质量比为HEA/SPP/DMHB = 10/85/5的反应单体10克，投入250mL三口反应瓶中，加入80克去离子水并通过磁力搅拌使单体完全溶解，通入N2气保护，活化lh后，开始滴加引发剂溶液(0.1克AIBA溶于10克去离子水)，并控制反应温度在85°C，反应8h后，得超亲水三元共聚物溶液，体系降至常温待用。
[0052]采用美国PerkinElmer公司Spectrum RX型红外测试仪测试所合成的超亲水共聚物的结构，由图2红外光谱图可见，在3400cm 1处有强的吸收峰，为HEA羟基0H的吸收峰，1040cm1和1190cm 1处的强吸收峰为SPP磺基SO 3的伸缩振动峰，1720cm 1处为HEA和DMHB酯键0-C = 0伸缩振动峰，1640cm 1处的强吸收峰为SPP酰胺键NH-C = 0的伸缩振动峰，960cm 1和1390cm 1为DMHB季铵基团中C-N +的伸缩振动峰。说明HEA、SPP、DMHB三种单体生成了如图1所示结构的超亲水三元共聚物。
[0053]2、将一块直径5cm的300目的不锈钢丝网按顺序分别浸入蒸馏水、乙醇或丙酮、蒸馏水中各在150w，40Khz下超声清洗lOmin，放入烘箱中40°C下烘干。
[0054]3、在500mL烧杯中加入180克去离子水，按质量比加入20克羟乙基纤维素，在磁力搅拌下边加热边充分搅拌至溶解均匀，然后自然冷却至室温，得到10%的水敏剂溶液。
[0055]4、将1克二烯基砜溶解于99克去离子水，然后调整PH值至弱碱性，得到1 %的交联剂溶液。
[0056]5、将步骤2中得到的不锈钢丝网浸入步骤3中的水敏剂溶液中，浸泡5min后将其垂直提拉起，然后挂在恒温烘箱中，保持温度在150°C烘干，得负载有水敏剂底层的网膜。
[0057]6、将步骤5制得的网膜泡入步骤4制备的交联剂溶液中lOmin，所得网膜于室温下静置30min以保证不让其充分交联，立即将所得网膜泡入步骤1所制备的超亲水三元共聚物溶液中lOmin，然后将所得网膜挂在150°C的恒温烘箱中烘20min，即得兼具防污、抗菌功能的超亲水油水分离网膜。
[0058]采用日本日立公司S-3700型扫描电子显微镜观察网膜的表面形貌和尺寸。由膜的表面在放大倍数为800倍的扫描电镜图可见油水分离网膜是在300目不锈钢丝网上包覆有一层超亲水聚合物薄层，且网孔间隔内存在28 μπι孔径的微孔，见图4所示。图3是300目空白不锈钢丝网的800倍放大图。
[0059]在空气中采用JC2000B型表面张力测试仪测量步骤2中空白丝网及步骤6中得到的网膜对5 yL水的接触角分别为101°和3°。见图5和图6所示，证明该网膜具有超亲水性能。
[0060]将步骤6中得到的网膜置于浓度为500mg/L的中性牛血清蛋白(BSA)溶液中，摇床震荡8h后将网膜取出，采用日本岛津公司UV-2450型紫外分光光度计测量并计算出单位面积吸附量，网膜对牛血清蛋白的单位面积吸附量为10 μ g/cm2。网膜经去离子水冲洗后，二次通量回复率达到98%。
[0061]选用金黄色葡萄球菌Staphylococcus aureus (ATCC 6538)作为抗菌实验菌落，将菌种在37°C的营养肉汤(配方为:胰蛋白胨15g/L，植物蛋白胨5g/L，氯化钠5g/L)中培育24h0然后经过3000rpm离心，弃掉上清液后，用PH7.4的PBS缓冲溶液对下层菌种冲洗，经离心冲洗3次，得到的菌种分散到PBS缓冲溶液中，得到浓度IX 105CFU/mL的菌种悬浮液。步骤6中得到的网膜经紫外光灭菌后，置于悬浮液中37°C下培养24h，采用日本奥林巴斯CX31型生物显微镜测量存活菌落数，灭杀率达100%。
[0062]将步骤6中得到的网膜放在自制的过滤装置中部蓝色组件内，通过旋紧固定网膜，将水用红墨水染成红色，与汽油按体积比1:1混合搅拌均匀，将油水混合液倒入该过滤装置上面的管中，红色的水源源不断往下渗透过网膜，而汽油始终阻挡在膜上，最终膜上无红色残留，达到了油水分离效果，见图7a和图7b所示。
[0063]实施例2
[0064]1、超亲水三元共聚物的制备:称取质量比为HEA/SPP/DMHB = 5/90/5的反应单体10克，投入250mL三口反应瓶中，加入80克去离子水并通过磁力搅拌使单体完全溶解，通入N2气保护，活化4h后，开始滴加引发剂溶液(0.05克AIBA溶于10克去离子水)，并控制反应温度在90°C，反应6h后，得超亲水三元共聚物溶液，体系降至常温待用。
[0065]采用美国PerkinElmer公司Spectrum RX型红外测试仪测试所合成的超亲水共聚物的结构，所得结构与图1相似，红外光谱图与图2相似。
