专利名称：一种培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法
技术领域：
本发明涉及一种培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法，属于基因工程领域。
背景技术：
植物病毒病有植物“癌症”之称，每年因病毒病对农作物所造成的经济损失约数百亿元。植物病毒必须在寄主细胞内专性寄生生活，某一种病毒只能侵染某一种或某些植物， 但也有少数病毒危害十分广泛，如黄瓜花叶病毒(cucumber mosaic virus, CMV)0 CMV能侵入1000多种植物，包括常见的葫芦科、茄科、十字花科作物，以及泡桐、香蕉、玉米等农林作物，还有繁缕、老鹤草、竹叶草、酢浆草等农田常见杂草，严重影响了农作物的正常生长。CMV是雀麦花叶病毒科(Bromoviridae)黄瓜花叶病毒属(Cucumovirus)的成员， 基因组由3条正义单链RNA组成，根据大小依次命名为RNA1、RNA2和RNA3。RNAl编码Ia 蛋白。Ia蛋白是CMV复制酶复合体的一个亚单位，在CMV复制过程中起到解旋酶和甲基转移酶的功能。此外，CMV Ia蛋白在病毒移动过程中也起重要的作用。研究发现， 基因能编码甲基化转移酶，并且Tcoil可以和CMV Ia蛋白相互作用，控制CMV的传播，引发 CMV 系统性侵染(Kim MJ, Huh SU, Ham BK, Paek KH. A novel methyltransferase methylates cucumber mosaic virus la protein and promotes systemic spread. J Virol, 2008，82: 4823-4833)。RNA2编码加蛋白，即复制酶复合体中依赖RNA的RNA聚合酶(RNA-cbpendent RNA polymerase, RdRP)，2a与Ia蛋白协同作用形成复制复合体；RNA3 编码运动蛋白(movement protein,MP)和衣壳蛋白(coat protein,CP)分别负责病毒的长距离移动和衣壳化。另外，由RNA2的亚基因组RNA4表达产生的大小为ll_13KDa蛋白2b， 是转录后基因沉默(post-transcriptional gene silencing,PTGS)的抑制蛋白(Brigneti G, Voinnet 0, Li WX, et al. Viral pathogenicity determinants are suppressors of transgene silencing in Nicotiana benthamiana. EMBO J, 1998, 17: 6739—6746)。 CMV在全世界范围内普遍发生，并且寄主范围最广，能侵染65科885种植物。因其引起病害的重要性，CMV已经成为世界范围内最重要的植物RNA病毒，也是目前研究最多的植物RNA 病毒之一。由于病毒对植物寄生性生活，其复制所需要的能量、物质场所等完全由寄主细胞提供，因而病毒病的防治十分困难。到目前为止，对病毒病的防治主要有三种方法。一是化学防治法，但因其对植物的绝对寄生性和发病的独特性使得化学防治等常规措施难以发挥作用，而且还存在化学农药的污染问题。二是可利用脱毒技术获得无毒繁殖材料。但其只适用于鳞茎、接穗等，使用范围有限。三是预防为主、综合防治，一方面消灭侵染来源和传播介体；另一方面采取增强植物抗病力、培育和推广耐病或抗病品种等。虽然这些传统方法能够不同程度的降低病毒发病的严重程度，但不能从根本上解决问题。近年来，随着病毒分子生物学的发展，植物基因工程技术的出现为防治植物病毒病开辟了新的途径。植物抗病毒基因工程研究主要包括3个领域一是植物病毒来源基因介导的抗性(pathogen-derived resistance, PDR) ；二是植物、微生物的核糖体失活蛋白(ribosome inactivating proteins，RII3S)；三是利用植物中自然存在的抗性基因。