结果(光镜X4);
[0051] 图2j为在术后第四周时实验用药组(A组）的家兔标本的组织学观察结果(光镜X 20)；
[0052]图2k为在术后第四周时阳性对照组的家兔标本的组织学观察结果(光镜X4); [0053]图21为在术后第四周时空白对照组的家兔标本的组织学观察结果(光镜X40); [0054]图3a为在术后第一周时实验用药组(A组）的家兔标本的免疫组化TGF-βΙ染色结果 (光镜X 20);
[0055]图3b为在术后第一周时阳性对照组的家兔标本的免疫组化TGF-βΙ染色结果果(光 镜 X20);
[0056]图3c为在术后第一周时空白对照组的家兔标本的免疫组化TGF-βΙ染色结果(光镜 X20)；
[0057]图3d为在术后第二周时实验用药组(A组）的家兔标本的免疫组化TGF-βΙ染色结果 (光镜X 20);
[0058]图3e为在术后第二周时阳性对照组的家兔标本的免疫组化TGF-βΙ染色结果果(光 镜 X20);
[0059]图3f为在术后第二周时空白对照组的家兔标本的免疫组化TGF-βΙ染色结果(光镜 X20)；
[0060]图3g为在术后第四周时实验用药组(A组）的家兔标本的免疫组化TGF-βΙ染色结果 (光镜X 20);
[0061]图3h为在术后第四周时阳性对照组的家兔标本的免疫组化TGF-m染色结果果(光 镜 X20);
[0062]图3i为在术后第四周时空白对照组的家兔标本的免疫组化TGF-βΙ染色结果(光镜 X20)；
[0063]图4a为在术后第一周时实验用药组(A组）的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果 (光镜X10);
[0064]图4b为在术后第一周时阳性对照组的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果果（光 镜 X20);
[0065]图4c为在术后第一周时空白对照组的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果（光镜 X40)；
[0066]图4d为在术后第二周时实验用药组(A组）的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果 (光镜X 40);
[0067]图4e为在术后第二周时阳性对照组的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果果（光 镜 X 40);
[0068]图4f为在术后第二周时空白对照组的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果（光镜 X40)；
[0069]图4g为在术后第三周时实验用药组(A组）的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果 (光镜X 40);
[0070]图4h为在术后第三周时阳性对照组的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果果（光 镜 X 40);
[0071]图4i为在术后第三周时空白对照组的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果（光镜 X40)；
[0072]图4j为在术后第四周时实验用药组(A组）的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果 (光镜X 40);
[0073]图4k为在术后第四周时阳性对照组的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果果（光 镜 X 40);
[0074]图41为在术后第四周时空白对照组的家兔标本的免疫组化BMP-2染色结果（光镜 X40)〇
【具体实施方式】
[0075]下面结合附图和【具体实施方式】对本发明的技术方案作进一步的详细说明。
[0076] 实施例1
[0077]本实施例一种和胃接骨的中药组合物，由以下重量份的成份制得：
[0078] 骨碎补150g，续断150g，土鳖虫90g，自然铜300g，当归150g，元胡200g，刘寄奴15g， 木瓜150g，僵蚕10g，女贞子10g，黄芪30g，白术120g，佛手100g，木香60g，谷芽150g，麦芽 150g，苯甲酸钠3g。
[0079] 该和胃接骨的中药组合物的制备方法包括：
[0080] 和胃接骨饮（即和胃接骨中药合剂）：将所有成份按上述重量份混合后，加入 2500mL水，煎至I OOOmL，密封保存，备用。
