神经保护肽的制作方法

专利名称：神经保护肽的制作方法
技术领域：
本发明涉及通过给予具有人红细胞生成素的治疗活性的组合物治疗涉及神经系统的疾病和病症的方法。这些组合物包括具有人红细胞生成素所有生物活性或只具有红细胞生成素某些生物活性的治疗剂，例如肽、肽二聚体、多肽和蛋白。本发明还提供了改良的治疗方案，其中所述治疗剂以低于刺激红细胞生成所需要的浓度给予。
背景技术：
红细胞生成素(EPO)是由肾脏对组织缺氧应答而产生的糖蛋白激素，在骨髓中刺激血红细胞的生成。如美国专利号4,703,008中所描述的，红细胞生成素的基因已经被克隆并在中国仓鼠卵巢细胞(CHO)中表达。重组人红细胞生成素(rHuEPO或Epoetin α)具有与人尿红细胞生成素相同的氨基酸序列，它们在化学检测、物理检测和免疫检测上无法区分。重组人红细胞生成素通过增加能够分化成为成熟红细胞的细胞数量、触发它们的分化和增加发育中成红细胞的血红蛋白的合成来起作用(Krantz SB.Blood(1991)77419-434，Beckman BS，Mason-Garcia M.The Faseb Journal(1991)52958-2964)。
Epoetinα在迄今为止进行的研究中可以被很好的耐受。在用Epoetinα治疗的透析患者中偶尔会有高血压性脑病和癫痫发作的记述，详细地讲是在治疗的早期当血细胞比容升高时(Eschbach JW，EgrieJC，Downing MR，Browne JK，Adamson JW.New Engl J Med(1987)31673-78，Winearls CG，Oliver DO，Pippard MJ等，Lancet(1986)2(8517)1175-1177)。这类报告会因为逐渐获得使用所述化合物的经验而变得更加罕见。偶尔地，Epoetinα治疗的癌症患者会经历一个与血细胞比容明显升高有关的血压升高。然而，所述风险实际上显示出低于慢性肾衰竭患者。
在用Epoetinα治疗达到2年的患者中不能够例证和确证抗Epoetinα抗体的效价，这表明缺乏对Epoetinα的免疫敏感性。皮疹和风疹很少被观察到，当有报道时实际上已经是轻微和短暂的，但这些事件暗示了对Epoetinα制剂中某些组分的超过敏性。
Epoetinα在许多国家批准上市用于治疗慢性肾衰竭贫血症(透析和透析前)、齐多夫定治疗HTV阳性患者的贫血症(US)、接受基于铂化疗的癌症患者的贫血症，作为自体捐血前的促进剂和在进行整形手术的患者中作为围手术辅助剂以减少要求异源输血的可能性。
EPO也许在胚胎发育过程中、以及可能在体外分化实验中影响神经元干细胞(Juul等Pediatr Dev Pathol(1999)2(2)148-158，Juul等Pediatr Res(1998)43(1)40-49)。此外，遭受由于低氧、脑膜炎和心室内出血而导致的CNS损伤的新生儿和婴儿显示出EPO诱导的神经保护作用(Juul等Ped Res(1999)46(5)543-547)。
一旦损伤导致低氧，EPO可以帮助防止神经组织的细胞凋亡。这有可能是星形胶质细胞局部产生EPO的结果(Morishita等Neuroscience(1996)76(1)105-116)。神经保护已经在沙土鼠海马组织和大鼠大脑皮质组织中得到例证(Sakanaka等PNAS(1998)95(8)4635-4640，Sadamoto等Biochem Biophys Res Commun(1998)253(1)26-32)。
EPO诱导PC12细胞的生物效应，包括Ca2+的变化、跨膜电位的变化和促进神经元存活。这被解释为EPO可以刺激神经功能和存活能力(Koshimura等J.Neurochem(1999)72(6)2565-2572。Tabria等Int JDev Neurosci(1995)13(3/4)241-252)。
O′Brien等提出，EPO的一个17个氨基酸肽序列可以通过EPO-R(红细胞生成素受体)在NS20Y、SK-N-MC和PC12细胞中诱发生物活性，包括出芽、分化和神经保护。令人惊奇的是，这种肽并不促进血细胞的增殖，因此它看来在熟知对于EPO活性敏感的细胞系中无活性。(Campana等Int J Mol Med(1998)1(1)235-241和O′Brien等的于12/23/1999授予的美国专利号5,700,909、于11/5/1996授予的美国专利号5,571,787、于2/3/1998授予5,714,459和于12/9/1997授予的美国专利号5,696,080)。
EPO可以影响神经元干细胞定型从而促进神经元不向星形胶质细胞或少突胶质细胞分化。这与EPO促进造血干细胞定型产生红细胞(RBC)的类似活性相比拟。在CNS低氧性损伤导致从星形胶质细胞产生EPO促进神经元干细胞分化为神经元、以及同时还对存在的神经元发挥神经保护作用之间明显有关联(WIPO公布号WO99/21966，于5/6/1999公布，Weiss等)。
发明概述本发明涉及通过给予具有人红细胞生成素神经治疗活性的组合物来治疗涉及神经系统的疾病和病症的方法。
在第一个实施方案中，本发明涉及一种用于治疗患有特征为神经毒性、神经变性或神经损伤的病症的患者的方法，所述方法包括对所述患者给予治疗有效量的肽，该肽含有一个或多个长8到约40个氨基酸并与EPO受体结合的单体肽，每一个单体肽包含一个氨基酸序列X4X5XaXbX6XcXdX7(SEQ ID NO47)，其中Xa是G或A；Xb是P或A；Xc是T或A；Xd选自W、A和F；
X4选自R、H、Y、L和W，或者X4不存在；X5选自F、M和I；X6独立选自20种遗传编码的L-氨基酸或立体异构的D-氨基酸；和X7选自D、V、E、I和L。
详细地讲，所述序列是X3X4X5GPX6TWX7X8(SEQ ID NO1)，其中X3选自C、E、A、α-氨基-γ-溴丁酸和高半胱氨酸(Hoc)；和X8选自C、K、A、α-氨基-γ-溴丁酸和高半胱氨酸(Hoc)。
在第二个实施方案中，本发明涉及做为细胞表面受体的激动剂和拮抗剂的肽，以及显现出结合生长因子类受体并且启动生长因子类受体信号的这类肽的二聚体和多聚体。在一个实施方案中，本发明提供了做为EPO激动剂的肽。这些肽可以是这类肽的二聚体或多聚体，优选长14至约20个残基，包含一个X3X4X5GPX6TWX7X8(SEQ ID NO1)的核心氨基酸序列，其中每一个氨基酸通过标准单字母缩写来表示；X3可以是C、E、A、α-氨基-γ-溴丁酸或Hoc，其中Hoc是高半胱氨酸；X4可以是R、H、Y、L或W，或者X4不存在；X5可以是M、F或I；X6独立地是20种遗传编码的L-氨基酸或立体异构D-氨基酸中的任何一种；X7可以是D、E、I、L或V；和X8可以是C、K、A、α-氨基-γ-溴丁酸或Hoc，其中Hoc是高半胱氨酸。
优选所述二聚体或多聚体的单体肽单位包含一个YX2X3X4X5GPX6TWX7X8(SEQ ID NO2)氨基酸核心序列，其中X2和X6中的每一个独立地是20种遗传编码的L-氨基酸中的任何一种；X3是C；和X8是C。
优选所述二聚体的单体肽单位包含一个X1YX2X3X4X5GPX6TWX7X8X9X10X11(SEQ ID NO3)氨基酸核心序列，其中X1、X2、X6、X9、X10和X11中的每一个独立选自20种遗传编码的L-氨基酸。详细地讲，X3可以是C、E、A；X4可以是R、H或Y，或者X4不存在；X5可以是M、F或I；X7可以是D或V；和X8可以是C、K或A。
在一个更优选的实施方案中，X3和X8都是C，因此所述二聚体的单体肽单位包含一个X1YX2CX4X5GPX6TWX7CX9X10X11(SEQ ID NO4)氨基酸核心序列。详细地讲，所述单体肽单位包含一个X1YX2CX4X5GPX6TWX7CX9X10X11(SEQ ID NO5)氨基酸核心序列，其中X4可以是R或H；X5可以是F或M；X6可以是I、L、T、M或V；X7是D或V；X9可以是G、K、L、Q、R、S或T；和X10可以是A、G、P、R或Y。更详细地讲，所述二聚体的单体肽单位会包含一个X1YX2CX4X5GPX6TWX7CX9X10X11(SEQ ID NO6)氨基酸核心序列，其中X1可以是D、E、L、N、S、T或V；X2可以是A、H、K、L、M、S或T；X4是R或H；X9可以是K、R、S或T；和X10是P。
优选所述二聚体的单体肽单位会包含一个X1YX2CX4X5GPX6TWX7CX9X10X11(SEQ ID NO6)氨基酸核心序列，其中X1可以是D、E、L、N、S、T或V；X2可以是A、H、K、L、M、S或T；X4是R或H；X9可以是K、R、S或T；和X10是P。