目前 PDR已成为遗传工程中增强作物对病毒抗性的主要措施之一(Prins M, Laimer M, Noris E, el at. Strategies for antiviral resistance in transgenic plants. Mol Plant Pathol, 2008， 9: 73-83)。RNA干涉(RNA interference，RNAi)是由双链RNA (double-stranded RNA, dsRNA) 引起的序列特异性基因沉默，可以调节关闭基因的表达，进而调控细胞的各种高级生命活动(Denli AM, Hannon GJ. RNAi an ever-growing puzzle. Trends Biochem Sci, 2003，28: 196-201)。RNAi是由dsRNA诱导的多步骤、多因素参与的过程，是生物体的一种防御机制，普遍存在于绝大多数真核细胞中。在这个过程中，两种类型的小RNA发挥了核心功能作用，即长度为2H6nt的小干涉RNA (small intertering RNA, si RNA)和mi RNA (microRNA)。dsRNA是RNAi的激发子，长的dsRNA被核糖核酸酶Dicer识别并剪切成长度为2H6nt的siRNA。接着siRNA被RNA诱导的干涉复合体(RNA-induced silencing complex, RISC)识别、解链，并以单链RNA的形式与RISC结合，随后直接剪切具有siRNA同源序列的mRNA，阻断其翻译成蛋白。来自于非编码RNA基因茎环结构转录前体的小RNA称为miRNAs。siRNAs和miRNAs介导的基因沉默都属于转录后水平的基因沉默。RNAi是一项自然发生的高效的病毒防御机制。利用RNAi技术的原理设计合成与病毒同源的dsRNA，并将其导入植物，植物的RNAi机制受到激发并对病毒基因组进行特异性切割降解，阻止病毒的复制扩张，从而保护植物不受病毒危害。克隆CMV长747bp的 CF基因cDNA片段，并构建至植物表达载体，即在花椰菜花叶病毒(cauliflower mosaic virus, CaMV) 35S启动子后面同时插入正义和反义的CF cDNA序列，中间插入一个内含子将其分开，形成一个反向重复序列。将构建的表达载体导入到烟草中，转基因植株中CMV CF双链RNA的表达产生了小的干涉RNA，118株转基因植株中有20株产生了对CMV的抗性 (Kalantidis K, Psaradakis S, Tabler M, et al. The occurrence of CMV-specific short RNAs in transgenic tobacco expressing virus-derived double-stranded RNA is indicative of resistance to the virus. Mol Plant Microbe interact, 2002, 15: 826-833)。以马铃薯Y病毒(Photo virus Y, PVY)的3’端保守序列设计引物，构建RNAi 表达载体并转化马铃薯，结果15株转基因植株中有12株可以表达siRNAs，并且能对三种不同亚型的PVY表现出高强度的抗性(Missiou A, Kalantidis K, Boutla A, et al. Generation of transgenic potato plants highly resistant to potato virus Y (PVY) through RNA silencing. Mol Breed, 2004， 14: 185—197)。
发明内容
本发明利用基因工程手段及RNAi技术，目的是提供一种培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法，抗黄瓜花叶病毒植物能表达黄瓜花叶病毒复制酶基因Ia的发夹RNA，在细胞内转录形成具有发夹结构的Ia双链RNA分子，诱导细胞产生RNA干涉，并形成Ia的小干涉 RNA，特异性的抑制病毒的侵染。病毒侵染过程中，在植物被侵染组织或其它组织都能检测到长度为21nt的双链 siRNAs存在，由此可见PTGS的激活。PTGS作为一种RNA介导的防卫反应能维持植物基因组的稳定性和保护植物免受病毒侵染。