[0066]2、将一块直径5cm的100目的铜丝网按顺序分别浸入蒸馏水、乙醇或丙酮、蒸馏水中各在150w，40Khz下超声清洗lOmin，放入烘箱中40°C下烘干。
[0067]3、在500ML烧杯中加入180克去离子水，按质量比加入20克聚乙烯醇，在磁力搅拌下边加热边充分搅拌至溶解均匀，然后自然冷却至室温，得到10%的水敏剂溶液。
[0068]4、将3克硼砂溶解于97克PH1.0的去离子水溶液中，搅拌至溶解完全，得到3%的交联剂溶液。
[0069]5、将步骤2中得到的不锈钢丝网，采用高压喷枪喷涂步骤3中的水敏剂溶液3次，然后挂在恒温烘箱中，保持温度在120°C烘干，得负载有水敏剂底层的网膜。
[0070]6、将步骤5制得的网膜采用高压喷枪喷涂步骤4制备的交联剂溶液2次，所得网膜于室温下静置30min以保证不让其充分交联，立即采用高压喷枪喷涂步骤1所制备的超亲水三元共聚物溶液中3次，然后将所得网膜挂在120°C的恒温烘箱中烘30min，即得兼具防污、抗菌功能的超亲水油水分离网膜。
[0071]采用日本日立公司S-3700型扫描电子显微镜观察网膜的表面形貌和尺寸。由膜的表面在放大倍数为800倍的扫描电镜图可见油水分离网膜是在100目铜丝网上包覆有一层超亲水聚合物薄层，且网孔间隔内存在30μπι孔径的微孔，与图4相似。100目空白铜丝网的800倍放大图与图3相似。
[0072]在空气中采用JC2000B型表面张力测试仪测量步骤2中空白丝网及步骤6中得到的网膜对5 μ L水的接触角分别为103°和5°，与附图5和图6相似。
[0073]将步骤6中得到的网膜置于浓度为500mg/L的中性牛血清蛋白(BSA)溶液中，摇床震荡8h后将网膜取出，采用日本岛津公司UV-2450型紫外分光光度计测量并计算出单位面积吸附量，网膜对牛血清蛋白的单位面积吸附量为8 μ g/cm2。网膜经去离子水冲洗后，二次通量回复率达到99%。
[0074]选用金黄色葡萄球菌Staphylococcus aureus (ATCC 6538)作为抗菌实验菌落，将菌种在37°C的营养肉汤中培育24h，然后经过3000rpm离心，弃掉上清液后，用PH7.4的PBS缓冲溶液对下层菌种冲洗，经离心冲洗3次，得到的菌种分散到PBS缓冲溶液中，得到浓度lX105CFU/mL的菌种悬浮液。步骤6中得到的网膜经紫外光灭菌后，置于悬浮液中37°C下培养24h，采用日本奥林巴斯CX31型生物显微镜测量存活菌落数，灭杀率达100%。
[0075]将步骤6中得到的网膜放在自制的过滤装置中部蓝色组件内，通过旋紧固定网膜，将水用红墨水染成红色，与甲苯按体积比1:1混合搅拌均匀，将油水混合液倒入该过滤装置上面的管中，红色的水源源不断往下渗透过网膜，而甲苯始终阻挡在膜上，最终膜上无红色残留，达到了油水分离效果，与图7a和图7b相似。
[0076]实施例3
[0077]1、超亲水三元共聚物的制备:称取质量比为HEA/SPP/DMHB = 5/85/10的反应单体20克，投入250mL三口反应瓶中，加入70克去离子水并通过磁力搅拌使单体完全溶解，通入N2气保护，活化2h后，开始滴加引发剂溶液(0.1克AIBA溶于10克去离子水)，并控制反应温度在75°C，反应12h后，得超亲水三元共聚物溶液，体系降至常温待用。
[0078]采用美国PerkinElmer公司Spectrum RX型红外测试仪测试所合成的超亲水共聚物的结构，所得结构与图1相似，红外光谱图与图2相似。
[0079]2、将一块直径5cm的200目的无纺布按顺序分别浸入蒸馏水、乙醇或丙酮、蒸馏水中各在150w，40Khz下超声清洗lOmin，放入烘箱中40°C下烘干。
[0080]3、在500mL烧杯中加入190克去离子水，按质量比加入10克羧甲基纤维素，在磁力搅拌下边加热边充分搅拌至溶解均匀，然后自然冷却至室温，得到5 %的水敏剂溶液。
[0081]4、将20克25%戊二醛溶液稀释在80克去离子水溶液中，搅拌均匀待用，得到5%的交联剂溶液。
[0082]5、将步骤2中得到的无纺布，采用高压喷枪喷涂步骤3中的水敏剂溶液2次，然后挂在恒温烘箱中，保持温度在130°C烘干，得负载有水敏剂底层的网膜。
[0083]6、将步骤5制得的网膜采用高压喷枪喷涂步骤4制备的交联剂溶液2次，所得网膜于室温下静置20min以保证不让其充分交联，立即采用高压喷枪喷涂步骤1所制备的超亲水三元共聚物溶液中1次，然后将所得网膜挂在130°C的恒温烘箱中烘20min，即得兼具防污、抗菌功能的超亲水油水分离网膜。
[0084]采用日本日立公司S-3700型扫描电子显微镜观察网膜的表面形貌和尺寸。由膜