕获探针，其中长链dna为一端（5'端）带有巯基另一端（3'端）标记有荧光基团fam的单链dna，短链dna为仅在一端（5'端）带有巯基的单链dna；纳米金是整个探针的核心，dna分子利用所带的巯基通过金硫键自组装到纳米金表面上。处于随意状态的dna通过与汞的特异性结合形成发卡结构，长链dna所连的荧光基团fam通过发卡结构靠近纳米金表面，导致单链dna两端的供体和受体之间荧光共振能量转移，从而造成荧光信号的变化，此变化对hg²⁺有很高的灵敏性和特异性。

本发明与现有技术相比具有以下显著优点：首先，相比于以前的小粒径的金纳米粒子，大粒径的金纳米粒子有相对大的表面积，可以引入短链dna来调节含荧光发色团的长链dna数目从而降低检测限，同时大粒径金纳米粒子对荧光发色团有更好的猝灭能力。第二，检测时不需要掩蔽剂，而且在其他金属离子共存时可以选择性检测hg²⁺。第三，检测方法非常简单，快速，易操作。

附图说明

图1为35nm的纳米金透射电镜图；

图2为7nm的au-dna结构示意图；

图3为13nm左右sh-dna修饰的aunps的透射电镜图；

图4为五种不同修饰配比的aunps–dna在100nmhg²⁺存在时荧光强度变化；

图5为不同hg²⁺浓度下(0、10、20、40、60、80、100、120、140、160、200、300、400、500和600nm)a)au-dna-fam的荧光强度变化；b)au-dna-fam的荧光差值变化；

图6为不同金属离子:ca²⁺和mg²⁺(各1mm),和cu²⁺、fe²⁺、cd²⁺、pb2²⁺、zn²⁺、ni²⁺、mn²⁺、co²⁺(各1μm)与hg²⁺(100nm)浓度下，au-dna-fam探针的荧光强度变化；

图7为汞离子诱导的荧光强度随时间变化曲线。

具体实施方式

下面结合具体实施例对本发明作进一步说明，但本发明的保护范围不限于此。

以下实施例中所用长链dna(5′-sh-c10-cttctttcttcccccttgtttgttg-fam-3′）和短链dna(5′-sh-cccccccccc-3′)由本领域常规技术合成，具体由上海生工有限公司合成。

实施例1

一种金纳米生物传感器的制备方法，包括以下步骤：

（1）纳米金的制备：将100ml质量分数为0.01%的氯金酸水溶液，加热至沸腾，剧烈搅拌下快速加入3.5ml质量分数为1%的柠檬酸三钠溶液，溶液由浅黄色变为酒红色后，继续恒温加热搅拌15分钟，关闭热源，搅拌至室温，所得金纳米粒子经纤维素膜过滤，后再通过离心（4℃、10000r/min、10min）进行浓缩得到高浓度的纳米金溶液；

（2）dna溶液的配制：

将dna溶于含有100mmtcep的20mm的mops-hcl缓冲溶液(ph7.4)中，使dna最终浓度为100μm，将溶液混匀后，反应2h后备用；所述dna长链dna(5′-sh-c10-cttctttcttcccccttgtttgttg-fam-3′）和短链dna(5′-sh-cccccccccc-3′)组成；

（3）dna的修饰：

将步骤（2）所得dna溶液与步骤（1）所得高浓度的纳米金（aunps）溶液于10mm的mops-hcl缓冲溶液(ph7.4)中反应24小时后，向混合溶液中滴加1mnacl/100mmpbs(ph7.4)溶液，使nacl的最终浓度为0.1m，陈化40小时后，通过离心法（离心条件为：4℃、14000r/min、10min；然后用0.1mpbs洗涤3次，离心条件同上）将溶液中游离的dna除去。

图3为13nm左右aunps-dna的透射电镜图，由于dna磷酸骨架带有负电，静电斥力使得金核更加紧凑，故其粒径相比aunps更小些，外形呈球形，sh-dna的保护使得aunps-dna分散性更好。