利用RNAi技术并结合转基因技术能高频率大规模产生病毒抗性植物。从生物安全性方面考虑，利用RNAi提高植物的病毒抗性也是一种很好的方法。dsRNA在植物中很快被降解成siRNAs，因此不会积累所转基因的转录产物，更不可能表达形成外源蛋白。在CMV (黄瓜花叶病毒)复制过程中，RNAl编码的Ia蛋白起解旋酶和甲基转移酶的功能。此外，CMV Ia蛋白可以和Tcoil相互作用，控制CMV的传播，引发CMV系统性侵染。本发明克隆CMV的复制酶基因7a的⑶嫩片段，长344bp，位于CMV办全长基因序列的 1673bp-2016bp之间，并将这个基因片段构建到RNAi高通量表达载体pHellsgate〗上，再通过根癌农杆菌介导的遗传转化法将RNAi植物表达载体导入烟草中并稳定表达，以重组载体T-DNA上具有的卡那霉素标记筛选转化子，并通过聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction, PCR)获得真正的转基因植株，然后将得到的阳性转基因烟草植株接种CMV，观察发病情况并分析转基因烟草植株的抗性差异，最后得到具有CMV抗性的烟草植株。本发明提供的方法具体操作如下
(1)从感染黄瓜花叶病毒的植物组织中克隆CMVIa基因的CDNA片段；
(2)将克隆的cDNA片段与RNAi高通量植物表达载体pHellsgate〗进行BP重组反应， 构建CMV la RNAi植物表达载体；
(3)将构建的CMVIa的RNAi植物表达载体通过农杆菌介导转入目标植物中；
(4)以重组载体T-DNA上具有的抗性标记筛选转化子，并通过聚合酶链式反应获得真正的转基因植株，接种黄瓜花叶病毒，最后筛选出对黄瓜花叶病毒抗性明显增强的转基因植株。本发明构建的CMV la RNAi植物表达载体具有黄瓜花叶病毒复制酶基因Ia的发夹RNA (hpRNA)表达盒。本发明中7a发夹RNA表达盒具有CaMV35S启动子、表达7a基因发夹RNA的DNA 分子以及Nos终止子；表达Ia发夹RNA的DNA分子由三个组件构成，中间组件为一个内含子，两边组件分别为344bp的黄瓜花叶病毒复制酶办基因片段，且为两边组件为反向重复序列。此表达盒能在植物细胞中形成CMV办的具发夹结构的双链RNA，诱导细胞产生 RNAi，从而阻止病毒的复制扩张，保护植物不受病毒危害。本发明为提高烟草、黄瓜、百合等植物对黄瓜花叶病毒病害的抗性提供了一种新的方法，通过基因工程手段培育抗病毒植物能克服传统育种的不足，不仅育种周期短，而且操作简单，容易获得高抗材料。本发明利用植物基因工程的技术手段，构建病毒基因片段的 RNAi表达载体并在植物中表达病毒基因的hpRNA，诱发植物产生RNAi，从而使植物能够抵抗病毒的侵染。该发明为农作物的大规模生产提供方便，大量减少抗病毒制剂的使用，为农业生产节约成本、减小环境污染且提高管理水平，因此本发明具有广阔的市场应用前景。
图1是部分转基因烟草基因组DNA的PCR凝胶电泳图谱。Marker :DL2000 DNA Marker (大连宝生物)，由 2，OOObp、1，000bp、750bp、500bp、250bp 以及 IOObp 六条 DNA 片段组成。正对照以CMV la RNAi植物表达载体质粒为模板的PCR产物；WT 以非转基因烟草总DNA为模板的PCR产物。
图2是转基因烟草病毒抗性分析效果图。A 野生型烟草(WT)接种CMV两周后的叶片；B 转基因烟草接种CMV两周后的叶片。图3是转基因烟草接种CMV两周后叶片的RT-PCR凝胶电泳图谱。Marker :DL2000 DNA Marker，其余泳道为部分转基因烟草株系。图4是野生型烟草接种CMV两周后叶片的RT-PCR凝胶电泳图谱。Marker :DL2000 DNA Marker ；WT1、WT3、WT5、WT7为野生型烟草未接种CMV叶片的扩增结果；WT2、WT4、WT6、 WT8为野生型烟草接种CMV叶片的扩增结果。
具体实施例方式
实施例1
UCMV办基因片段的扩增和序列分析