所述二聚体的特别优选的单体肽单位包括GGLYLCRFGPVTWDCGYKGG (SEQ ID NO7)；GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-1) (SEQ ID NO8)；GGDYHCRMGPLTWVCKPLGG (SEQ ID NO9)；VGNYMCHFGPITWVCRPGGG (SEQ ID NO10)；GGVYACRMGPITWVCSPLGG (SEQ ID NO11)；VGNYMAHMGPITWVCRPGG(SEQ ID NO12)；GGTYSCHFGPLTWVCKPQ (aka EMP-16)(SEQ ID NO13)；GGLYACHMGPMTWVCQPLRG (aka EMP-36)(SEQ ID NO14)；TIAQYICYMGPETWECRPSPKA (aka EMP-38)(SEQ ID NO15)；YSCHFGPLTWVCK (aka EMP-20)(SEQ ID NO16)；YCHFGPLTWVC(aka EMP-23)(SEQ ID NO17)；SCHFGPLTWVCK (aka EMP-24)(SEQ ID NO18)；GGTASCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-6)(SEQ ID NO19)；GGTYSCHFAPLTWVCKPQGG (aka EMP-9)(SEQ ID NO20)；GGTYSCFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-27)(SEQ ID NO21)；TYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-17)(SEQ ID NO22)；TYSCHFGPLTWVCKPQ (aka EMP-18)(SEQ ID NO23)；YSCHFGPLTWVCKP (aka EMP-19)(SEQ ID NO24)；YSCHFGPLTWVC (aka EMP-21)(SEQ ID NO25)；YSCHFGALTWVCK (aka EMP-22)(SEQ ID NO26)；GGCRIGPITWVCGG (aka EMP-25)(SEQ ID NO27)；HFGPLTWV (aka EMP-26)(SEQ ID NO28)；GGTTSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-7)(SEQ ID NO29)；GGTFSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-8)(SEQ ID NO30)；GGTYSCHFGALTWVCKPQGG(aka EMP-10)(SEQ ID NO31)；GGTYSCHFGPATWVCKPQGG(aka EMP-11)(SEQ ID NO32)；GGTYSCHFGPLAWVCKPQGG(aka EMP-12)(SEQ ID NO33)；GGTYSCHFGPLTAVCKPQGG(aka EMP-13)(SEQ ID NO34)；GGTYSCHFGPLTFVCKPQGG(aka EMP-14)(SEQ ID NO35)；GGTYSCHFGPLTWVCKAQGG(aka EMP-15)(SEQ ID NO36)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-28，X＝D-Tyr)(SEQ ID NO37)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-29，X＝p-NO2-Phe)(SEQ ID NO38)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-30，X＝p-NH2-Phe)(SEQ ID NO39)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-31，X＝p-F-Phe)(SEQ ID NO40)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-32，X＝p-I-Phe)(SEQ ID NO41)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-33，X＝3，5-二溴-Tyr)(SEQ ID NO42)；Ac-GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-34)(SEQ ID NO43)；GGLYACHMGPMTWVCQPLGG(aka EMP-35)(SEQ ID NO44)；LGRKYSCHFGPLTWVCQPAKKD (aka EMP-37)(SEQ ID NO45)；和GGTYSEHFGPLTWVKKPQGG(aka EMP-39)(SEQ ID NO46).
优选所述二聚体的单体肽单位包括GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-1)(SEQ ID NO8)；GGTASCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-6)(SEQ ID NO19)；GGTYSCHFAPLTWVCKPQGG(aka EMP-9)(SEQ ID NO20)；和YCHFGPLTWVC (aka EMP-23)(SEQ ID NO17).
依照本发明，所述二聚体的单体单位可以相同或不同。
在一个优选的实施方案中，聚乙二醇(PEG)可以被用作接头通过共价键形成本发明所述的二聚体肽。
在另一个实施方案中，本发明涉及包含至少一种本发明所述肽和一种药用载体、用于治疗或预防神经毒性的方法中的药用组合物。
在再一个实施方案中，本发明提供了一个通过给予至少一种本发明所述肽来治疗性治疗患有由神经毒性事件、神经变性事件或神经损伤事件所引起的疾病或病症的哺乳动物的方法。
在又一个实施方案中，提供了一个通过使用至少一种本发明所述肽来治疗性治疗具有可以由EPO调节的神经毒性病症、神经损伤性病症或神经变性性病症的哺乳动物的方法。
附图简述

图1画面A和画面B显示EPO受体在大鼠海马培养物和皮质培养物中表达。
图2显示EPO受体在神经元细胞系PC12和SK-N-MC细胞中表达。
图3显示EPO在PC12细胞中诱导基因表达。(顶部)从用1nm EPO处理24小时的PC-12细胞中分离的总RNA进行RT-PCR，来定量特定BCL家族成员基因表达的变化。用EPO预处理导致抗细胞凋亡基因BCLXL的表达增长6倍，并导致促细胞细胞凋亡基因Bak的表达降低超过5倍。这些结果与暗示EPO保护性作用的可能机制的基因芯片结果一致。(底部)显示了描述BclXL和Bak的调节的RT-PCR产物的琼脂糖凝胶。m-标记物、1-RT-PCR阴性对照、2道-未处理、3道-50ng/ml NGF、4道-1nm EPO。
图4显示rhEPO保护大鼠脑皮质神经元免受谷氨酸毒性。
图5显示rhEPO保护大鼠PC12细胞免受谷氨酸诱发的细胞死亡。PC-12细胞的7天培养物在暴露于毒性浓度的谷氨酸(200μm)之前用红细胞生成素处理24小时。让培养物恢复24小时，然后利用台盼蓝排除测定法确定细胞存活。1至10pm红细胞生成素处理24小时，然后暴露于谷氨酸15分钟，明显增加细胞存活(p＜0.001，Student氏t-检验)。在更高剂量下所述EPO的保护活性降低。
图6显示rhEPO保护大鼠PC12细胞免受NGF停药诱发的细胞死亡。PC12细胞培养物在NGF存在下生长7天，然后在转移到不存在NGF的培养基中之前用EPO处理24小时。细胞存活通过在去除NGF后立即计数活细胞数并将其与生长因子停药后12hr、24hr、48hr和72hr的活细胞数进行比较来确定。细胞存活能力以形态学特征为基础，包括相差亮度、存在轴突和没有膜泡形成来确定。EPO处理增加了在生长因子停药后的每个时间点的活细胞数，最适浓度为10pm。
图7显示rhEPO在大鼠脑培养物中促进神经突突起(outgrowth)。
图8显示rhEPO在大鼠海马培养物中促进神经突突起。
图9显示EMP-1在大鼠脑皮质培养物中促进神经突突起。
图10显示EMP-1在大鼠海马培养物中促进神经突突起。
图11显示EMP-6在大鼠脑皮质培养物中促进神经突突起。
图12显示EMP-6在大鼠海马培养物中促进神经突突起。
图13显示EMP-9在大鼠脑皮质培养物中促进神经突突起。
图14显示EMP-9在大鼠海马培养物中促进神经突突起。
图15显示EMP-23在大鼠脑皮质培养物中促进神经突突起。
图16显示EMP-23在大鼠海马培养物中促进神经突突起。
图17显示EMP-27在大鼠脑皮质培养物中促进神经突突起。
图18显示EMP-27在大鼠海马培养物中促进神经突突起。
图19显示EPO防止局部缺血性损伤研究I通过微型渗透泵连续静脉输注。
图20显示研究I的血浆测定。
图21显示EPO不防止局部缺血性损伤研究II大剂量单一静脉滴注。
图22显示研究II的血浆测定。
图23显示EPO防止局部缺血性损伤研究III重复大剂量静脉滴注。
图24显示研究III的血浆测定。
发明详述用在这里的“红细胞生成素”(EPO)包括具有人红细胞生成素所有生物活性(例如，造血活性和神经活性)或只具有红细胞生成素某些特定生物活性(例如，只有造血活性或只有神经活性)的那些肽、肽二聚体、多肽和蛋白，以及红细胞生成素类似物、红细胞生成素同种型、红细胞生成素模拟物、红细胞生成素片段、杂合红细胞生成素蛋白、融合蛋白、上面所述的寡聚体和多聚体、上面所述的同源物、上面所述的糖基化形式变体和上面所述的突变蛋白，而不论生物活性是否相同，也不论用何种合成或制造的方法，所述方法包括但不限于是从cDNA还是从基因组DNA重组产生、合成、转基因和基因活化方法。红细胞生成素的具体例子包括Epoetinα(EPREX、ERYPO、PROSCRIT)；NEORECORMON；新型红细胞生成刺激蛋白(NESP或ARANESP，描述于欧洲专利申请EP640619中的重组人红细胞生成素(Epoetin)的高糖基化类似物)；人红细胞生成素-例如那些描述于国际专利申请WO99/66054中的人血清白蛋白融合蛋白；例如那些描述于国际专利申请WO99/38890中的人红细胞生成素突变体；ω红细胞生成素，它可以由美国专利号5,688,679中所描述的人红细胞生成素基因的Apa I限制性片段产生；例如那些描述于国际专利申请WO99/11781中的改变的糖基化人红细胞生成素；例如那些描述于WO98/05363或美国专利号5,643,575中的PEG缀合红细胞生成素类似物。经修饰用于表达内源人红细胞生成素的细胞系的具体例子描述于国际专利申请WO99/05268和WO94/12650中。EPO的通常优选形式是纯化后的重组人EPO(rhEPO)，目前以EPREX、ERYPO或PROSCRIT商标配制和分发。