本发明所设计的生物传感器灵敏度与长链dna-fam和短链dna的比率密切相关，在100nmhg²⁺存在下，可通过对比5种不同修饰配比aunps-dna的荧光强度变化进行验证（短链dna和长链dna的摩乐比分别为1:2，1:3，1:4，1:5，1:6，1:7，将10nm不同修饰配比的aunps-dna和100nm的hg²⁺于2000μl的50mmtris-ch3cooh,ph7.4缓冲溶液中测其荧光强度的变化。）。如图4所示，长短链dna修饰配比可对hg²⁺诱导的荧光强度变化产生很大的影响。当纳米探针在比率(nthehelperoligonucleotides:nthelongstrandsofdna–fam)为1:2时，将会导致纳米颗粒在盐化过程中有纳米颗粒聚沉。当纳米探针上dna修饰的比率为1:3或1:4时，金纳米粒子比表面积比较大，表面修饰的dna密度较低时，由于金纳米粒子对荧光发色团fam有吸附作用，dna处于弓形状态，造成于荧光发色团fam与金纳米粒子距离拉近，因此hg²⁺的添加不会产生很大的荧光变化。当纳米探针上dna修饰的比率为1:6或1:7时，由于空间位阻和dna链之间存在静电斥力，hg²⁺添加后形成的发卡结构会使高密度的dna链从金纳米粒子表面脱落，造成背景信号高和低灵敏度，使得金纳米粒子不能完全猝灭荧光剂。因此我们采用纳米探针上dna修饰的比率为1:5作为本实验设计的生物传感修饰比率。

检测范围和灵敏度：将10nmaunps-dna和不同浓度的硝酸汞溶液(1~600nm)于50mmtris-ch3cooh,ph7.4缓冲溶液中，反应十分钟后，于荧光比色皿中测定不同浓度下aunps-dna荧光强度的变化，并绘制猝灭曲线，计算该生物传感器的检测限。如图5a所示，483nm激发下，于515nm处有发射峰，随着hg²⁺浓度的增大，荧光强度越来越低，fam发色团逐渐被金纳米粒子猝灭，hg²⁺在低浓度范围下，也能够和长链dna发生特异性结合，虽然变化很小但是很精确。图5b中插入的拟合曲线可以作为检测汞离子浓度的标准曲线。在20nm<hg²⁺<90nm的浓度范围内，汞离子浓度和荧光强度变化呈线性关系。由于发卡结构的形成需要几个汞离子和一个dna分子特异性结合，汞离子浓度低于20nm时荧光强度变化和汞离子浓度并不是线性关系。hg²⁺浓度在为400nm时反应已经达到了平衡，随着汞浓度的增加荧光强度差值没有太大的变化，按照3倍的信噪比可计算出hg²⁺最低检测限为8nm。

选择性检测：ca²⁺、mg²⁺、cu²⁺、fe²⁺、cd²⁺、pb²⁺、zn²⁺、ni²⁺、mn²⁺和co²⁺等二价金属离子均为硝酸盐。将10nmaunps-dna探针溶液分别和浓度为100nm的hg²⁺，1mm的ca²⁺和mg²⁺，1μm的cu²⁺、fe²⁺、cd²⁺、pb²⁺、zn²⁺、ni²⁺、mn²⁺和co²⁺于2000μl的50mmtris-ch3cooh,ph7.4缓冲溶液中，测其荧光强度变化。

如图6所示为10nmaunps-dna探针溶液对不同金属离子的荧光强度变化的研究，由图可知，只有100nm的hg²⁺会引起较大的荧光强度变化，其他金属离子的存在基本对生物传感器的荧光强度没有太大影响，略微的信号变化是由于加入的金属盐离子强度对aunps-dna上的dna有一定的静电屏蔽，表明本传感器对hg²⁺有很好的选择性。

为了模拟汞污染的水体环境，将1mm的ca²⁺和mg²⁺,1μm的cu²⁺、fe²⁺、cd²⁺、pb²⁺、zn²⁺、ni²⁺、mn²⁺和co²⁺同时加入自来水样中，将不同浓度的汞标准溶液加入自来水样中，使汞标准溶液最终浓度为30.0nm、55.0nm、125.0nm，将本发明所设计的生物传感器检测自来水样中汞离子的浓度并把检测结果与汞标准溶液的浓度相比较。

本生物传感器的高灵敏和高选择性使得其在应用方面显示了很大的潜力。通过生物传感器检测环境水样中汞离子的浓度和传统的icp-ms检测作比较，由于自来水样通过icp-ms没有测得汞离子的存在，就把标准汞溶液和其它一些二价金属离子一起加入到水中来模拟水样环境。如表1所示，期望值和实际值有很好的一致性，我们可以看到这些样品的覆盖度在96%-102%。表明了我们的生物传感器能够很好的检测水样中汞的含量，本方法操作简便，适用于环境水样中hg²⁺的测定。

表1用上面所提到的实验方法水样中测得hg²⁺的数据如下所示

。

序列表

<110>河南师范大学

<120>金纳米生物传感器及其制备方法和在汞离子检测中的应用

<130>2017

<141>2017-10-27

<160>2

<170>siposequencelisting1.0

<210>1

<211>35

<212>dna

<213>人工序列(长链)

<400>1

cccccccccccttctttcttcccccttgtttgttg35

<210>2

<211>10

<212>dna

<213>人工序列(短链)

<400>2

cccccccccc10