用液氮将带有CMV症状的百合叶片研磨成粉末，转入1. 5ml的离心管中，采用改良的异硫氰酸胍法提取总RNA。采用逆转录酶M-MLV (promega)以总RNA为模板合成cDNA第一链，反应体系和操作过程为取8 μ g Total RNA，依次加入50 ng oligo (dT)、4 μ L ddH20 (RNase-free)至反应体积为12. 5 μ L ；混勻后，70°C加热变性5min后迅速在冰上冷却 5min，然后依次加入 2 μ L dNTP (2. 5mM each)、4 μ L M-MLV 5 Xbuffer,0. 5 μ L 核酸酶抑制剂RNasin (2_、1 μ L反转录酶M-MLV (200U)，混勻并短时离心，42°C温浴1. 5h，取出后95°C加热5min，终止反应。cDNA第一链合成后置于_20°C保存备用。
以合成的第一链cDNA为模板，扩增目的基因7a，所用引物序列分别为 5， -AGGTATCGGACAGTCCTGAGACG-3’ 和 5’ -CACAGGACGCATCCACC
GA-3’，采用大连宝生物的高保真DNA聚合酶ex taq扩增出目的基因。PCR反应条件94 "C 2min ；94 "C 30s, 60 "C 30s, 72 "C 30s，32 个循环；72 "C IOmin0 反应体系(20 μ L) SlyL cDNA、2 μ L Ex taq Buffer U. 5 μ L dNTP (2.5 mM each) >0. 1 μ L 正向引物 (20μΜ),0. 1 μ L 反向引物 QO μΜ)、0·2 μ L Ex Taq DNA 聚合酶(5 U/μ L)、15.1 μ L 重蒸水dc!H20。PCR结束后通过琼脂糖凝胶电泳检测扩增产物的特异性以及大小，点样量为 5 μ L0由于PCR产物只有一条DNA带，且符合预期设计的大小，故直接对PCR产物进行 TA克隆，使用的试剂盒为pMDIS-T vector kit (大连宝生物)，反应体系和操作过程为取 1. 5 μ L PCR 产物，依次加入 1 μ L pMD18-T 载体(50 ng/ μ L)和 2. 5 μ L 2 X Ligation solution I (连接液)，混勻后置于16°C过夜反应。采用热激转化法将连接产物转入到大肠杆菌DH5ci中，再涂于含有氨苄青霉素(ampicillin，Amp)的LB固体平板上，筛选阳性克隆。挑单菌落，摇菌，之后用扩增CMV办的特异引物进行PCR检测。将检测出的阳性克隆进行序列测定，最终获得CMV片段长344bp，位于CMV办全长基因序列的 1673bp-2016bp 之间。通过 NCBI BLAST (http //blast, ncbi. nlm. nih. gov/Blast. cgi)分析发现克隆的基因片段与不同植物CMV分离物Ia基因序列的同源性达到99%以上。2,CMV la RNAi植物表达载体和含有CMV la RNAi表达载体质粒的农杆菌的构建采用碱裂解法提取插入CMV办的大肠杆菌质粒pMD-18T-7a以及RNAi表达载
体pHellsgatd的质粒，取1 PL用于琼脂糖凝胶电泳以检测所提取质粒的完整性和浓度高低。用含有attBl和attB2接头的引物扩增pMD-18T_7a，所用引物序列分别为 5， -GGGGACAAGTTTGTACAAAAAAGCAGGCTGCAGGTATC GGACAGTCCTGAGACG-3，禾口 5' -GGGGACCACTTTGTACAAGAAAGCTGG
GTCCACAGGACGCATCCACCG A-3，，PCR 反应条件为95 "C 2 min ；94 "C 30 s，60 "C 30s, 72 "C 40 s, 28 cycles ；72 "C 5 min。反应体系(20 μ L)为·Λ yL 质粒模板 ，2 μ L Ex taq Buffer、1. 5 μ L dNTP (2· 5 mM each)、0· 1 μ L 正向引物(20 μ Μ)、0· 1 μ L 反向引物(20 μΜ)、0·2 μ L Ex Taq DNA 聚合酶(5 U/μ L)、15.1 μ L ddH20。PCR 结束后，取 5 μ L PCR产物通过琼脂糖凝胶电泳检测扩增产物的大小以及浓度。上述attB-PCR产物大小略微大于400bp，符合预期值，并且没有杂带，直接用PCR 产物进行BP重组反应。