用于此处的缩写“EMP”是指EPO的肽模拟物，特别是描述于美国专利号5,767,078和5,773,569中的某些肽。
下列是用于详述各种肽的氨基酸缩写列表。单个氨基酸残基是根据本领域技术人员所熟知和使用的单字母代码和三字母代码来标识的。氨基酸缩写3字母 1字母丙氨酸 ala A缬氨酸 val V亮氨酸 leu L异亮氨酸 ile I脯氨酸 pro P苯丙氨酸 phe F色氨酸 trp W甲硫氨酸 met M甘氨酸 gly G丝氨酸 ser S苏氨酸 thr T半胱氨酸 cys C酪氨酸 tyr Y天冬酰胺 asn N谷氨酰胺 gln Q天冬氨酸 asp D谷氨酸 glu E赖氨酸 lys K精氨酸 arg R组氨酸 his H在第一个实施方案中，本发明涉及利用包含作为细胞表面受体激动剂的治疗活性肽以及显现出生长因子类受体的结合和信号启动作用的这类肽的二聚体和多聚体的药用组合物处理神经元细胞的方法。在一个实施方案中，本发明提供了作为EPO激动剂的肽。详细地讲，这些肽可以是具有两个长8至40个或者更多氨基酸，优选长14至约20个残基的‘单体’肽单位的二聚体或多聚体，所述单体肽单位包含一个X3X4X5GPX6TWX7X8(SEQ ID NO1)核心氨基酸序列，其中每一个氨基酸通过标准单字母缩写来表示；X3可以是C、E、A、α-氨基-γ-溴丁酸或Hoc，其中Hoc是高半胱氨酸；X4可以是R、H、Y、L或W，或者X4不存在；X5可以是M、F或I；X6独立地是20种遗传编码的L-氨基酸或立体异构D-氨基酸中的任何一种；X7可以是D、E、I、L或V；和X8可以是C、K、A、α-氨基-γ-溴丁酸或Hoc，其中Hoc是高半胱氨酸，条件是X3或X8是C或Hoc。优选所述二聚体或多聚体的单体肽单位包含一个YX2X3X4X5GPX6TWX7X8(SEQ ID NO2)核心序列，其中每一个氨基酸通过标准单字母缩写来表示；X1、X2、X6、X9、X10和X11中的每一个独立选自20种遗传编码的L-氨基酸；X3可以是C、E、A、α-氨基-γ-溴丁酸或Hoc，其中Hoc是高半胱氨酸；X4可以是R、H、Y、L或W，或者X4不存在；X5可以是M、F或I；X7可以是D、E、I、L或V；和X8可以是C、K、A、α-氨基-γ-溴丁酸或Hoc，其中Hoc是高半胱氨酸。更优选X3或X8是C或Hoc。
优选所述二聚体或多聚体的单体肽单位包含一个YX2X3X4X5GPX6TWX7X8(SEQ ID NO2)氨基酸核心序列，其中X2和X6中的每一个独立地是20种遗传编码的L-氨基酸中的任何一种；X3是C；和X8是C。
优选所述二聚体的单体肽单位包含一个X1YX2X3X4X5GPX6TWX7X8X9X10X11(SEQ ID NO3)氨基酸核心序列，其中X1、X2、X6、X9、X10和X11中的每一个独立选自20种遗传编码的L-氨基酸。详细地讲，X3可以是C、E、A；X4可以是R、H或Y，或者X4不存在；X5可以是M、F或I；X7可以是D或V；和X8可以是C、K或A。
在一个更优选的实施方案中，X3和X8都是C，因此所述二聚体的单体肽单位包含一个X1YX2CX4X5GPX6TWX7CX9X10X11(SEQ ID NO4)氨基酸核心序列。详细地讲，所述单体肽单位包含一个X1YX2CX4X5GPX6TWX7CX9X10X11(SEQ ID NO5)氨基酸核心序列，其中X4可以是R或H；X5可以是F或M；X6可以是I、L、T、M或V；X7是D或V；X9可以是G、K、L、Q、R、S或T；和X10可以是A、G、P、R或Y。更详细地讲，所述二聚体的单体肽单位会包含一个X1YX2CX4X5GPX6TWX7CX9X10X11(SEQ ID NO6)氨基酸核心序列，其中X1可以是D、E、L、N、S、T或V；X2可以是A、H、K、L、M、S或T；X4是R或H；X9可以是K、R、S或T；和X10是P。
优选所述二聚体的单体肽单位会包含一个X1YX2CX4X5GPX6TWX7CX9X10X11(SEQ ID NO6)氨基酸核心序列，其中X1可以是D、E、L、N、S、T或V；X2可以是A、H、K、L、M、S或T；X4是R或H；X9可以是K、R、S或T；和X10是P。
所述二聚体的特别优选的单体肽单位包括GGLYLCRFGPVTWDCGYKGG(SEQ ID NO7)；GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-1)(SEQ ID NO8)；GGDYHCRMGPLTWVCKPLGG(SEQ ID NO9)；VGNYMCHFGPITWVCRPGGG(SEQ ID NO10)；GGVYACRMGPITWVCSPLGG(SEQ ID NO11)；VGNYMAHMGPITWVCRPGG (SEQ ID NO12)；GGTYSCHFGPLTWVCKPQ (aka EMP-16)(SEQ ID NO13)；GGLYACHMGPMTWVCQPLRG (aka EMP-36)(SEQ ID NO14)；TIAQYICYMGPETWECRPSPKA (aka EMP-38)(SEQ ID NO15)；YSCHFGPLTWVCK(aka EMP-20 (SEQ ID NO16)；YCHFGPLTWVC (aka EMP-23)(SEQ ID NO17)；SCHFGPLTWVCK (aka EMP-24)(SEQ ID NO18)；GGTASCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-6)(SEQ ID NO19)；GGTYSCHFAPLTWVCKPQGG (aka EMP-9)(SEQ ID NO20)；GGTYSCFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-27)(SEQ ID NO21)；TYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-17)(SEQ ID NO22)；TYSCHFGPLTWVCKPQ (aka EMP-18)(SEQ ID NO23)；YSCHFGPLTWVCKP (aka EMP-19)(SEQ ID NO24)；YSCHFGPLTWVC (aka EMP-21)(SEQ ID NO25)；YSCHFGALTWVCK(aka EMP-22)(SEQ ID NO26)；GGCRIGPITWVCGG (aka EMP-25)(SEQ ID NO27)；HFGPLTWV (aka EMP-26)(SEQ ID NO28)；GGTTSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-7)(SEQ ID NO29)；GGTFSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-8)(SEQ ID NO30)；GGTYSCHFGALTWVCKPQGG (aka EMP-10)(SEQ ID NO31)；GGTYSCHFGPATWVCKPQGG (aka EMP-11)(SEQ ID NO32)；GGTYSCHFGPLAWVCKPQGG (aka EMP-12)(SEQ ID NO33)；GGTYSCHFGPLTAVCKPQGG (aka EMP-13)(SEQ ID NO34)；GGTYSCHFGPLTFVCKPQGG (aka EMP-14)(SEQ ID NO35)；GGTYSCHFCPLTWVCKAQGG (aka EMP-15)(SEQ ID NO36)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-28，X＝D-Tyr)(SEQ ID NO37)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-29，X＝p-NO2-Phe)(SEQ ID NO38)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-30，X＝p-NH2-Phe)(SEQ ID NO39)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-31，X＝p-F-Phe)(SEQ ID NO40)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-32，X＝p-I-Phe)(SEQ ID NO41)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-33，X＝3，5-二溴-Tyr)(SEQ ID NO42)；Ac-GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-34)(SEQ ID NO43)；GGLYACHMGPMTWVCQPLGG(aka EMP-35)(SEQ ID NO44)；LGRKYSCHFGPLTWVCQPAKKD (aka EMP-37)(SEQ ID NO45)；和GGTYSEHFGPLTWVKKPQGG(aka EMP-39)(SFQ ID NO46).
最优选所述二聚体的单体肽单位包括GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-1)(SEQ ID NO8)；GGTASCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-6)(SEQ ID NO19)；GGTYSCHFAPLTWVCKPQGG(aka EMP-9)(SEQ ID NO20)；和YCHFGPLTWVC (aka EMP-23)(SEQ ID NO17).
