专利名称：：含在植物纤维或微生物不溶组分中的草酸降解酶的制备方法及用途的制作方法
技术领域：
：本发明涉及降解人或动物饮食制品中的，或食入胃肠中的，以及渗入胃肠中的生理代谢产生的草酸盐，以减少人或动物从饮食制品中吸收草酸盐以及降解生理代谢产生的草酸盐，因而起到预防或治疗尿草酸盐过多和与尿草酸盐过多相关的人或动物的病症。该发明产品有两种基本应用途径一、使用本发明的草酸降解酶在饮食品加工过程中降低或完全除去饲料、饮料及食品中的草酸盐；二、直接口服以该草酸降解酶为组分的制品以降解食入胃肠中的以及渗入胃肠中的由生理代谢产生的草酸盐。
背景技术：
：人体内的草酸盐主要来源于从饮食中吸收和生理代谢产生这两种途径。正常人生理代谢产生的草酸盐量的多少变化范围不大。因生理代谢产生过量草酸盐的人数量极少，是由缺少有关代谢的酶造成。从饮食中吸收的草酸盐的量因人而异，可占总量的10—70%。草酸钙结石病人从饮食中吸收的草酸盐比正常人平均多50%。(R.Holmes等，Urol.Res.，32:311—316，2004)。体内的草酸盐主要由肾脏过滤、浓縮、经过尿液排出体外。尿液中草酸盐排除量是衡量由于尿草酸盐过量产生的各种病症的一个重要指标。体内草酸盐过多与多种病症有关。如肾草酸钙结石，尿道及膀胱结石，肾功能衰退，妇女的阴道触发性痛(vulvodyna)，儿童的孤僻症(Autism)，以及因草酸盐过多导致的关节炎等。仅结石一项，每年给全球数以千万的人带来痛苦以及导致上百亿美元的经济损失。据美国的国家卫生研究院的统计资料(M丄itwin等，UrologicDiseaseinAmerica,NIHpublication07-5512:3-7,2007),仅2000年，结石给美国带来的经济损失为21亿美元。目前还没有一种简单有效的办法来降低这些尿草酸盐过多的病人从食品中吸收草酸盐。仅为收集信息的目的，这里介绍这些正在进行早期研究中的各种可能方法1.将草酸氧化酶(PCT/US2006/023115)或草酸脱羧酶(美国专利申请US11/833082)制成蛋白晶体再用戊二醛交联提高其稳定性，然后将这些晶体制成口服药剂用于降解胃肠中的草酸盐；2.口服稀土金属盐从胃肠中吸收草酸盐(CN100438866C);3.口服微生物如多种芽孢杆菌和双歧杆菌的混合物制品。为了预防从饮食中吸收草酸盐，病人需要每餐服用药品或食品添加剂，终生坚持。方法1，2长期服用可能有毒副作用。方法3中的微生物制剂临床效果不明显，因为这些微生物可以不用草酸盐而生存(D.Goldfarb等，CLIN.J.Am.Soc.N印hrol.,2:745-749,2007)。对于这些尿草酸盐吸收过多的人群，医生往往建议食用低草酸盐食物。但是可供选择的低草酸盐饮食材料有限，而且草酸盐在这些食物中的含量受植物生长环境、气候、季节、产地等诸多因素的影响而增加这些人群选择食品难度与可靠性。而且，既使能够坚持食用这些低草酸盐食品，每餐也会大约摄入20—50毫克草酸盐。另外，这些人群可能会因为可选择的食品有限而导致营养不良。因而，这不是解决问题的安牵有效的办法。市场上极为需要一种安全，价廉，可靠的方法来降低食品中或体内的草酸盐以达到预防和治疗作用，本发明因此而产生。通过使用本发明而生产的制品，不仅可以降低胃肠从食入品中吸收草酸盐，还可能因降低了胃肠中草酸盐浓度而促使人体代谢产生的草酸盐通过主动运输，被动运输等生理过程渗入胃肠。渗入胃肠的草酸盐得到草酸降解酶降解而进一步降低血液中的尿草酸盐含量，进而降低尿草酸盐含量。发明概述一、草酸降解酶目前已发现的草酸降解酶有草酸氧化酶(EC1.2.3.4)，草酸脱羧酶(EC4.1.1.2)及草酰辅酶A脱羧酶(EC4.1.1.8)。草酰辅酶A脱羧酶需甲酰辅酶A转移酶(EC2.8.3.16)先将草酸盐与辅酶A合成草酰辅酶A后而进行降解。