一种半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法与流程

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一种半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法与流程

本发明涉及一种植物组织培养技术领域,尤其涉及一种半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法。



背景技术:

半枫荷(Semiliquidambar cathayensis H.T.Chang)为金缕梅科半枫荷属植物,为1962年发表的新属半枫荷属的模式种,我国特有种。该种在学术研究、中医药用以及园林应用等很多方面都具有极高的价值。但由于不合理的开发利用,其资源破坏严重。半枫荷在1987年国家环境保护局等颁布的《中国珍稀濒危保护植物名录(第一册)》中,被列为国家三级重点级保护植物[2];在1992年傅立国主编的的《中国植物红皮书-稀有濒危植物》中被列为稀有种[3];在国务院1999年8月4日颁布的《国家重点保护野生植物名录(第一批)》中提升为国家Ⅱ级保护植物。2003年在汪松、解焱主编的《中国物种红色名录》中,专家根据相关资料,推测半枫荷在过去3个世代内致危因素没有停止,种群至少减少30%,因此将半枫荷列入易危等级,在未来一段时间内其种群面临绝灭的几率较高[5]

半枫荷药用价值:半枫荷是一种珍贵的药用植物,根、枝、树皮都可入药,能活血通络,祛风除湿,可以治疗风湿性关节炎,腰肌劳损,半身不遂,跌打瘀积、肿痛、产后风瘫,外伤常用于止血,是产区群众常用的中药。目前,半枫荷作为重要的中药已得到了广泛的重视和开发。如半枫荷散、中药巴布剂、半枫荷类注射液、苗岭骨力胶囊等。

药用半枫荷种类鉴别:在我国不同地方,叫“半枫荷”并作药用的植物共有6科8属15种,如五加科的枫荷桂(Dendvopanax dentigerus),梧桐科的翻白叶树(Pterospermum heterophyllum),以及樟科的檫树(Sassafras tzumu),效用和金缕梅科的半枫荷相同,都是用根、茎或树皮入药,但金缕梅科的半枫荷(Semiliquidambar cathayensis H.T.Chang)功效最佳[9-10]

2.半枫荷现有组织培养技术情况

在半枫荷组织培养方面,陈世红等[11]采用单因子比较和均匀设计法,分别研究了影响半枫荷愈伤组织诱导和生长的各种因素。试验结果表明:叶片愈伤组织诱导率高于茎段;愈伤组织诱导的最适基本培养基为MS,生长的最适培养基为:MS+6-BA2.0mg/L+NNA1.0mg/L+蔗糖3%,暗培养对愈伤组织生长极为有利,在生根培养基上诱导生根,但多次试验均未见不定根发生。

李国桢等[12]采用均匀设计和单因子比较法,考察不同基本培养基,光照条件,蔗糖浓度,以及不同激素种类、浓度和组合对半枫荷愈伤组织诱导、继代培养和再分化的影响。实验结果表明:叶片愈伤组织诱导率高于茎段。愈伤组织诱导的最适基本培养基为MS,生长的最适培养基为:MS+6-BA1.0mg/L+NAA1.0mg/L+蔗糖3%。黑暗培养对愈伤组织生长极为有利。但生根培养基上诱导生根,但经多次试验均未见不定根发生。

胡刚等濒危植物半枫荷Semiliquidambar cathayensis组织培养快繁技术研究,以当年生半枫荷带腋芽的茎段和幼叶作为外植体,开展组织培养。研究结果表明:半枫荷叶片在初代培养基:MS+BA2.0mg/L+NNA0.5mg/L上,愈伤组织诱导率为92%,芽诱导率为16.7%,腋芽在初代培养基:MS+BA1.0mg/L+NNA0.1mg/L上,腋芽诱导率为58%,茎段能直接诱导出芽是半枫荷快繁的主要外植体。新生芽在继代增殖培养基:MS+BA0.5mg/L+NAA0.05mg/L上,芽增殖系数为3.93,增殖培养基:MS+BA(1~0.5mg)/L+NAA(0.01~0.05mg)/L,较好丛生芽生根培养基以1/2WPM+NAA2mg/L+活性碳0.2%为宜。生根率可达到90%以上。松林腐殖土+珍珠岩(4:1)比较适合半枫荷的生长移栽成活率100%,苗木长势好,叶绿色,可提供半枫荷优质种苗。