正如对于本领域技术人员显而易见的，EPO可通过适合于被治疗的特定患者的任何合适方法给药。用于此的短语“治疗有效的”在患者与患者之间是不同的，并取决于拟给予的EPO分子所具有的生物活性的特定范围。通常，对于具有造血活性的EPO而言，治疗有效量将从约1至500I.U./kg体重，更优选地从50至300I.U./kg体重，尤其是当通过皮下给予红细胞生成素时。对于不具有造血活性的EPO分子而言，治疗有效量可以多于或少于具有造血活性的EPO分子的剂量。优选的给药方法是静脉给药(iv)和皮下给药(sc)，通常优选皮下给药。造血活性EPO是在每剂约50-1000U/kg的范围内每周1至5次给药。在另外一个实施方案中，所述EPO组合物直接给予神经系统。这个给药途径包括但不限于大脑内给药途径、室内给药途径、脑室内给药途径、鞘内给药途径、池内给药途径、脊髓内给药途径和/或脊髓周给药途径，它们可以使用颅内针和脊椎内针，和带有或不带有泵装置的导管。输注剂量的范围可以为例如在几分钟至几天的时间范围内从约1.0至50,000U/kg/min的EPO组合物。如果男性或者女性患者显现出血色素水平超过约15g/dL，则造血活性EPO给药要延迟或停药。
本发明在其中一个实施方案中提供了一个治疗急性和慢性神经变性性疾病的方法，所述方法包括给予EPO或其模拟物。急性神经变性性疾病包括但不限于与神经细胞死亡或包括脑血管不足、病灶性或弥散性脑外伤、弥散性脑损伤和脊髓损伤在内的损害有关的各种类型的急性神经变性性疾病。急性神经变性性疾病的例子是脑缺血或包括栓塞性和血栓性闭塞、急性缺血后再灌注、围产期低氧-缺氧损伤后、心搏停止、以及各种类型的颅内出血(例如硬膜外出血、硬膜下出血、蛛网膜下出血和大脑内出血)、和颅内损害及脊柱内损害(例如挫伤、穿透、剪伤、压迫和撕裂)、和急性颈部扭伤颤动婴儿头部振摇综合征。可以用本发明的一种或多种方法治疗的慢性神经变性性疾病包括但不限于早老性痴呆、Pick病、弥漫性雷维小体病、进行性核上麻痹(Steel-Richardson综合征)、多系统性变性(夏-德综合征)、与神经变性有关的慢性癫痫性病症、运动神经元疾病包括肌萎缩侧索硬化、变性性共济失调、皮质基底变性、关岛ALS-帕金森病-痴呆综合征、亚急性硬化性全脑炎、亨廷顿舞蹈病、帕金森病、synucleinopathies(包括多系统萎缩症)、原发性进行性失语症、纹状体黑质变性、Machado-Joseph氏病/3型脊髓小脑性共济失调和橄榄体桥脑小脑变性、Gilles De LaTourette氏病、延髓性麻痹和假延髓病型麻痹、脊髓性肌萎缩和脊髓延髓性肌萎缩症(Kennedy氏病)、原发性侧索硬化症、家族性痉挛性截瘫、Werdnig-Hoffmann病、Kugelberg-Welander病、Tay-Sach氏病、Sandhoff病、家族性痉挛性疾病、Wohlfart-Kugelberg-Welander病、痉挛性轻截瘫、进行性多病灶性脑白质病、家族性自主神经机能异常(Riley-Day综合征)和朊病毒病(包括但不限于Creutzfeldt-Jakob病、Gerstmann-Strussler-Scheinker病、库鲁病和致命性家族性失眠症)。
由于由rhEPO引起的神经保护和神经突突起的结合，可以用本发明的一种或多种方法治疗其他临床病症，包括治疗和/或预防与外周疾病有关的神经学表现(包括但不限于认知的)和精神病学表现(包括但不限于精神病理学、抑郁症或焦虑)，包括但不限于EPO缺乏(即肾病)、任何类型的失血(包括但不限于血液渗析、腹膜透析、诊断性采样、隐性胃肠道出血)、肾衰竭和晚期肾病、肾移植和其他与贫血、神经学表现和神经精神病学表现有关的病症，包括但不限于血液性恶性肿瘤/癌和非血液性恶性肿瘤/癌、接受化疗(包括但不限于顺铂)和其他药物(包括但不限于齐多夫定)治疗患者的症状或并发症、其他血液性疾病(包括但不限于镰状红细胞贫血症和地中海贫血)、炎症性疾病和传染性疾病(包括但不限于人免疫缺陷病毒性感染)、慢性系统性自身免疫病(包括但不限于系统性红斑狼疮)、Henoch Schonlein紫癜和溶血性尿毒症综合征。同样包括在本发明中的是治疗和/或预防由于神经系统的化学性损伤、毒性损伤、感染性损伤和放射性损伤以及由于早熟引起的神经学表现和神经精神病学表现，以及治疗和/或预防包括但不限于由于那些缺氧性局部缺血、肝病、糖血症、尿毒症、电解质和内分泌引起的脑病的神经学后遗症和神经精神病学后遗症。
同样，由于由rhEPO引起的神经保护和神经突突起的结合，这种分子同样也可以应用于治疗和/或预防丛病(包括神经丛麻痹)、多病灶性神经病、感觉神经病、运动神经病、感觉-运动神经病、传染性神经病、自主神经病、感觉-自主神经病、脱髓鞘性神经病(包括但不限于Guillain-Barre综合征和慢性炎症性脱髓鞘多神经根性神经瘤)、其他炎症性神经病和免疫性神经病、由药物引起的神经病、药物治疗引起的神经病、毒素引起的神经病、创伤性神经病(包括但不限于受压性神经病、压碎性(crush)神经病、撕裂性(laceration)神经病和节段性神经病)、代谢性神经病、内分泌性神经病和副肿瘤性神经病和其他神经病，例如进行性神经性肌萎缩(la型、1b型、2型、4a型、1-X连锁型(linked))、Friedreich共济失调、异染性脑白质营养不良、Refsum病、肾上腺脊髓神经病(adrenomyeloneuropathy)、Déjerine-Sottas神经病(A型和B型)，Lambert-Eaton综合征和脑神经疾病。
下列实施例例证了本发明，然而并不限制本发明。实施例1rhEPO在原代大鼠神经元培养物和神经元细胞系中的表达原代神经元细胞培养如先前所描述(Mattson等，1994)，分离的海马细胞培养物和皮质细胞培养物从胎儿期18天的大鼠胎鼠开始建立。简要地讲，胎鼠依照the AVMA Panel on Euthanasia通过剖腹产术从氟烷麻醉的怀孕母体(Sprague-Dawley)中取出。将幼鼠断头，取脑，放入HEPES缓冲的Hank氏平衡盐溶液(HBSS；Gibco)中。解剖出海马和皮质，并根据组织类型合并。组织用胰蛋白酶消化15分钟(1mg/ml胰蛋白酶-HBSS；Worthington)，用新鲜HBSS漂洗，然后在胰蛋白酶抑制剂(1mg/ml；Sigma)中孵育5分钟，再用新鲜HBSS漂洗，然后用火琢玻璃移液管将组织捣碎于1ml新鲜HBSS中。分离的细胞以30,000细胞/孔接种到聚D-赖氨酸包被的96孔板(Collaborative BioScience)上。每孔含有由26mM NaHCO3(Sigma)、56mM葡萄糖(Sigma)、15mM KCl(Sigma)、1mM丙酮酸钠(Sigma)、1.1mM L-谷氨酰胺(Sigma)、10％(v/v)热灭活胎牛血清(Hyclone)和0.001％硫酸庆大霉素(Sigma)补充的100μl Eagle氏最低必需培养基(MEM；Gibco)(pH7.4)。在实验处理之前让细胞在潮湿的37℃ 5％CO2培养箱中贴壁24小时。每三天将所述培养基吸出并用新鲜培养基更换。免疫细胞化学平行的海马培养物和皮质培养物按照上面所述进行处理，并按照以前所述方法(Smith Swintosky等，1997)加工以进行免疫细胞化学(ICC)。简要地讲，将细胞接种到4室聚D-赖氨酸包被的玻璃载玻片(LabTek，Napersville，IL)上。在培养的第7天，取出培养基，用Dulbecco磷酸缓冲盐水(DPBS；Sigma)洗涤细胞一次，然后在室温下用10％磷酸缓冲福尔马林固定15分钟。固定后，培养物用DPBS漂洗，然后放入封闭血清(正常马血清；1∶50稀释到DPBS中；Vector Labs，Burlingame，CA)中10分钟。培养物再次漂洗，然后在1∶75稀释到抗体稀释剂(Zymed，South San Francisco，CA)中的特异性针对EPO受体(EBP-7)的抗小鼠单克隆抗体中孵育30分钟。培养物用DPBS漂洗几次，然后暴露于生物素酰化的第二抗体(Vector Labs)中30分钟。培养物最后漂洗一次，然后在亲和素-生物素酰化的辣根过氧化物酶复合物(小鼠IgG ABC试剂盒，Vector Labs)中孵育30分钟。第一抗体的存在是利用3’3-二氨基联苯胺四盐酸盐(DAB，Biomeda，Foster City，CA)-暴露两次，每次5分钟来检测的。然后细胞用苏木精复染、脱水、澄明(clear)、盖盖玻片和在Olympus BX-2光学显微镜下照像。结果在海马培养物和皮质培养物的神经元和神经胶质中都发现了EPO受体的稳健染色(图1a和图1b)。EPO受体的表达水平看来随培养时间而增高。讨论这些结果表明EPO在神经系统、详细地讲是在海马和大脑皮质的早期发育阶段起作用。