将BP Clonase II enzyme mix (invitrogen)在冰上解冻2min， 并短时涡旋2次，在0.5 mL离心管中依次加入下面的试剂2 μ L attB-PCR产物(10 ng/ μ L), 1 μ L pHellsgate2 质粒(150 ng/μ L)，2 μ L BP Clonase II。短时涡旋 2 次充分混勻反应物，短时离心收集反应物到管底。置于25 ° C水浴锅中反应4 h后加入1 yL 蛋白酶K，短时涡旋，37 ° C温育10 min中止反应。取2 yL BP反应产物转化大肠杆菌 DH10B，筛选抗生素为壮观霉素。挑取若干个单克隆摇菌提质粒，同一个克隆的质粒分别用损al、损ol酶切，检测两个位点是否同时重组上外源基因片段，两种酶切产物理论上大小相同，且都与PCR产物大小相当。经酶切验证符合要求的质粒，即CMV Ia与pHellsgatd成功重组的克隆，在阳性菌株中加入20%甘油混勻，置于-80°C保存备用。用碱裂解法提取并纯化上述大肠杆菌中的CMV la RNAi表达载体的质粒。制备农杆菌LBA4404菌株的感受态细胞，操作过程为将实验室保存的LBA4404菌株在LB固体培养基(含利福平20mg/L)上划线，28°C培养至长出单菌落后，挑取一个单克隆于含20mg/L 利福平的2 mL LB液体培养基，28°C振荡培养至混浊；取5 mL菌液转接于含20mg/L利福平的100 mL LB液体培养基中，28°C振荡培养至OD600为0. 5 ；4°C离心5min (5，000g/min)收集菌体，弃上清，加入10 mL预冷的0. IM CaCl2,轻轻充分悬浮菌体，冰浴20min ；接着4°C 离心5min (5, 000g/min)收集菌体，弃上清，加入4 mL预冷的含15%甘油的0. IM CaCl2溶液，轻轻悬浮后分装于1.5 mL离心管中，每管200 μ L，液氮速冻后置于-80°C保存备用。采用液氮冻融法将上述构建的CMV la RNAi植物表达载体转入所制备的农杆菌 LBA4404感受态细胞中。操作步骤为取2 μ g质粒加入含有200 μ L感受态细胞的离心管中，轻轻混勻后冰浴5min，接着转入液氮中冷冻lmin，然后迅速置于37°C水浴5min，之后立即冰浴2min，加入800 μ L LB液体培养基，28°C振荡培养4h。将活化后的农杆菌涂于含有50mg/L Km的LB固体培养基上，28°C倒置培养。挑选单菌落摇菌，用扩增CMV 7a的特异引物进行PCR，检测重组载体是否转入农杆菌中。对于阳性克隆，加入20%甘油混勻后置于-80°C保存备用。3、农杆菌介导的植物遗传转化以及转基因植物筛选
本实验的转基因受体是烟草mcotiana tabacum L.)。将烟草的种子用75%的酒精浸泡30s，用无菌水洗涤后用0. 1%的HgCl2浸泡8min，然后再用无菌水洗涤若干次，播种于 1/2 MS培养基上，28°C暗培养5-8d，发芽后转至光照培养箱(25°C，16h/d光照)，以后每月用MS培养基继代一次。从_80°C冰箱中取出保存的含有CMV la RNAi表达载体质粒的农杆菌LBA4404菌种，接种于5 mL含有50mg/L K m和20mg/L利福平的LB液体培养基中，28°C培养至浑浊。吸取ImL浑浊的菌液至含有50mg/L Km的LB固体培养基上，28°C培养48h。将LB固体培养基上的农杆菌刮下适量接种于MGL液体培养基中，附加一定量的乙酰丁香酮，28°C振荡培养
2-3h以活化农杆菌。取烟草的无菌苗叶子切成Icm2左右的叶盘，完全浸泡于上述含有活化农杆菌的 MGL液体培养基中15min。用无菌滤纸吸干叶片表面的菌液，将叶盘置于共培养基上进行室温培养。烟草转化的共培养基为MS+0. 02mg/L 6-BA+2 mg/L NAA+30g/L蔗糖，培养时间为 2d。将共培养后的叶盘转到加有抗生素的筛选培养基中分化成苗，同时筛选转基因植株。 烟草筛选培养基 MS+0. 5mg/L 6-BA+O. lmg/LNAA+30g/ 蔗糖 +50mg/LKm+200mg/L 头孢霉素 (cefotaxime sodium salt，Cef)。筛选培养时将培养瓶转移至光照培养箱培养(25°C，16h/ d光照，8h/d黑暗)。