3.现有组织培养技术的不足

半枫荷对生态环境的要求比较苛刻,其自然繁殖率较低,加上人们长期的过量采挖,野生资源已经极度枯竭。面对这样严峻的形式,可见对半枫荷的人工繁殖问题的研究是极其的重要。植物组织无菌培养方法是寻求解决半枫荷资源枯竭、保护其优良品种的有效途径。近年来,人们对半枫荷的药用成分及价值的研究日益增多,目前对半枫荷从种子萌发,到增殖壮苗生根的完整流程的无菌组织培养研究还未见报道,组培无菌培养快速繁殖方面多以茎段和叶片为外植体诱导。



技术实现要素:

本发明的目的是提供一种快速的、增值率高、成活率高的半枫荷的完整的组织培养方法。

本发明的技术方案为:一种半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法,包括以下步骤:

步骤1、无菌材料的建立:取半枫荷蒴果晾晒后取种子进行无菌处理;

步骤2、种子萌发培养:将步骤1处理后的种子消毒后接种于培养基中培养,得到萌发的种子;

步骤3、诱导愈伤组织:将步骤2处理后的萌发的种子的下胚轴作为诱导材料,剪切成茎段后,接种于培养基中,培养得到愈伤组织;

步骤4、愈伤组织增殖:将步骤3得到的愈伤组织转接到培养基中,进行增殖培养;

步骤5、愈伤组织分化,将步骤4增殖后的愈伤组织切成块状物转入培养基培养,得到具有真叶的组织;

步骤6、丛生芽诱导,将步骤5中的真叶剪下后接种到培养基中,得到分化的丛生芽;

步骤7、将步骤6得到的分化的丛生芽剪去基部后,接种于培养基中,得到壮苗;

步骤8:将步骤7得到的壮苗剪去基部后,接种于培养基中,进行生根培养。

在上述的半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法中,所述的步骤2中的培养基包括以下组分:改良MS培养基、GA30.2~0.8mg/L、VB21.0~5.0mg/L、白糖30g/L、琼脂3.6g/L;

所述的步骤2的培养温度为25~27℃,光照强度为1500~2000lx、光照时间为10小时/天。

在上述的半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法中,所述的步骤3中的培养基包括以下组分:改良MS培养基、6-BA0.5mg/L、2,4-D0.2~0.5mg/L、VB21.0~6.0mg/L、白糖30g/L、琼脂3.6g/L;

所述的步骤3的培养温度为25~27℃,光照强度为1500~2000lx、光照时间为10小时/天。

在上述的半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法中,所述的步骤4中的培养基包括以下组分:改良MS培养基、6-BA0.3~0.5mg/L、NAA0.05~0.4mg/L、VB21.0~3.0mg/L、白糖30g/L、琼脂3.6g/L;

所述的步骤4的培养温度为25~27℃,光照强度为1500~2000lx、光照时间为10小时/天。

在上述的半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法中,所述的步骤5中的培养基包括以下组分:改良MS培养基、6-BA0.03~0.08mg/L、NAA0.05~0.3mg/L、土白糖30g/L、琼脂3.6g/L;

所述的步骤5的培养温度为24~28℃、光照强度为2000~3000lx、光照时间为10小时/天。

在上述的半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法中,所述的步骤6中的培养基包括以下组分:改良MS培养基、6-BA0.5~0.8mg/L、NAA0.1~0.3mg/L、VB2 1.0~5.0mg/L、白糖30g/L、琼脂3.6g/L;

所述的步骤6的光照强度为1500~2000lx,每天光照培养12小时。

在上述的半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法中,所述的步骤7中的培养基包括以下组分:改良MS培养基、NAA1.0~2.0mg/L、6-BA0.1~1.0mg/L、VB22.0mg/L、GA31.0mg/L、蔗糖30g/L、琼脂3.6g/L;

所述的步骤7的光照强度为2000~3000lx,每天光照培养12小时。

在上述的半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法中,所述的步骤8中的培养基包括以下组分:1/2改良MS培养基、NAA1.0mg/L、IBA1.0mg/L、GA32.0mg/L、蔗糖30g/L、琼脂3.6g/L;

所述的步骤8的光照强度为2000~3000lx,光照培养12小时。

在上述的半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法中,所述的改良MS培养基中NH4NO3含量为340mg/L、KNO3含量为1318mg/L。