神经元细胞系的免疫组织化学使用来源于大鼠肾上腺的嗜铬细胞瘤的神经元细胞系PC-12(Greene和Tischler，1976)和从人脑的神经上皮瘤获得的神经元细胞系SK-N-MC(Spengler等，1973)；PC-12细胞在神经生长因子(NGF)存在情况下可以被可逆地诱导出神经元表型。让PC-12细胞于聚D-赖氨酸包被的组织培养皿上在0.1μg/ml NGF存在下包含10％马血清和5％FBS的DMEM中生长7天，诱导神经元表型。SK-N-MC细胞在补充了1.0mM丙酮酸钠、1.5g/L碳酸氢钠、2mM谷氨酰胺和10％FBS的最低必需培养基中培养4天。PC-12和SK-N-MC细胞于来自Greiner的96孔板上培养，以有助于显微镜检查。在实验当天细胞固定于包含10％蔗糖的10％福尔马林中，并在封闭缓冲液(40mM Tris HCl、pH8.0、27mM NaCl和0.2％ Tween 20)中孵育。红细胞生成素受体是通过用兔多克隆抗-红细胞生成素受体抗体(来自Santa Cruz的C-20)和FITC缀合的第二抗体孵育细胞来检测的。利用荧光显微镜(ATTO)目测检查标记细胞。结果如在图2(右面部分)中所见抗红细胞生成素受体的多克隆抗体既标记了SK-N-MC细胞，也标记了PC-12细胞。所有在低倍放大下可见的SK-N-MC细胞看来都被所述抗体标记。大多数可检测到的PC-12细胞是被抗-红细胞生成素受体抗体标记的。在这个制备过程中保留有特征性神经元表型的少数完整PC12细胞显示出整个轴突以及胞体都被染色。单独的第二抗体不标记这两种类型的细胞(图2，左面部分)。
因此，这些结果例证了这些细胞-来自人神经上皮瘤的SK-N-MC细胞和来自大鼠嗜铬细胞瘤的PC-12细胞表达所述红细胞生成素受体。因此这些细胞系可以对红细胞生成素做出反应并可以为研究红细胞生成素对神经元的作用提供一个良好的系统。实施例2在PC12细胞中EPO诱导的基因表达细胞培养PC-12细胞(来自大鼠嗜铬细胞瘤)培养于聚D-赖氨酸包被的组织培养塑料制品上包含10％FBS和5％马血清的DMEM中。为了在PC-12细胞中诱导神经元表型，去除血清并且用NGF(50ng/ml)处理所述细胞。细胞在NGF存在下生长7天然后用于实验。EPO处理和RNA分离PC-12细胞如实施例1中所述在一个聚D-赖氨酸包被的10cm组织培养皿中培养。细胞在1U/ml EPO存在下孵育24小时。然后利用Qiagen RNAeasy小量制备试剂盒分离总RNA，再用于RT-PCR。定量RT-PCR利用来自Roche Molecular Biochemicals的轻便循环仪(light cycler)和RNA扩增试剂盒在一个反应中进行实时逆转录和PCR。定量RNA然后将等量的RNA加入到包括dsDNA特异性染料SYBR，green I的反应混合物中。通过检测在每个PCR循环的反应中的荧光量来定量特异性PCR反应产物。最后的分析利用包括所述轻便循环装置所带有的数据分析软件来进行。概述如图3中所见，用EPO(1U/ml)预处理PC-12细胞24小时造成bcl-2家族成员bclXL和bak基因表达的显著变化。用EPO处理细胞显示出抗-细胞凋亡基因bclXL的表达增长6倍和促-细胞凋亡基因bak的表达降低5倍。以前EPO已经显示出通过增加bclXL表达来增加红细胞祖细胞的存活(Silva等，1996)。这些结果显示，EPO利用相似的机制保护神经元使其不经历对损伤应答的细胞凋亡。bak的调节表明，EPO可以影响另外基因的表达以诱发该效应。实施例3rhEPO对大鼠海马细胞、皮质细胞和PC12细胞的神经保护作用和神经突突起作用原代神经元细胞培养如先前所描述(Mattson等，1994)，分离的海马细胞培养物和皮质细胞培养物从胎儿期18天的大鼠胎鼠开始建立。简要地讲，胎鼠依照the AVMA Panel on Euthanasia通过剖腹产术从氟烷麻醉的怀孕母体(Sprague-Dawley)中取出。将幼鼠断头，取脑，放入HEPES缓冲的Hank氏平衡盐溶液(HBSS；Gibco)中。解剖出海马和皮质，并根据组织类型合并。组织用胰蛋白酶消化15分钟(1mg/ml胰蛋白酶-HBSS；Worthington)，用新鲜HBSS漂洗，然后在胰蛋白酶抑制剂(1mg/ml；Sigma)中孵育5分钟，再用新鲜HBSS漂洗，然后用火琢玻璃移液管将组织捣碎于1ml新鲜HBSS中。分离的细胞以30,000细胞/孔接种到聚D-赖氨酸包被的96孔板(Collaborative BioScience)上。每孔含有由26mM NaHCO3(Sigma)、56mM葡萄糖(Sigma)、15mM KCl(Sigma)、1mM丙酮酸钠(Sigma)、1.1mM L-谷氨酰胺(Sigma)、10％(v/v)热灭活胎牛血清(Hyclone)和0.001％硫酸庆大霉素(Sigma)补充的100μl Eagle氏最低必需培养基(MEM；Gibco)(pH7.4)。在实验处理之前让细胞在潮湿的37℃5％CO2培养箱中贴壁24小时。每三天将所述培养基吸出并用新鲜培养基更换。谷氨酸毒性测定皮质细胞以200,000个细胞/培养皿接种到聚合氮丙啶包被的35mm培养皿上。每个培养皿包含1.5ml如上所述补充过的MEM。在培养的第7天，用Nikon Diaphot倒置显微镜(10倍放大)观察每个预先标记培养皿的四个视野并在实验处理前照相。紧接着，用溶媒或重组人红细胞生成素(rhEPO；批号41C514；0.2M柠檬酸盐中的50μM储液，0.585g.L NaCl以适当浓度稀释到磷酸缓冲盐溶液中(DPBS；Sigma)+0.1％牛血清白蛋白(BSA；Sigma))处理所述培养物。24小时后所述培养物用100μM谷氨酸(Sigma)处理。谷氨酸处理24小时后，每个平皿的四个视野再次照相。通过计数每个视野中实验处理前和实验处理后的活细胞来测量细胞存活率。如果神经元具有在直径上一致并且外表光滑的神经突以及形状圆滑并且为圆形至卵圆形的胞体，神经元就被认为是活的。数据以对照的百分比表达(溶媒，平均值±SD)。PC12细胞培养PC-12细胞(来自大鼠嗜铬细胞瘤)培养于聚D-赖氨酸包被的组织培养塑料制品上包含10％FBS和5％马血清的DMEM中。为了在PC-12细胞中诱导神经元表型，去除血清并且用NGF(50ng/ml)处理所述细胞。细胞在NGF存在下生长7天然后用于实验。谷氨酸毒性按上面所述培养PC-12细胞。损害前24小时，细胞用浓度范围在1pm至1nm的rhEPO处理。在实验当天，细胞暴露于200μM谷氨酸30分钟。然后细胞用新鲜培养基清洗两次以清除谷氨酸，再培养于包含NGF但不含EPO的新鲜培养基中。24小时后，利用台盼蓝排除测定法测定细胞的存活力。简要地讲，去除培养基然后在0.4％台盼蓝中孵育所述细胞5分钟。然后用PBS轻轻地清洗细胞，再用10％福尔马林固定。细胞存活力通过计数总细胞数与台盼蓝阳性细胞(死细胞)数之比来确定。NGF停药如上所述，PC-12细胞培养于96孔聚D-赖氨酸包被的多孔板上，并在NGF停药前用rhEPO(1pm至10nm)处理24小时。在实验当天，所述细胞用缓冲液清洗3次以清除NGF，然后培养于不含NGF的新鲜培养基中。立即计数NGF洗出细胞(t＝0)以确定活细胞数量。细胞存活力基于形态学特征，包括相差亮度、存在轴突和没有泡形成。在12小时、24小时、48小时和72小时计数细胞并纪录活细胞数量。神经突突起测定平板接种后24小时，培养物用溶媒(PBS+0.1％BSA)、100ng不同的生长因子(脑源性神经营养因子(BDNF；Promega)、神经胶质细胞源性神经营养因子(GDNF；Promega)、神经生长因子(NGF；BoehringerMannheim)、碱性成纤维细胞生长因子(bFGF；Boehringer Mannheim)、胰岛素样生长因子-1(IGF-1；Boehringer Mannheim)、神经营养蛋白-3(NT3；Calbiochem)、神经营养蛋白-4(NT4；Calbiochem)、睫状神经营养因子(CNTF；Calbiochem)、表皮生长因子(EGF；Calbiochem)、血管内皮生长因子(VEGF；Calbiochem))或rhEPO(与上面一样制备的；10fM-10nM))处理。每种处理条件进行4次或8次重复。在培养的第三天时，吸出所述培养基，用新鲜培养基代替并检测化合物。在培养一周时，所述细胞用10％磷酸缓冲的福尔马林固定15分钟，然后用DPBS(Sigma)漂洗，再放入封闭血清(马血清；1∶50稀释在DPBS中；VectorLabs)中30分钟。再用DPBS漂洗培养物，然后在第一抗体中孵育2小时(微管相关蛋白-2(MAP-2)作为树突的选择性标记；抗小鼠单克隆(Chemicon)；MAP-2以1∶1000稀释在抗体稀释剂(Zymed))中。阴性对照孔只在抗体稀释剂中孵育。本底信号通过用抗体孵育或不用抗体孵育的空白对照孔(无细胞)来确定。培养物再用DPBS漂洗，然后放入荧光素中1小时(FITC；抗小鼠IgG；大鼠吸附的；1∶50稀释在DPBS中；Vector Labs)。培养物用DPBS漂洗最后一次，然后将所述平板在Cytofluor 4000荧光平板读出仪读数。神经突突起以与对照相比变化的百分数来表示(溶媒；平均荧光±SD)。结果用原代神经元培养物进行的神经保护研究在给予谷氨酸前用rhEPO预处理培养物24小时，导致了神经元存活率显著增加(图4)。细胞存活率比平行的只用谷氨酸处理的培养物最大增加大约200％。rhEPO的所述神经保护作用是浓度依赖性的，在细胞存活率高于或等于溶媒(无谷氨酸)处理培养物的pM浓度处发现了最大作用。