有关这些酶的结构，反应机理及其在自然中的分布已有详细叙述(D.Svedruzic等，Arch.Biochem.Biophys.,433，176-192,2005)。草酸氧化酶催化的反应是HOOC-COOH+02—2C02+H202草酸脱羧酶催化的反应为HOOC-COOHC02+HC00H草酰辅酶A脱羧酶及甲酰辅酶A转移酶催化的反应是甲酰辅酶A转移酶HCO-C。A+HOOC-COOH—HCOOH+HOOCCOCoA草酰辅酶A脱羧酶H00C0CoA—HC0CoA+C02草酸氧化酶存在于许多种植物与微生物中，如各种谷物的幼根及受损伤的叶子，香蕉皮，九重葛，苔藓，甜菜，食用菌等。在破碎植物或微生物并离心后，植物或微生物中的草酸氧化酶有的溶解在上清液中，有的却分布在不溶的破碎组分中。植物不溶的破碎组分主要为纤维。微生物不溶的破碎组分主要为细胞壁成分。同种植物或微生物中已发现有二种或二种以上同工酶。一些不表达草酸氧化酶的植物，通过转基因处理而获得该酶基因并成功地进行表达(X.Hu等，PlantPhysiol.133:170-181,2003)。一些不表达草酸氧化酶的微生物，通过基因克隆处理而获得该酶基因并进行表达(D.Svedruzic等，Arch.Biochem.Biophys.,433,176-192'2005)。草酸脱羧酶存在于多种真核与原核微生物中。真菌的草酸脱羧酶基因被转移到植物，如烟草中，并已成功地在烟草中表达了草酸脱羧酶(M.Kesarwanietal.，J.Biol.Chem.275:7230-7238,2000)。与草酸氧化酶相同，植物或微生物中的草酸脱羧酶有的溶解在上清液中，有的却分布在植物纤维或不溶的微生物破碎组分中。草酰辅酶A脱羧酶及甲酰辅酶A转移酶的组合发现主要存于微生物中，如Pseudomonasoxalaticus与Oxabacterformigenes等(D.Svedruzic等，Arch.Biochem.Biophys.，433,176-192,2005)。二、植物与微生物原材料原则上讲，任何植物与微生物的全部或特定部位，如果其不溶组分(植物纤维或不溶的微生物破碎组分)中含有大量的草酸降解酶，均是可选原材料。但是，无毒、可食及容易生产与加工都是选择因素。培养方法因原材料而异，选择培养方式取决于生产成本与生产条件。植物的培养种植方法可以是有土种植或无土培养；微生物的培养可选发酵或栽培。草酸降解酶的产量取决于植物的生长条件与时间和微生物的发酵或栽培条件及时间。在不溶组分中草酸降解酶含量最高的期间收获。以无土，自来水，温度在2(TC左右培养春小麦苗为原料制备的草酸氧化酶为例从麦粒发芽之日起草酸氧化酶即开始表达，但是随着麦芽长大成麦苗，麦苗长大成小麦株，草酸氧化酶总含量也在提高。大约在发芽起第10—14天，酶含量与产量均达到最大值。这时，麦粒种子中的储备养分也基本耗尽，可以收获麦苗来制备草酸氧化酶。草酸氧化酶分布于整个植株，但根中含量最高。根和整个麦苗皆可作为原料，但以根为原料制成的中草酸氧化酶含量每克干重最高。草酸氧化酶含量可以进一步被诱导提高。如果在麦苗发芽第8—10天时，对麦苗进行机械损伤或微生物感染处理，3—4后天收获，草酸氧化酶产量可提高20—300%。如果在麦苗发芽第8—10天时对其进行化学处理，如将根浸泡在一定浓度的草酸盐、铝盐或其他化合物溶液中1一3天，或向麦苗喷洒这些化合物溶液，也可以提高草酸氧化酶产量10—240%。微生物的草酸降解酶的产量受发酵或栽培条件影响。可以改变发酵或栽培条件或进行物理或化学诱导提高草酸降解酶产量。三、植物纤维或微生物不溶组分中草酸降解酶的制备这里以无土培养的春小麦苗为例。以其他植物为原材料的制备方法相似。