在上述的半枫荷种子萌发途径的组培快繁方法中,所述的1/2改良MS培养基中包含:

NH4NO3 170mg/L;

KNO3 659mg/L;

MgSO4·7H2O 185mg/L;

KH2PO4 85mg/L;

CaCl2·2H2O 220mg/L;

MnSO4·4H2O 22.3mg/L;

ZnSO4·7H2O 8.6mg/L;

H3BO3 6.2mg/L;

KI 0.83mg/L;

Na2MoO4·2H2O 0.25mg/L;

CuSO4·5H2O 0.025mg/L;

CoCl2·6H2O 0.025mg/L;

FeSO4·7H2O 27.8mg/L;

Na2-EDTA·2H2O 37.3mg/L;

甘氨酸2.0mg/L;

盐酸硫胺素0.1mg/L;

盐酸吡哆醇0.5mg/L;

IV B烟酸0.5mg/L;

肌醇100mg/L。

本发明的有益效果如下:

本发明在以种子为外植体,对半枫荷进行研究的基础上,通过对种子苗的大量增殖形成的丛生芽,使丛生芽在不同因素影响下进行壮苗生根,以期增强试管苗生命活力,以缩短适应外界环境时间从而提高成活率。

本发明的完整的技术路线为:以种子为外植体诱导愈伤组织愈伤组织增殖、丛生芽诱导、最后通过壮苗与生根培养而建立起半枫荷完整的快繁体系。

本发明的诱导率是用种子萌发为种苗的,诱导率达到93%。诱导种苗形成直径大小在0.8~1.6cm的浅绿色愈伤组织,经愈伤组织增殖培养基使其增殖系数达到10.8。诱导丛生芽并使其增值系数达到7.9。苗高3.0~4.0cm,壮苗率100%(壮苗率(%)=(壮苗株数/接种株数)x100%)[14]。生根率为94.6%。利用此方法可以快速地培育出大量的半枫荷组培苗,从而有效地保护和繁殖该物种,满足市场对半枫荷的需求。

附图说明

图1和2为实施例1的种子萌发培养结果;

图3和4为实施例1的愈伤组织诱导与增值结果;

图5和6为实施例1的愈伤组织分化结果;

图7和8为实施例1的丛生芽诱导结果;

图9、10和11为实施例1的壮苗培养结果;

图12、13、14和15为实施例1的生根培养结果。

具体实施方式

下面结合具体实施方式,对本发明的技术方案作进一步的详细说明,但不构成对本发明的任何限制。

实施例1

一种半枫荷种子萌发途径的组织培养

(1)半枫荷种子的萌发培养:将取于广西防城港那勤的成熟的野生半枫荷蒴果,将成熟的半枫荷蒴果,晾晒到九成干后取出种子,作为外植体原材料;将选取好的种子用洗洁精清洗,置于超净工作台上,再用0.1%的次氯酸钠原液浸泡5~7min,然后用无菌水冲洗5~8次;将外植体消毒后接种于无菌诱导培养基中,在温度为25~27℃、光照强度为1500~2000lx、光照时间为10小时/天的条件下培养,15天种子萌发率达到77%,30天后萌发率达到93%。见附图1和图2。

种子萌发培养基为:

B1:改良MS+GA30.2mg/L+VB21.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B2:改良MS+GA30.5mg/L+VB21.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B3:改良MS+GA30.8mg/L+VB22.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B4:改良MS+GA30.8mg/L+VB23.5mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

(2)半枫荷愈伤组织的诱导与增值:选取半枫荷种子萌发后的下胚轴作为诱导材料,剪切成1.5~2.0cm的茎段后,接种于无菌诱导培养基中在温度为25~27℃、光照强度为1500~2000lx、光照时间为10小时/天的条件下培养20~30天,形成直径大小在0.8~1.6cm的浅绿色的愈伤组织;将生长良好的愈伤组织转接入增殖培养基中,进行增殖培养培养的环境条件为:温度25~27℃、光照1500~2000lx、光照时间10小时/天。45天增殖系数达到10.8,愈伤组织颜色深绿。见附图3和4。

诱导愈伤组织培养成分:

