基亚砜中，所得溶液抽滤除去不溶杂质，将滤液逐滴加入到搅拌中的乙醇进行沉淀，沉淀物重复溶解、抽滤和沉淀操作4次后将沉淀物真空干燥，得到纯化的直链淀粉。
[0054]本实施例中所述的二甲基亚砜经过下述方法处理得到:在市售二甲基亚砜中加入氢化钙，室温搅拌2天去除水分，减压蒸馏，收集的馏出液为干燥的二甲基亚砜。
[0055]步骤⑴的EA-Amy-1I溶于重水配成5mg/mL的溶液，利用300MHz的核磁共振氢谱仪对其进行测定，结果如图1中b所示，根据乙二胺残基亚甲基质子I以及直链淀粉异头碳质子4的信号峰积分对比计算出EA-Amy-1I中侧基接枝率为1.37。
[0056]使用热失重分析仪对步骤⑵的EA-Amy-1I/SWCNTs和步骤⑴的EA-Amy-1I在氮气氛围下进行表征，结果如图2中c和e所示。由图可见，EA-Amy-1I/SWCNTs (c)在200°C时开始明显失重，在350°C后失重趋于平缓，800°C时残留质量为61.1%。通过与SWCNTs (a)、EA-Amy-1I (e)在该温度下的平衡失重残留质量百分数对比，可以算出EA-Amy-1I/SWCNTs中SWCNTs的质量分数为62.9%。
[0057]取EA-Amy-1I/SWCNTs分散在水中形成0.lmg/mL的分散液，超声后I分钟以及放置一个月后的光学照片如图3中c所示，由图中可见SWCNTs (a)极易沉降，而久置后EA-Amy-1I/SWCNTs (c)分散体系仍然稳定。
[0058]取步骤⑵的EA-Amy-1I/SWCNTs (c)分散在水中形成0.04mg/mL的分散液，利用808nm近红外激光在lW/cm_2的强度下对其进行照射，记录不同时间点的温度值，其变化与水(a)对比如图4所示，由图中可见EA-Amy-1I/SWCNTs (c)在水分散体系中表现出明显的光热转换效应，略低于EA-Amy-1/SWCNTs (b)，与其SWCNTs含量低于EA-Amy-1/SWCNTs有关。
[0059]考察不同浓度下步骤(2)的EA-Amy-11/SWCNTs的细胞毒性(考察方法同实施例1)，结果如图5中b所示，由图中可以看出随着EA-Amy-11/SWCNTs浓度的增大，细胞存活率有所下降，但在高浓度下仍保持较高的存活率，说明EA-Amy-11/SWCNTs具有较好的生物相容性。
[0060]取步骤(3)中复合比值分别为0.1、1、2、3、5 和 10 的 EA-Amy-1I/SWCNTs/pDNA 复合物进行凝胶电泳测试，琼脂糖浓度为1%，运行电压为100V，运行时间为30min，设置pDNA作为对照组，结果如图6中b所示，可见在复合比值大于I时，EA-Amy-11/SWCNTs可完全阻滞pDNA在电场中的迀移，说明其能够有效复合pDNA。
[0061]实施例3
[0062](I)称取Ig玉米直链淀粉溶解于40mL 二甲基亚砜中，在氮气保护下，加入0.1gCDI，在25°C温度下搅拌反应lh，然后往体系中滴加2倍于CDI摩尔量的乙二胺，继续搅拌反应23h后转入截留分子量为1000的透析袋中用水透析7天，冷冻干燥后得到含伯氨基团的直链淀粉衍生物；
[0063](2)将步骤(I)的直链淀粉衍生物溶于水配制成5mg/mL的溶液，加入0.5倍于直链淀粉衍生物质量的单壁碳纳米管(长度0.5-2 μ m，直径3-5nm)，然后在冰水浴中使用40kHz的超声波进行处理，具体周期为每隔Imin超声20min，共进行4个周期的处理，将得到的混合体系在3000rpm下离心lmin，所得分散液以220nm的微孔滤膜过滤，滤渣重复水洗、离心和过滤步骤两次以除去未参与形成包合物的物质，将产物冷冻干燥，得到直链淀粉衍生物-单壁碳纳米管包合物；