[0081 ]和胃接骨胶囊:先将所有成份按预设重量份混合后，加水煎煮至少两次后合并煎 液，过滤浓缩得浓浸膏;每次煎煮45分钟，过滤浓缩得浓浸膏（相对密度约1.20，20°C下测）， 将浓浸膏真空干燥后填装胶囊，获得和胃接骨胶囊。每粒和胃接骨胶囊含药用成份9g。 [0082] 实施例2
[0083]本实施例一种和胃接骨的中药组合物，由以下重量份的成份制得：
[0084] 骨碎补130g，续断180g，土鳖虫80g，自然铜320g，当归180g，元胡180g，刘寄奴10g， 木瓜180g，僵蚕15g，女贞子5g，黄芪35g，白术100g，佛手80g，木香80g，谷芽130g，麦芽130g， 苯甲酸钠5g。
[0085] 按照与实施例1相同的制备方法制备和胃接骨饮与和胃接骨胶囊。
[0086] 实施例3
[0087] 本实施例一种和胃接骨的中药组合物，由以下重量份的成份制得：
[0088] 骨碎补180g，续断130g，土鳖虫100g，自然铜280g，当归130g，元胡220g，刘寄奴 20g，木瓜130g，僵蚕5g，女贞子15g，黄芪25g，白术150g，佛手120g，木香50g，谷芽180g，麦芽 180g，苯甲酸钠 lg。
[0089] 按照与实施例1相同的制备方法制备和胃接骨饮与和胃接骨胶囊。
[0090] 对比例1
[0091] 本实施例一种和胃接骨的中药组合物，由以下重量份的成份制得：
[0092] 骨碎补150g，续断150g，土鳖虫90g，自然铜300g，当归150g，元胡200g，刘寄奴15g， 木瓜150g，僵蚕IOg，女贞子IOg，黄芪30g，苯甲酸钠3g。
[0093] 按照与实施例1相同的制备方法制备和胃接骨饮与和胃接骨胶囊。
[0094] 对比例2
[0095] 本实施例一种和胃接骨的中药组合物，由以下重量份的成份制得：
[0096] 骨碎补150g，续断150g，土鳖虫90g，自然铜300g，海螵蛸150g，当归150g，元胡 200g，刘寄奴15g，木瓜150g，白术120g，佛手100g，木香60g，谷芽150g，麦芽150g，苯甲酸钠 3g〇
[0097] 按照与实施例1相同的制备方法制备和胃接骨饮与和胃接骨胶囊。
[0098] 检测例1和胃接骨的中药组合物加速骨折愈合的研究
[0099] 1、制备动物模型
[0100]在无菌条件下将家兔左侧桡骨中、上段手术造成骨折模型，骨缺损2~3mm，术后任 兔自由行走，无外固定。术后肌注青霉素 G钠(购自江西东风药业股份有限公司，赣卫药准字 (1996)第030008号，批号：020621-3)20万u每天一次，共3天。
[0101] 2、分组及给药
[0102]将骨折模型家兔随机分为实验用药组(服用实施例1制备的和胃接骨胶囊的家兔 为A组，服用实施例2制备的和胃接骨胶囊的家兔为B组，服用实施例3制备的和胃接骨胶囊 的家兔为C组，服用对比例1制备的和胃接骨胶囊的家兔为D组，服用对比例1制备的和胃接 骨胶囊的家兔为E组）、阳性对照组和空白对照组，每组16只。家兔造模术后1日，实验用药组 中每只动物服用相应的和胃接骨胶囊一粒；阳性对照组服用麝香接骨丹(购自吉林东丰制 药一厂，批号:990106)-粒;空白对照组服用安慰剂一粒，连续服用14日。
[0103] 3、动物的处死及标本的处理
[0104] 每组每次分别于术后7天、14天、21天、28天以空气栓塞法各处死4只。每组处死动 物自两侧上臂下端剪下，放入-20°C冰箱保存。分别进行X线检查、骨密度检查、生物力学检 查后取材做组织病理及免疫组化检查。其中骨密度检查、生物力学检查只做术后28天的标 本;X线检查、免疫组化检查只做术后7天、14天、28天的标本。
[0105] 4、观察指标
[0106] (1)-般项目：连续观察三组动物毛发光泽度、食量、活动度、反应度、切口情况。
[0107] (2)摄X线片:观察术后7天、14天、21天、28天家兔左侧桡骨中、上段骨折处缺损情 况、骨膜反应、骨痂量、骨小梁。
[0108] (3)骨密度检查：用UBIS3000超声骨密度测定仪(法国DMS公司）测定家兔骨折处的 声量减弱值(BUA)，以反应骨量、骨质变化。
[0109] (4)抗折力测试：用岛津万能测试仪进行兔桡骨三点弯曲最大负载力学测定，以 骨折处为中心，跨距为2厘米，加载速率为5mm/min，测出每根兔桡骨的弯曲载荷。为了克服 个体差异，应采取骨折一侧桡骨三点弯曲载荷值除以健侧三点弯曲载荷值得到的百分比进 行统计，以减少因个体差异带来的误差。
[0110] (5)组织学观