B5:改良MS+6-BA0.5mg/L+2,4-D0.2mg/L+VB21.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B6:改良MS+6-BA0.5mg/L+2,4-D0.2mg/L+VB26.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B7:改良MS+6-BA0.5mg/L+2,4-D0.5mg/L+VB21.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B8:改良MS+6-BA0.5mg/L+2,4-D0.5mg/L+VB26.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B9:改良MS+6-BA0.5mg/L+2,4-D0.2mg/L+VB23.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

诱导愈伤组织增值培养基成分:

B10:改良MS+6-BA0.3mg/L+NAA0.05mg/L+VB22.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B11:改良MS+6-BA0.3mg/L+NAA0.1mg/L+VB23.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B12:改良MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.3mg/L+VB21.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B13:改良MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.4mg/L+VB22.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

(3)半枫荷愈伤组织的分化。将愈伤组织切成1.0cm2大小的块状物转入分化培养基中,在温度为24~28℃、光照强度为2000~3000lx、光照时间为10小时/天的条件下,培养45~60天,愈伤组织先是长出根部,在根长到2.0cm左右开始长出芽部分,45天后芽高约1.5cm,真叶2-4片;见附图5和6。

B14:改良MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.1mg/L+VB22.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B15:改良MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.3mg/L+VB23.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B16:改良MS+6-BA0.8mg/L+NAA0.1mg/L+VB24.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B17:改良MS+6-BA0.8mg/L+NAA0.3mg/L+VB25.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

(4)半枫荷丛生芽诱导。种子萌发30天后,一般已长出2~4片真叶,即可将其带节的茎剪下接到诱导丛生芽增殖的培养基中,并置于光照强度为1500~2000lx下培养,每天光照培养12小时;培养30-40天后植株高约3.0~5.0cm,增殖系数为2.8。见附图7和图8。

丛生芽诱导培养基成分:

B18:改良MS+6-BA0.05mg/L+NAA0.1mg/L+VB22.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B19:改良MS+6-BA0.05mg/L+NAA0.3mg/L+VB2 25mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B20:改良MS+6-BA0.08mg/L+NAA0.1mg/L+VB2 1.0mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B21:改良MS+6-BA0.08mg/L+NAA0.3mg/L+VB23.5mg/L+白糖30g/L+琼脂3.6g/L;

(5)半枫荷壮苗培养:将经分化的丛生芽剪去基部,接种于下面壮苗培养基中:并置于光照强度为2000~3000lx下培养,每天光照培养12小时;培养30-40天后植株高约3.0~4.0cm,根数4~6条,根长2~3cm。见附图9、图10、图11。

壮苗培养基:

B22:改良MS+NAA1.0mg/L+6-BA0.5mg/L+VB22.0mg/L+GA31.0mg/L+蔗糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B23:改良MS+NAA1.5mg/L+6-BA0.1mg/L+VB22.0mg/L+GA31.0mg/L+蔗糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B24:改良MS+NAA2.0mg/L+6-BA0.1mg/L+VB22.0mg/L+GA31.0mg/L+蔗糖30g/L+琼脂3.6g/L;

B25:改良MS+NAA2.0mg/L+6-BA1.0mg/L+VB22.0mg/L+GA31.0mg/L+蔗糖30g/L+琼脂3.6g/L;

(6)半枫荷生根培养:将经壮苗后的植株剪去基部接种于生根培养基中:并置于光照强度为2000~3000lx下培养,每天光照培养12小时;培养30~40天后植株高约3.0~4.0cm,80%出根,根数4~6条,根长2~3cm。见附图12、图13、图14、图15。

生根培养基成分:

B26:1/2改良MS+NAA1.0mg/L+IBA1.0mg/L+GA32.0mg/L+蔗糖30g/L+琼脂4g/L;

B27:1/2改良MS+NAA2.0mg/L+IBA1.0mg/L+GA32.0mg/L+蔗糖30g/L+琼脂4g/L;

B28:1/2改良MS+NAA1.0mg/L+IBA2.0mg/L+GA32.0mg/L+蔗糖30g/L+琼脂4g/L;

B29:1/2改良MS+NAA2.0mg/L+IBA2.0mg/L+GA32.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂4g/L;

表1、表2和表3示出了改良MS、1/2改良MS、MS的组分。

表1改良MS

表2 1/2改良MS

表3MS

以上所述的仅为本发明的较佳实施例,凡在本发明的精神和原则范围内所作的任何修改、等同替换和改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

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