[0064](3)将步骤(2)的直链淀粉衍生物-单壁碳纳米管包合物分散在双蒸水中分别配制成 0.01mg/mL、0.lmg/mL、0.2mg/mL、0.4mg/mL、0.7mg/mL 和 lmg/mL 的分散液，加入pDNA(pUC18DNA，2686bp，lmg/mL 于 ρΗ8.0 的 1mM Tris-HCl 溶液，购于宝生物工程有限公司)至pDNA的终浓度为0.lmg/mL，充分振荡后置于35°C水浴中孵育40min，得到复合比值分别为0.1、1、2、4、7和10的螺旋链多糖衍生物共负载单壁碳纳米管和核酸的复合物。
[0065]本实施例所使用的玉米直链淀粉在使用前经过纯化处理:将玉米直链淀粉溶于二甲基亚砜中，所得溶液抽滤除去不溶杂质，将滤液逐滴加入到搅拌中的乙醇进行沉淀，沉淀物重复溶解、抽滤和沉淀操作4次后将沉淀物真空干燥，得到纯化的直链淀粉。
[0066]实施例4
[0067](I)称取0.4g马铃薯直链淀粉溶解于20mL 二甲基亚砜中，在氩气保护下，加入2.4g CDI，在25°C温度下搅拌反应6h，然后往体系中滴加20倍于CDI摩尔量的乙二胺，继续搅拌反应66h后转入截留分子量为30000的透析袋中用水透析I天，冷冻干燥后得到含伯氨基团的直链淀粉衍生物；
[0068](2)将步骤⑴的直链淀粉衍生物溶于水配制成0.lmg/mL的溶液，加入0.5倍于直链淀粉衍生物质量的单壁碳纳米管(长度1-3 μ m，直径l_2nm)，然后在冰水浴中使用20kHz的超声波进行处理，具体周期为每隔1min超声5min，共进行6个周期的处理，将得到的混合体系在2000rpm下离心2min，所得分散液以450nm的微孔滤膜过滤，滤澄经水洗后冷冻干燥，得到直链淀粉衍生物-单壁碳纳米管包合物；
[0069](3)将步骤(2)的直链淀粉衍生物-单壁碳纳米管包合物分散在双蒸水中分别配制成 0.01mg/mL、0.lmg/mL、0.2mg/mL、0.3mg/mL、0.5mg/mL 和 lmg/mL 的分散液，加入pDNA(pUC18DNA，2686bp，lmg/mL 于 ρΗ8.0 的 1mM Tris-HCl 溶液，购于宝生物工程有限公司)至pDNA的终浓度为0.lmg/mL，充分振荡后置于35°C水浴中孵育20min，得到复合比值分别为0.1、1、2、3、5和10的螺旋链多糖衍生物共负载单壁碳纳米管和核酸的复合物。
[0070]实施例5
[0071](I)称取Ig小麦直链淀粉溶解于50mL二甲基亚砜中，在氮气保护下，加入5g⑶I，在40°C温度下搅拌反应3h，然后往体系中滴加15倍于CDI摩尔量的乙二胺，继续搅拌反应45h后转入截留分子量为20000的透析袋中用水透析3天，冷冻干燥后得到含伯氨基团的直链淀粉衍生物；
[0072](2)将步骤(I)的直链淀粉衍生物溶于水配制成5mg/mL的溶液，加入2倍于直链淀粉衍生物质量的单壁碳纳米管(长度0.5-2 μ m，直径3-5nm)，然后在冰水浴中使用50kHz的超声波进行处理，具体周期为每隔1min超声30min，共进行2个周期的处理，将得到的混合体系在100rpm下离心4min，所得分散液以220nm的微孔滤膜过滤，滤澄经水洗后冷冻干燥，得到直链淀粉衍生物-单壁碳纳米管包合物；
[0073](3)将步骤(2)的直链淀粉衍生物-单壁碳纳米管包合物分散在双蒸水中分别配制成 0.01mg/mL、0.lmg/mL、0.2mg/mL、0.4mg/mL、0.7mg/mL 和 lmg/mL 的分散液，加入 siRNA(MMP-9_siRNA, lmg/mL 于 DEPC 水，购于 GenePharma 公司)至 siRNA 的终浓度为0.lmg/mL，充分振荡后置于38V水浴中孵育40min，得到复合比值分别为0.1、1、2、4、7和10的螺旋链多糖衍生物共负载单壁碳纳米管和核酸的复合物。
[0074]本实施例所使用的小麦直链淀粉在使用前经过纯化处理:将小麦直链淀粉溶于二甲基亚砜中，所得溶液抽滤除去不溶杂质，将滤液逐滴加入到搅拌中的乙醇进行沉淀，沉淀物重复溶解、抽滤和沉淀操作3次后将沉淀物真空干燥，得到纯化的直链淀粉。
[0075]实施例6
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