取在2CTC左右、自来水培养到第10—14天的麦苗去掉老的种子空壳，洗净，搾干以取纤维部分，冲洗纤维，切割成O.l—0.5厘米长，用巴氏消毒(对于热不稳定的酶，可用其它方法消毒)，干燥，分装即成。如制成粉末，在切成O.l—0.5厘米长以后进行粉碎处理并在干燥后过筛获取一定大小的粉末。从微生物不溶组分制备草酸降解酶的方法与以植物为原料的制备方法除培养方法不同夕卜，其他部分相似。微生物的栽培或发酵方法根据原材料的不同而定，可选用现有的或经改进的方法。将微生物原料如食用菌收获后，洗净，切片，用巴氏法消毒(对于热不稳定的酶，可用其它方法消毒)，然后干燥，粉碎，过筛获取一定大小的粉末，分装即成。四、用途几乎所有的以植物为原材料的食品，饮料，中药制剂以及饲料均含有草酸盐，其中绿叶蔬菜，巧克力，可可，花生及花生制品，黄豆及豆制品，茶叶及含茶饮料，咖啡，各种麦类谷物等中含量很高。在加工或制备这些制品时，可用草酸降解酶降低或完全除去草酸盐，以提供低草酸盐(甚至无草酸盐)的饮食品给需要的人群或动物群。草酸降解酶也可制成食品添加剂或药品与食品一起食入，在胃肠中降解食入的饮食品中的草酸盐以降低草酸盐被胃肠吸收。另外，还可能因降低了胃肠中草酸盐浓度而促使人体代谢产生的草酸盐通过主动运输，被动运输等生理过程渗入胃肠。渗入胃肠的草酸盐可得到草酸降解酶降解而进一步降低血液中的尿草酸盐含量，进而降低尿草酸盐含量。本发明制备的草酸降解酶受植物纤维或微生物不溶组分保护而不受胃肠蛋白酶破坏，且在酸性，中性及碱性环境下均能找到稳定并具有高活性的草酸降解酶，因而十分适合于制成口服制品在胃肠中降解草酸盐与用在各种低草酸盐(甚至无草酸盐)的饮食品的加工或制备。实例实施例l分析方法草酸HPLC测定方法采用文献报道的方法(C.Clausen+等，InternationalBiodeterioration&Biodegradation62:372-375,2008)。草酸比色法测定采用美国TrinityBiotech的试剂盒(St.Louis,Mo.)。草酸氧化酶活力测定将0.9ml2mM草酸盐溶液(其中含50mM柠檬酸盐缓冲液，pH3.5，或50mM磷酸盐缓冲液，pH5.5)，在37。C预热10分种，然后加入0.lml含草酸氧化酶的悬浮液以开始反应。反应30分钟后，迅速离心2分钟并取上清液，用HPLC测定残留草酸盐浓度。一个酶活力单位(U)为在此条件下，每分钟降解1个微摩尔草酸盐所需的酶量。草酸脱羧酶活力测定，将0.8ml10mM草酸盐溶液(其中含50mM柠檬酸盐缓冲液，pH3.5)，在37'C预热10分钟后，加入0.1ml含草酸脱羧酶的悬浮液开始反应。反应30分钟后，加入0.1ml1N盐酸使酶失活。迅速离心并取上清液，用HPLC测定残留草酸盐浓度。一个酶活力单位(U)为在此条件下，每分钟降解1个微摩尔草酸盐所需的酶量。实施例2在各种植物中的草酸氧化酶草酸氧化酶存在于多种植物中。这里给出一些实例。将荞麦(buckwheat)、长粒麦(kamut)、裸麦(rye)、黑小麦(triticale)、大麦(barley)、冬小麦(winterwheat)、春小麦(springwheat)、燕麦(oat)、苋菜(amaranth)、小米(millet)、玉米(corn)、高粱(sorgh咖)等种子用水浸泡3—15小时后，包在温布中发芽24小时。然后将发芽的种子放在不锈钢网上，网下则为清洁自来水，水位保持在刚刚触网。在室温下培养6—10天。收获这些全苗时，去掉老种子壳，洗净。另采用有土种植的甜菜茎(Betavulgaris)与九重葛(Bougainvillea)的叶子，洗净作为原料。将收获表1<table>tableseeoriginaldocumentpage7</column></row><table>的植物的全苗，茎，叶用匀浆机打碎后，离心，分开上清液与沉淀物。分别测定上清液与用水悬浮的沉淀物悬浮液的草酸氧化酶活力。