用PC12细胞进行的神经保护研究在PC-12细胞中用EPO预处理导致了由谷氨酸毒性和生长因子停药诱发的细胞死亡显著降低(图5和图6)。在两个实验中所述神经保护作用的峰值浓度是10pm。EPO的所述神经保护作用的剂量反应曲线是双相的，EPO保护细胞抵抗细胞毒性的能力在大于10pm浓度下降低，而在1nm浓度下没有明显的作用。这些结果表明，EPO可以预防暴露于各种细胞毒性损害的神经元的细胞凋亡反应。
用原代神经元培养物进行的神经突突起研究培养物用rhEPO处理，导致用MAP2-FITC免疫荧光法测量的神经突突起显著增加。所述神经突突起促进作用是浓度依赖性的，在pM水平发现最大活性(图7和图8)。所述结果显示，rhEPO处理在海马培养物中(高于对照12-44％)比在皮质培养物中(高于对照15-29％)诱导出更大的突起反应。rhEPO和已知生长因子之间的比较显示出它们在神经突突起促进能力上展现了区域性差异。rhEPO在皮质培养物中增加神经突突起的能力要大于或等于那些已知生长因子的能力。由于只有少数因子对皮质细胞具有这样的作用，因此这个发现是引人注目和重要的。另一方面，许多生长因子在海马中发挥强大的突起反应(高于对照38-86％)。与这些生长因子相比，rhEPO显示出中等但稳固的突起促进活性，然而，它的活性要高于几种生长因子包括BDNF、NGF和VEGF。讨论所述神经保护研究证实了先前的证据，即在体外rhEPO在pM浓度下有抵抗谷氨酸毒性和血清停药的保护作用。
令人惊奇的是，我们发现了rhEPO在原代哺乳动物神经元细胞中促进神经突突起。所述作用对于海马细胞和皮质细胞是稳固的。所述作用是有效的，在亚-皮摩尔浓度下检查到功效，远比任何先前与EPO有关的观测结果有效。此外，在只对少数生长因子反应的大脑皮质神经元中，rhEPO在诱导神经突突起上优于大多数已知生长因子。
从治疗前景来看，rhEPO在大脑皮质神经元中促进神经保护和神经突突起是非常重要的。在神经变性过程中，神经细胞可以处于不同的发展阶段。一些可能处于应激状态，另外一些经历显著的神经突回缩和丧失突触输入，最后所有受影响的细胞将死亡。可以在多水平上干预这个进程的治疗剂可以对神经细胞的复原以及最终神经功能的恢复具有很大的益处。本数据支持rhEPO通过保护所述细胞、通过增加它们的存活率、通过促进突触接触和突触联系的重建和通过稳定神经元回路和神经回路来完成这个任务。
同样应该特别指出，考虑到极少数生长因子在大脑皮质神经元中是有效的，以及极少数生长因子在皮质神经元中显示出作为神经突突起的神经保护剂和促进剂的双重活性，所述数据尤其重要。尤其相关的是，rhEPO的这种双重活性在亚-皮摩尔/皮摩尔浓度下被检查到。实施例4EPO模拟肽刺激神经突突起细胞培养如先前所描述(Mattson等，1994)，分离的海马细胞培养物和皮质细胞培养物从胎儿期18天的大鼠胎鼠开始建立。简要地讲，胎鼠依照the AVMA Panel on Euthanasia通过剖腹产术从氟烷麻醉的怀孕母体(Sprague-Dawley)中取出。将幼鼠断头，取脑，放入HEPES缓冲的Hank氏平衡盐溶液(HBSS；Gibco)中。解剖出海马和皮质，并根据组织类型合并。组织用胰蛋白酶消化15分钟(1mg/ml胰蛋白酶-HBSS；Worthington)，用新鲜HBSS漂洗，然后在胰蛋白酶抑制剂(1mg/ml；Sigma)中孵育5分钟，再用新鲜HBSS漂洗，然后用火琢玻璃移液管将组织捣碎于1ml新鲜HBSS中。分离的细胞以30,000细胞/孔接种到聚D-赖氨酸包被的96孔板(Collaborative BioScience)上。每孔含有由26mM NaHCO3(Sigma)、56mM葡萄糖(Sigma)、15mM KCl(Sigma)、1mM丙酮酸钠(Sigma)、1.1mM L-谷氨酰胺(Sigma)、10％(v/v)热灭活胎牛血清(Hyclone)和0.001％硫酸庆大霉素(Sigma)补充的100μl Eagle氏最低必需培养基(MEM；Gibco)(pH7.4)。在实验处理之前让细胞在潮湿的37℃ 5％ CO2培养箱中贴壁24小时。每三天将所述培养基吸出并用新鲜培养基更换。神经突突起测定平板接种后24小时，培养物用溶媒(PBS+0.1％BSA)、100ng不同的生长因子(脑源性神经营养因子(BDNF；Promega)、神经胶质细胞源性神经营养因子(GDNF；Promega)、神经生长因子(NGF；BoehringerMannheim)、碱性成纤维细胞生长因子(bFGF；Boehringer Mannheim)、胰岛素样生长因子-1(IGF-1；Boehringer Mannheim)、神经营养蛋白-3(NT3；Calbiochem)、神经营养蛋白-4(NT4；Calbiochem)、睫状神经营养因子(CNTF；Calbiochem)、表皮生长因子(EGF；Calbiochem)、血管内皮生长因子(VEGF；Calbiochem))或EPO模拟肽(EMP1、EMP6、EMP9、EMP23和EMP27；稀释在DPBS+0.1％ BSA中；10fM-10nM；表1)处理。每种处理条件进行4次重复。在培养的第三天时，吸出所述培养基，用新鲜培养基和实验化合物更换。在培养一周时，所述细胞用10％磷酸缓冲的福尔马林固定15分钟，然后用DPBS(Sigma)漂洗，再放入封闭血清(马血清；1∶50稀释在DPBS中；Vector Labs)中30分钟。再用DPBS漂洗培养物，然后在第一抗体中孵育2小时(微管相关蛋白-2(MAP-2)作为树突的选择性标记；抗小鼠单克隆(Chemicon)；MAP-2以1∶1000稀释在抗体稀释剂(Zymed)中)。阴性对照孔只在抗体稀释剂中孵育。本底信号通过用抗体孵育或不用抗体孵育的空白对照孔(无细胞)来确定。培养物再用DPBS漂洗，然后放入荧光素中1小时(FITC；抗小鼠IgG；大鼠吸附的；1∶50稀释在DPBS中；Vector Labs)。培养物用DPBS漂洗最后一次，然后将所述平板在Cytofluor 4000荧光平板读出仪上读数。神经突突起以与对照相比变化的百分数来表示(溶媒；平均荧光±SEM)。
结果神经突突起研究用EMP处理培养物导致MAP2-FITC免疫荧光法测量的神经突突起明显增加。所述神经突突起促进作用是浓度依赖性的，在pM水平发现最大活性(图9-图18)。所述结果显示EMP展现出不同的活性分布曲线。在所检测的浓度下，EMP-1和EMP-6在海马培养物中展现出典型钟形剂量反应分布曲线，在30-300pM之间检查到峰值活性(比溶媒增长83-117％)。EMP-9和EMP-27在海马培养物中展现出平坦反应分布曲线，在与EMP-1和EMP-6相似的浓度处检查到峰值活性，但反应范围大大减小(比溶媒增长29-32％)。EMP-23在海马培养物中对EPO有一个中等反应，在30pM-1nM之间检查到峰值活性，从而导致比溶媒反应增长43-46％。在所述皮质培养物中，EMP-1、EMP-9和EMP-27展现出与大多数已知生长因子相似的反应分布曲线-总体来说最大活性发生在30-300pM之间从而高于溶媒反应32-40％的平坦反应分布曲线。EMP-6和EMP-23展现出典型钟形剂量反应分布曲线，在30-300pM之间检测到峰值活性，从而导致在突起上比溶媒反应水平增长68-87％。总体来说，EMP-6在海马培养物和皮质培养物中都促进稳固的神经突突起活性，然而，与在皮质培养物中相比，EMP-1在海马培养物中显示出选择性作用，以及EMP-23在皮质培养物中的作用高于在海马细胞中的作用。总的来说EMP-9和EMP-27神经突突起反应给人的印象不太深刻。
所述EMP和已知生长因子间的比较显示出，它们在神经突突起促进能力上展现出区域性差异。所述EMP在皮质培养物中增加神经突突起的能力要高于或等于已知生长因子的能力(图9-图18)。由于只有少数因子对皮质细胞具有这样的作用，因此这个发现是引人注目和重要的。另一方面，许多生长因子在海马中发挥强大的突起反应(高于对照38-86％)。与这些生长因子相比，所述EMP显示出中等但稳固的突起促进活性，然而，它们表现出高于BDNF、NGF和VEGF的活性。讨论EMP在哺乳动物细胞中促进神经突突起。所述作用对于海马细胞和皮质细胞是稳固的。所述神经突突起促进作用要优于各种生长因子的作用。所述作用是有效的，在皮摩尔浓度下检查到功效。