烟草出芽后，用含有50mg/L Km和200mg/L Cef的MS培养基继代培养。 因烟草愈伤分化率较高，故需要对再生植株进行进一步筛选。将烟草再生苗移至含有50mg/ L Km (卡那霉素)和200mg/L Cef (头孢霉素)的MS培养基上使其生根，最后选用生根较好的再生苗进行分子水平的检测。采用植物总DNA的快速少量抽提法(CTAB)提取转基因烟草植株叶片的基因组DNA，将提取的基因组DNA取1 μ L通过琼脂糖凝胶电泳检测其完整性和浓度。以转基因植株的基因组DNA为模板、以新霉素磷酸转移酶基因NPT # (位于pHellsgate 2 T-DNA区段，作为转基因阳性转化子的抗性筛选标记)设计特异引物进行PCR，引物序列为 5，-CCCTGATGCTCTTCGTCCA-3，和 5，-CTCTGATGCCGCCGTGTT-3，。PCR 反应条件为95 "C 2 min ；94 "C 30 s，60 "C 30 s，72 "C 50 s，28 cycles ；72 "C 2min。反应体系为1 yL 烟草总 DNA，0.2 μ L 正向引物，0.2 μ L 反向引物，9 μ 2Xpower Taq PCR MasterMix, 10. 6 μ ddH20。PCR结束后，取8 μ L产物用于琼脂糖凝胶电泳以检测阳性转基因植株。由于阳性转基因烟草基因组中整合了 CMV la RNAi表达载体的T-DNA，因此能扩增出长度为679bp 的MT#基因特征条带，部分转基因烟草植株的扩增结果如图1所示。转基因烟草共筛选到41株阳性植株，分别编号为1 41。4、转基因烟草的CMV抗性分析
首先制备黄瓜花叶病毒粗提液。取5g辣椒CMV症状病样组织加IOOml抽提缓冲液
，在研钵中研磨均勻，尼龙纱布过滤，滤液加25%氯仿，震荡15min，置4°C冰箱lh，然后5000rpm/min离心20min，取上清加8% 的聚乙二醇(PEG6000)、3% NaCl，搅拌至PEG完全溶解，置4°C冰箱内4h，8000rpm/min离心 30min,取沉淀，用ddH20悬浮过夜，8000rpm/min离心30min，取上清液，沉淀用ddH20再悬浮一次，两次上清液合并，并加入8%PEG、3%NaCl沉淀，再用少量的ddH20过夜悬浮沉淀，最后 8000rpm/min离心lOmin，收获的上清液即为病毒粗提液。挑选PCR检测为阳性的转基因烟草植株，移栽到盛有培养液的三角瓶中。待长出
3-4片新叶后，使用摩擦接种法对各阳性株的叶片进行接种，操作过程为预备接种的植株置于25°C培养箱中暗培养24h，接种叶片上撒少量500目石英砂，蘸取少量的病毒粗提液， 以逆着叶脉的方向轻轻摩擦叶片，放置15min后，接种植株用清水冲洗干净后置于暗室培养过夜，再放置进光照培养箱培养。两周后取接种叶片进行RT-PCR检测，每株检测4-6片叶，具体步骤如下选取接种后烟草叶片，采用异硫氰酸胍法，提取总RNA。用RT-PCR方法检测CMV感染情况，RT-PCR反应条件同步骤1，以合成的第一链cDNA为模板，使用CMV CF基因引物进行PCR扩增，引物序列为5’ -CCAACTATTAACCACCCAA
CCTT-3，和 5，-TGCTCGACGTCAACATGAAGTAC-3，，PCR 反应条件为95 "C 2 min ；94 "C 30 s, 58 "C 30s, 72 "C 40 s，28 个循环；72 "C 5 min。反应体系(20 μ L)为2 μ L cDNA, 0.2 μ L 正向引物，0.2 μ L 反向引物，2 μ IOXReaction Buffer (反应缓冲液)，1. 5 μ dNTP Mix (2 mM), 2 μ MgCl2,0. 3 μ Taq PCR 聚合酶(5 U/μ L), 12. 8 μ ddH20。接种烟草叶片感染CMV后，即能通过RT-PCR检测到CMV CF基因470bp的扩增产物。如果被检测植株具有对CMV侵染的抗性，叶片RT-PCR检测结果不会出现CP基因的特征条带。