高梁与九重葛的草酸氧化酶活力最适PH在5-6之间，所以在pH5.5下测定，其余酶活力最适pH在3—4之间，所以在pH3.5下测定。测定结果见表1。表1列出每克鲜材料所得的上清液与沉淀物中各含的酶活力。实施例3草酸氧化酶在同一植物不同部位的分布选择实施例2中的完整春小麦苗，将之分成根、茎、叶三部分，然后分别洗净，打碎，测酶活。其中根的酶含量最高，为每克鲜重2.36单位。叶，茎酶含量分别为每克鲜重0.72与0.44单位。实施例4培养时间对酶产量的影响以春小麦为例，用实施例2中的方法，将培养6—18天的麦苗取出测草酸氧化酶在整个麦苗纤维中的含量，结果列于表2。表2<table>tableseeoriginaldocumentpage7</column></row><table>81.04101.51121.67142.02161.98181.90实施例5提高酶产量的诱导方法以春小麦为例，用实施例2中的方法，将培养8天的麦苗分别进行以下处理l.用针给叶子扎很多孔，每个孔相距约2毫米。将叶子浸泡在6mM草酸盐中1分钟，然后继续培养；2.给茎的底部接种真菌Sclerotiniasclerotiorum后继续培养。继续培养3天后，收获全苗，洗净，打碎，测酶含量。与未经任何处理的但继续同样培养3天的对照组麦苗进行对比，没有经任何处理的麦苗的酶含量为每克鲜重1.52单位，处理1和2分别增加酶含量31%与82%。实施例6植物全粉的制备以春小麦为例，用实施例2中的方法，将培养14天的麦苗收获，去掉老种壳，洗净，切成0.2—0.5厘米长，进行巴氏消毒，然后干燥，粉碎，过筛，分装。这种植物全粉除含草酸氧化酶外，还含有许多其他对身体有益的营养成分，有额外的保健作用。实施例7含在植物纤维段中的草酸氧化酶的制备以春小麦为例，用实施例2中的方法，将培养14天的麦苗收获，去掉老种壳，洗净，榨干，收集的纤维部分用水洗净，切成0.1—1.0厘米长，长短视用途而定，采用巴氏消毒，干燥即成。此法所得的制品一般每克干重含有10—50单位酶活力。在用于降低饮用品，食品及饲料中的草酸盐时，植物纤维段比纤维粉末易于从加工品中分开。实施例8含在植物纤维粉末中的草酸氧化酶的制备基本上同实施例7，但是纤维切断成O.l—0.5厘米，然后需粉碎，干燥之后需要过筛去掉过大纤维。此法所得的制品一般每克干重含有10—50单位酶活力。活力达到口服降低胃肠中草酸盐吸收的要求。在用于口服时，纤维粉比植物纤维段更合适。实施例6，7，8虽以春小麦为例，但基本上适合于大麦，冬小麦，裸麦，黑小麦，水稻等热稳定性草酸氧化酶植物，对于热不稳定性草酸氧化酶的植物，用过氧化氢，氯水或放射线等物理或化学方法消毒代替巴氏消毒。实施例9含在植物纤维中的草酸脱羧酶的制备基本上同实施例6，7，8，但植物原材料经过转基因处理并且该植物能够成功地表达草酸脱羧酶。实施例10在各种微生物中的草酸脱羧酶草酸脱羧酶天然存在于多种微生物中。这里给出一些实例。将新鲜杏鲍菇(Pleurotesseryngii),平恭(Pleurotusostreatus),蘑恭(Agaricusbisporuscampestris),褐兹(Agaricuscrocopeplus),香恭(Lentinulaedoales),金针燕(Fla咖ulinaVelutipes),云芝(TrametesVersicolor)洗净，用匀桨机打碎后，离心分开上清液与沉淀物。分别测定上清液与用水悬浮的沉淀物悬浮液草酸脱羧酶活力(在pH3.5下测定)。测定结果见表3。应该指出微生物的草酸脱羧酶的产量受发酵或栽培条件影响。改变发酵或栽培条件及采用物理或化学诱导会进一步提高草酸脱羧酶产量。