同样应该特别指出，考虑到极少数生长因子或模拟物在大脑皮质神经元中在促进神经突突起上是有效的，所述数据尤其重要。尤其相关的是，所述EMP的这种活性在亚-皮摩尔/皮摩尔浓度下被检查到。实施例5EPO防止缺血性损伤研究对象给重量在250-300g之间的雄性自发性高血压大鼠(Charles River)称重，然后用氯胺酮(100mg/ml)/赛拉嗪(20mg/ml)混合剂(1.2ml/kg；i.p.)麻醉。麻醉剂的水平通过角膜反射(空气吹入眼中)和对尾部或足部挤掐的小腿反射来评估。一旦大鼠被麻醉，把它放在一个小的动物外科手术板上，并在手术过程中固定。用直肠探头连续监测所述大鼠的体温并利用体内平衡加热垫(homeostatic heating pad)将体温保持在37℃。脑缺血的实验模型通过串联闭合左颈总动脉(common carotid artery)和左脑中动脉(middle cerebral artery)2小时造成大鼠局部缺血，接着利用Brint和他的合作者所描述技术(J.Cereb Blood Flow Metab8474-485，1988)的改进方法进行22小时的再灌输。具体地说，所述左CCA通过在颈部腹侧表面的切开术分离。对于同侧MCA的分离，在左眼的外眦和对应的外耳道之间作第二个切口以裸露出下面的头颅。所述MCA通过在Zeiss手术显微镜直接观察下在颧弓和鳞骨融合部位嘴侧2-3mm钻的5mm孔来暴露。用无菌的26g针打开硬膜，将铂合金金属丝(直径0.1mm)插入到所述MCA下面刚刚高于下面的皮质静脉。如Aronowski和他的同事所述(Stroke，25第2235-2240页，1994)，所述MCA通过抬高和压迫穿过所述合金金属丝(across the alloy wire)的血管来暂时闭合。同时，所述CCA用动脉瘤夹闭合。所述CCA和所述MCA的闭合持续时间是2小时。在这个时期结束时，将所述金属丝和所述瘤夹小心移去，使得所述血管再灌输，并缝合所述切口区域。所述大鼠在返回到其原来的笼内之前将它放入一个分离笼内进行恢复。研究设计研究I通过微型渗透泵递送EPO和溶媒启动局部缺血前20小时，充有溶媒或EPO的微型渗透泵(型号1003D；Alza)放入所述大鼠的肩胛骨之间。将连接所述泵的导管插入并拴在右颈静脉中以1μl/小时的速率连续输注药物。大鼠分为5组(1)假手术溶媒处理，(2)局部缺血溶媒处理，(3)局部缺血1.32U/天EPO处理，(4)局部缺血132U/天EPO处理和(5)局部缺血1321U/天EPO处理。在第二天，如上所述致使大鼠局部缺血。22小时后，评估所述大鼠的行为表现，收集血液样品用于EPO的末端血浆水平，然后让所述大鼠安乐死，取脑，切片并染色以用于组织学分析。
研究II以单一静脉大剂量注射递送EPO和溶媒在第一天，如上所述致使大鼠局部缺血。大鼠分为4组(1)局部缺血溶媒处理，(2)局部缺血1000U/kg EPO处理，(3)局部缺血2500U/kg EPO处理和(4)5000U/kg EPO处理。闭合后15分钟，所述大鼠以静脉内大剂量注射接受溶媒或EPO。22小时后，评估所述大鼠的行为表现，收集血液样品用于EPO的末端血浆水平分析，然后让所述大鼠安乐死，取脑，切片并染色以用于组织学分析。
研究III以重复静脉大剂量注射递送EPO和溶媒在第一天，如上所述致使大鼠局部缺血。大鼠分为2组(1)局部缺血溶媒处理和(2)局部缺血2500U/kg EPO处理。药物在闭合后15分钟、2小时、4小时和6小时以静脉内大剂量给药，总剂量为10,000U/kg。22小时后，评估所述大鼠的行为表现，收集血液样品用于EPO的末端血浆水平分析，然后让所述大鼠安乐死，取脑，切片并染色以用于组织学分析。结果测量血浆测定在处死时通过眶窦从每只大鼠收集血液样品。分离血浆，冰冻和通过EPO ELISA分析来确定血浆浓度(U/ml)。
梗塞体积取脑，封闭在1mm厚片上并在室温下用氯化2，3，5-三苯基四唑鎓染料(TTC；Sigma)染色15分钟。染色后的切片在4℃保存于10％缓冲福尔马林中。通过Nikon SMZ-U显微切割镜观察这些切片。利用CCD照相机捕捉每一个脑切片图像并利用Image Pro Phase III软件处理来计算梗塞体积。结果研究I通过微型渗透泵以132U/天或1321U/天连续输注给予的EPO显著减少梗塞体积(图19)。血浆浓度与所述保护作用相关(图20)。
研究II在这个模型中闭合后15分钟以1000U/kg、2500U/kg或5000U/kg单一静脉内大剂量给予的EPO并不保护预防局部缺血性损伤(图21)。每组中的血浆浓度低(图22)。
研究III闭合后15分钟、2小时、4小时和6小时以2500U/kg重复静脉内大剂量给予的EPO导致梗塞体积显著减少(图23)。目前正在测定血浆浓度(图24)。讨论数据支持在通过短暂串联闭合所述CCA和MCA致使局部缺血的自发性高血压大鼠中，以低至中等浓度的EPO连续给药或重复给药可以显著减少可以梗塞体积。所述结果同样支持为了保护性作用的发生在EPO给予的量和时间上存在一个临界关系。在较长时期内低剂量的EPO给药比以同样方式高剂量给药或以单一大剂量输注给药更有益。这与显示出在低剂量(pM)时观察到EPO最大保护性作用和实际上在较高剂量(μM)时丧失功效的体外数据是一致的。
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权利要求
1.一种用于治疗患有由神经毒性、神经变性或神经病学损伤介导的病症的患者的方法，所述方法包括对所述患者给予治疗有效量的肽，所述肽包含一个或多个长8到约40个氨基酸并与EPO受体结合的单体肽，每一个单体肽包含一个氨基酸序列X4X5XaXbX6XcXdX7(SEQ ID NO47)，其中Xa是G或A；Xb是P或A；Xc是T或A；Xd选自W、A和F；X4选自R、H、Y、L和W，或者X4不存在；X5选自F、M和I；X6独立选自20种遗传编码的L-氨基酸或立体异构的D-氨基酸；和X7选自D、V、E、I和L。
2.权利要求1中所述的方法，其中所述序列是X4X5GPX6TWX7(SEQ ID NO48)。
3.权利要求2中所述的方法，其中所述序列是X3X4X5GPX6TWX7X8(SEQ ID NO1)，其中X3选自C、E、A、α-氨基-γ-溴丁酸和高半胱氨酸(Hoc)；和X8选自C、K、A、α-氨基-γ-溴丁酸和高半胱氨酸(Hoc)。
4.权利要求3中所述的方法，条件是X3或X8是C或高半胱氨酸(Hoc)。
5.权利要求4中所述的方法，其中X3或X8是C。
6.权利要求3中所述的方法，其中X3选自C、E和A；X4选自R、H或Y，或者X4不存在；X6选自V、L、I、M、E和A；和X7是D或V；和X8选自C、K和A。
7.权利要求3中所述的方法，其中所述肽是各自包含一个YX2X3X4X5GPX6TWX7X8(SEQ ID NO2)氨基酸序列的所述单体肽的二聚体，其中X2和X6各自独立地选自20种遗传编码的L-氨基酸；X3是C；和X8是C。
8.权利要求7中所述的方法，其中X2选自L、S、H、M、A和I，或X2不存在；和X6选自V、L、I、M、E和A。
9.权利要求7中所述的方法，其中每一个所述单体肽包含一个X1YX2X3X4X5GPX6TWX7X8X9X10X11(SEQ ID NO3)的氨基酸序列，其中X1、X2、X6、X9、X10和X11中的每一个独立地选自20种遗传编码的L-氨基酸。
10.权利要求中所述的肽二聚体，其中X3选自C、E和A；X4选自R、H和Y，或者X4不存在；X7是D或V；X8是C或K；X9是K、G、L、Q、R、S或T；和X10是A、G、P、R或Y。
11.权利要求10中所述的方法，其中X1是D、E、L、N、S、T或V；X2选自L、S、H、M、A和I，或者X2不存在；X9选自K、Q、R、S和G；和X10选自P、Y和A。
12. 权利要求3中所述的方法，其中所述肽是各自包含一个X’X2X3X4X5GPX6TWX7X8(SEQ ID NO49)氨基酸序列的所述单体肽的二聚体，其中X’选自D-Tyr、p-NO2-Phe、p-NH2-Phe、p-F-Phe、p-I-Phe和3，5-二溴-Tyr。
13.权利要求12中所述的方法，其中所述序列是X’CHFGPLTWVC。