野生型烟草和转基因烟草接种CMV后的表型观察结果如图2所示。接种CMV的野生型烟草叶片出现扭曲，失去光泽，叶色浓淡不均，并出现黄绿相间的花叶症状，而转基因烟草叶片个别表现轻微的花叶症状，大部分没有CMV感染的症状。转基因烟草接种CMV后的RT-PCR检测结果如图3、图4所示。野生型烟草接种CMV 后，叶片RT-PCR检测呈阳性，即能从叶片中检测到CMV衣壳蛋白基因CP的表达；而接种 CMV的20株la RNAi载体转基因烟草中，有4株的所有检测叶片均未受CMV侵染，有8株仅有个别叶片受CMV侵染。显然，7a RNAi载体转基因烟草对CMV的抗性较野生型明显增强。 CMV Ia双链RNA在烟草中的表达使转基因烟草对CMV侵染产生了不同程度的抗性。
权利要求
1.一种培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法，其特征在于具体操作如下(1)从感染黄瓜花叶病毒的植物组织中克隆CMVIa基因的CDNA片段；(2)将克隆的cDNA片段与RNAi高通量植物表达载体pHellsgate〗进行BP重组反应， 构建CMV la RNAi植物表达载体；(3)将构建的CMVIa的RNAi植物表达载体通过根癌农杆菌介导转入目标植物中；(4)以重组载体T-DNA上具有的抗性标记筛选转化子，并通过聚合酶链式反应获得真正的转基因植株，接种黄瓜花叶病毒，最后筛选出对黄瓜花叶病毒抗性明显增强的转基因植株。
2.根据权利要求1所述的培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法，其特征在于CMV办基因的 cDNA片段长:344bp，位于CMV Ia全长基因序列的1673bp_2016bp之间。
3.根据权利要求1所述的培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法，其特征在于黄瓜花叶病毒 Ia基因RNAi植物表达载体具有黄瓜花叶病毒Ia基因发夹RNA表达盒。
4.根据权利要求1或3所述的培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法，其特征在于黄瓜花叶病毒Ia基因发夹RNA表达盒从上游至下游依次为花椰菜花叶病毒的35S启动子、表达Ia 基因发夹RNA的DNA分子和终止子。
5.根据权利要求4所述的培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法，其特征在于表达7a发夹 RNA的DNA分子由三个组件构成，中间组件为一个内含子，两边组件分别为344bp的黄瓜花叶病毒复制酶办基因片段。
6.根据权利要求1或3所述的培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法，其特征在于表达7a发夹RNA的DNA分子的内含子两端的组件为反向互补的基因序列。
7.根据权利要求4所述的培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法，其特征在于表达7a发夹 RNA的DNA分子的内含子两端的组件为反向互补的基因序列。
8.根据权利要求5所述的培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法，其特征在于表达7a发夹 RNA的DNA分子的内含子两端的组件为反向互补的基因序列。
全文摘要
本发明公开了一种培育抗黄瓜花叶病毒植物的方法。本发明克隆黄瓜花叶病毒的复制酶基因1a的cDNA片段，长344bp，位于CMV1a全长基因序列的1673bp-2016bp之间，并将这个基因片段构建到RNAi高通量表达载体pHellsgate2上，再通过根癌农杆菌介导的遗传转化法将RNAi植物表达载体导入烟草中并稳定表达，最后获得抗病毒的烟草植株；通过实验证实在植物中表达病毒基因片段的双链RNA能诱发RNA干涉的发生，进而产生相应基因的小干涉RNA，并特异性的抑制病毒的侵染，筛选的转基因烟草对黄瓜花叶病毒侵染具有明显的抗性。
文档编号A01H5/00GK102286525SQ201110232449
公开日2011年12月21日 申请日期2011年8月15日 优先权日2011年8月15日
发明者丁为群, 刘迪秋, 周阿涛, 田荣欢, 葛锋, 贺欣, 陈朝银, 饶健 申请人:昆明理工大学