表3上清液(U/g鲜重)沉淀物悬浮液(U/g鲜重)杏鲍菇0.572.15平菇0.130.47蘑茹0.190.28褐菇0.200.31香菇0.240.37金针燕0.350.76云芝0.481.39实施例11含在食用菌或药用菌不溶组分中的草酸脱羧酶的制备食用菌或药用菌不溶组分中草酸脱羧酶的制备方法与以植物为原料的制备方法相比，除培养方法不同外，其他类似。各种菌类栽培方法与发酵方法可选用现有的或改进的培养方法。将原材料如蘑菇，金针菇或其他可食用菌类收获后，洗净，切碎，采用巴氏消毒(对于热不稳定的酶，可用其它方法消毒)，然后干燥，粉碎，过筛获取一定大小的粉末，分装即成。此法所得的制品一般每克干重含有5—150单位酶活力。'实施例12植物纤维或微生物不溶组分对草酸氧化酶与草酸脱羧酶的保护作用实施例1中的TrinityBiotech的试剂盒中含有大麦苗中纯化的可溶性的草酸氧化酶。将此草酸氧化酶，实施例8中制备的春小麦草酸氧化酶粉和实施例11中制备的杏鲍菇草酸脱羧酶粉各自配制成1U/mL的溶液与悬浮液，然后与等体积的含6.4mg/mL胃蛋白酶的200mM甘氨酸缓冲液(pH2.5)混合，37'C下搅拌，在一系列的时间点取样分析残留的酶活力。从大麦中纯化的可溶性的草酸氧化酶在5分钟内失去全部活力，而实施例8中与实施例11中制备的草酸氧化酶与草酸脱羧酶在1小时后，还分别保留了90%和73%的活力。此结果表明了植物纤维与微生物不溶组分对草酸降解酶的保护作用。实施例13草酸脱羧酶与草酸氧化酶活力pH范围与稳定pH范围草酸脱羧酶与草酸氧化酶活力pH范围与植物或微生物的原材料种类有关。麦类草酸氧化酶与食用菌类草酸脱羧酶的活力pH范围一般是2—6，理想的pH是3—4.5,与胃中pH相符，这些酶适合在胃中除去食入物品中的草酸盐。从高梁或九重葛中制得的草酸氧化酶活力pH范围是2.5—8.5，理想pH范围是4.5—7，与肠中pH相符，这些酶适合在肠中除去食入物品中的草酸盐。对于食品加工过程，在pH2—9范围内均有相适应的酶可选。这些酶在其活力pH范围一般都很稳定，不宜失活，因而给应用带来方便。实施例14除去茶水中的草酸盐茶水中每升含有1一40毫克的草酸盐，含量取决于茶的种类，产地，浓度与制备方法。取绿叶茶20克，放入90—95i:热水中泡5分钟后滤去茶叶，待水温降低5(TC以下，调pH至3.0—4.0(如果使用从高粱或九重葛中制得的草酸氧化酶，则不用调pH)，然后加入20单位实施例7或实施例8中制得的草酸氧化酶并通空气搅拌2小时(如果使用从实施例11中制得的草酸脱羧酶，则不用通空气)，茶水中的草酸盐被全部除去。此例适合于制造无草酸茶水与茶冲剂等。也适合于除去许多中药制剂中的草酸盐。实施例15除去豆制品中的草酸盐干黄豆的草酸盐含量相当高。这也使各种豆制品含有大量的草酸盐。黄豆制品是亚洲人的日常食品，也是蛋白质重要来源。因此，除去豆制品中的草酸盐对尿草酸盐过多的人群十分有意义。将豆浆的pH调到3.0—4.0(如果使用从高梁或九重葛中制得的草酸氧化酶，则不用调pH)，然后加入由实施例7或8中制得的草酸氧化酶，通气(如果使用从实施例11中制得的草酸脱羧酶，则不用通空气)，搅拌至草酸盐降低到一定含量。降解草酸盐所需的时间与豆浆中的草酸盐含量和加入的酶量有关。例如100升豆浆中含10克草酸盐，加1500单位草酸脱羧酶或草酸氧化酶，需要处理约2小时。实施例16除去巧克力中的草酸盐将巧克力乳浊液的pH调到草酸降解酶的理想pH，加入足够量的草酸降解酶(草酸氧化酶或草酸脱羧酶)，通空气(如果用草酸脱羧酶则不用通气)，搅拌，直到草酸盐浓度降到许可范围。实施例17口服例将尿草酸盐过多的10人分成2组进行为期5天的实验。在5天中，每人每天规定吃同样的饮食，但早、中、晚三餐饮食不同，各含草酸盐30,200,200毫克。收集各人在第二天还没有口服草酸氧化酶或草酸脱羧酶的24小时尿样作为对照。从第三天起到第五天止，第一组(编号1一5)在每餐中口服150单位含在纤维粉末中的草酸氧化酶；第二组(编号6—10)在每餐中口服150单位含在纤维粉末中的草酸脱羧酶。收集各人在第五天的24小时尿样。用试剂盒比色法测定样品中的草酸盐含量，结果见表4。表4中的数据为一天24小时尿样中的草酸盐总量，单位为毫克。可见草酸氧化酶与草酸脱羧酶都能显著降低这些人的尿草酸盐含表4<table>tableseeoriginaldocumentpage11</column></row><table>权利要求1.含在植物纤维或微生物不溶组分中的草酸降解酶的用途原料或制品中含有该特征的酶被用于降低饮用品、食品及饲料中的草酸盐或用于口服从而降解胃肠中食入物品中的草酸盐以及渗入胃肠中的由生理代谢产生的草酸盐，因而起到预防或治疗尿草酸盐过多和与尿草酸盐过多相关的人或动物的病症。2.如权利要求1中所述的用途，所述的植物纤维或微生物不溶组分中含有的草酸降解酶是草酸氧化酶，或草酸脱羧酶，或草酰辅酶A脱羧酶与甲酰辅酶A转移酶的组合，或为以上三种中的任意两种或两种以上的组合；这些酶为所采用植物或微生物具备的天然基因的表达产物或为通过转基因处理而获得的基因的表达产物。3.如权利要求1中所述的用途，所述的植物纤维或微生物不溶组分中含有的草酸降解酶，是指在破碎植物组织或微生物细胞后，分布于不溶的植物破碎组织中或不溶的破碎微生物细胞组分中的草酸降解酶。该不溶的植物破碎组织含大量纤维成分。该不溶的破碎微生物细胞组分主要来自细胞壁。草酸降解酶可能被包裹在植物或微生物不溶的破碎组分中或附在其上，受不溶组分保护而降低蛋白酶对其破坏作用。草酸降解酶因分布于植物或微生物不溶组分中，易于制备；在用于降低饮用品、食品及词料中的草酸盐时，易于从加工品中分开。4.如权利要求1中所述的用途，所述的植物纤维或微生物不溶组分中含有的草酸降解酶活力应高于每克干重0.5单位。5.如权利要求1中所述的用途，所述的植物纤维或微生物不溶组分中的草酸降解酶的制品的形状为粉末或具有一定长度的纤维，具体视原料的来源禾卩用途而定。6.如权利要求1中所述的用途，所述的植物纤维中的草酸降解酶制备方法具有以下的部分或全部特征a.植物的种植培养为有土种植或无土培养。b.植物的各部位，如根，茎，叶，花，果，均可为原料，选材视草酸降解酶的含量与用途而定。C.草酸降解酶的含量可通过适当的方法诱导而提高。提高酶含量的方法有物理损伤，化学处理，植物激素诱导及微生物感染等。d.制备过程对植物原料需进行破碎处理，并采用不溶的破碎组织加工成产品。e.原材料为各种含有草酸降解酶基因的植物，该基因为天然具备的或转基因而获得的。7.如权利要求1中所述的用途，所述的微生物不溶组分中的草酸降解酶制备方法具有以下的部分或全部特征a.微生物的培养为发酵或菌类栽培。b.草酸降解酶的含量可通过适当的方法诱导提高。提高酶含量的方法光、热、化学诱导等。c.制备过程对微生物原料需进行破碎处理，并采用不溶的破碎组分加工成产品。d.原材料为各种含有草酸降解酶基因的微生物，该基因为天然具备的或由基因克隆而获得的。全文摘要本发明公开了一类含在植物纤维或微生物不溶组分中的草酸降解酶的制备方法及具有该特征的草酸降解酶在制备低/无草酸盐饮料，食品和饲料；或制成食品添加剂或药物达到预防或治疗尿草酸过多及与尿草酸盐过多相关的病症中的用途。本发明制备的草酸降解酶因含在植物纤维或微生物不溶组分中，受到植物纤维或微生物不溶组分的保护而不被胃肠中蛋白酶降解；并且因其含在植物纤维或微生物不溶组分之中，制备工艺简单，成本低。由于来自植物或微生物，尤其是食用植物或微生物，无毒副作用，利于长期服用。文档编号A61K38/43GK101554237SQ20091007154公开日2009年10月14日申请日期2009年3月16日优先权日2009年3月16日发明者王肇和申请人:王肇和