14.权利要求1中所述的方法，其中每一个所述单体肽包含一个独立地选自以下的序列GGLYLCRFGPVTWDCGYKGG (SEQ ID NO7)；GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-1) (SEQ ID NO8)；GGDYHCRMGPLTWVCKPLGG (SEQ ID NO9)；VGNYMCHFGPITWVCRPGGG (SEQ ID NO10)；GGVYACRMGPITWVCSPLGG (SEQ ID NO11)；VGNYMAHMGPITWVCRPGG(SEQ ID NO12)；GGTYSCHFGPLTWVCKPQ (aka EMP-16)(SEQ ID NO13)；GGLYACHMGPMTWVCQPLRG (aka EMP-36)(SEQ ID NO14)；TLAQYICYMGPETWECRPSPKA (aka EMP-38)(SEQ ID NO15)；YSCHFGPLTWVCK (aka EMP-20)(SEQ ID NO16)；YCHFGPLTWVC(aka EMP-23)(SEQ ID NO17)；SCHFGPLTWVCK (aka EMP-24)(SEQ ID NO18)；GGTASCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-6) (SEQ ID NO19)；GGTYSCHFAPLTWVCKPQGG (aka EMP-9) (SEQ ID NO20)；GGTYSCFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-27)(SEQ ID NO21)；TYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-17)(SEQ ID NO22)；TYSCHFGPLTWVCKPQ (aka EMP-18)(SEQ ID NO23)；YSCHFGPLTWVCKP (aka EMP-19)(SEQ ID NO24)；YSCHFGPLTWVC (aka EMP-21)(SEQ ID NO25)；YSCHFGALTWVCK(aka EMP-22)(SEQ ID NO26)；GGCRIGPITWVCGG (aka EMP-25)(SEQ ID NO27)；HFGPLTWV (aka EMP-26)(SEQ ID NO28)；GGTTSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-7)(SEQ ID NO29)；GGTFSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-8)(SEQ ID NO30)；GGTYSCHFGALTWVCKPQGG (aka EMP-10)(SEQ ID NO31)；GGTYSCHFGPATWVCKPQGG (aka EMP-11)(SEQ ID NO32)；GGTYSCHFGPLAWVCKPQGG (aka EMP-12)(SEQ ID NO33)；GGTYSCHFGPLTAVCKPQGG (aka EMP-13)(SEQ ID NO34)；GGTYSCHFGPLTFVCKPQGG (aka EMP-14)(SEQ ID NO35)；GGTYSCHFGPLTWVCKAQGG (aka EMP-15)(SEQ ID NO36)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-28，X＝D-Tyr)(SEQ ID NO37)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-29，X＝p-NO2-Phe)(SEQ ID NO38)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-30，X＝p-NH2-Phe)(SEQ ID NO39)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-31，X＝p-F-Phe)(SEQ ID NO40)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-32，X＝p-I-Phe)(SEQ ID NO41)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-33，X＝3，5-二溴-Tyr)(SEQ ID NO42)；Ac-GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-34)(SEQ ID NO43)；GGLYACHMGPMTWVCQPLGG (aka EMP-35)(SEQ ID NO44)；LGRKYSCHFGPLTWVCQPAKKD (aka EMP-37)(SEQ ID NO45)；和GGTYSEHFGPLTWVKKPQGG (aka EMP-39)(SEQ ID NO46)，
15.权利要求14中所述的方法，其中每一个所述单体肽独立地选自GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-1)(SEQ ID NO8)；GGTASCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-6)(SEQ ID NO19)；GGTYSCHFAPLTWVCKPQGG (aka EMP-9)(SEQ ID NO20)；和YCHFGPLTWVC (aka EMP-23)(SEQ ID NO17).
16.权利要求1中所述的方法，其中所述肽是由聚乙二醇接头通过共价键形成的二聚体。
17.权利要求16中所述的方法，其中所述二聚体的每一个单体肽是N-末端到N-末端共价结合的。
18.权利要求16中所述的方法，其中所述二聚体的每一个单体肽是N-末端到C-末端共价结合的。
19.权利要求1中所述的方法，其中所述单体肽在活化的苯并二氮杂(benodiazepins)、oxazalones、氮杂内酯、胺化酰亚胺或二酮哌嗪上二聚化。
20.权利要求19中所述的方法，其中所述单体肽是N-末端到N-末端共价结合的。
21.权利要求19中所述的方法，其中所述单体肽是N-末端到C-末端共价结合的。
22.权利要求2中所述的肽，所述肽至少包含一个肽二聚体。
23.一种活化细胞表面受体以诱导神经保护性生物活性的方法，所述方法包括使权利要求2中肽的二聚体与所述受体接触，从而诱导所述神经保护性生物活性。
24.权利要求23中所述的方法，其中使所述细胞表面受体与所述二聚体在体外或体内接触。
25.权利要求23中所述的方法，其中所述细胞表面受体是EPO受体。
26.权利要求23中所述的方法，其中所述肽二聚体是选自以下的一种细胞表面受体激动剂GH激动剂、PDGF激动剂、EGF激动剂、G-CSF激动剂、TPO(血小板生成素)激动剂、VEGF激动剂、FGF激动剂、胰岛素激动剂、IL-3激动剂、IL-5激动剂、IL-6激动剂和IL-2激动剂。
27.权利要求23中所述的方法，其中所述激动剂包含一个YX2X3X4X5GPX6TWX7X8(SEQ ID NO2)的氨基酸序列，其中X2和X6中的每一个独立选自20种遗传编码的L-氨基酸；X3是C；X4是R、H、L或W；X5是M、F或I；X7是D、E、I、L或V；和X8是C。
28.权利要求23中所述的方法，其中所述激动剂包含一个X1YX2X3X4X5GPX6TWX7X8X9X10X11(SEQ ID NO3)的氨基酸序列，其中X1、X2、X6、X9、X10和X11中的每一个独立选自20种遗传编码的L-氨基酸中的任何一种；X3是C；X4是R、H、L或W；X5是M、F或I；X7是D、E、I、L或V；和X8是C。
29.权利要求23中所述的方法，其中所述激动剂包含一个X1YX2X3X4X5GPX6TWX7X8X9X10X11(SEQ ID NO3)的氨基酸序列，其中X1、X2和X11中的每一个独立选自20种遗传编码的L-氨基酸中的任何一种；X3是C；X4是R或H；X5是F或M；X6是I、L、T、M或V；X7是D或V；X9是G、K、L、Q、R、S或T；和X10是A、G、P、R或Y。
30.权利要求23中所述的方法，其中所述激动剂包含一个X1YX2X3X4X5GPX6TWX7X8X9X10X11(SEQ ID NO3)的氨基酸序列，其中X1是D、E、L、N、S、T或V；X2是A、H、K、L、M、S或T；X3是C；X4是R或H；X5是M、F或I；X6和X11独立地是20种遗传编码的L-氨基酸中的任何一种；X7是D、E、I、L或V；X8是C；X9是K、R、S或T；和X10是P。
31.权利要求23中所述的方法，其中所述激动剂选自GGLYLCRFGPVTWDCGYKGG (SEQ ID NO7)；GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-1) (SEQ ID NO8)；GGDYHCRMGPLTWVCKPLGG (SEQ ID NO9)；VGNYMCHFGPITWVCRPGGG (SEQ ID NO10)；GGVYACRMGPITWVCSPLGG (SEQ ID NO11)；VGNYMAHMGPITWVCRPGG (SEQ ID NO12)；GGTYSCHFGPLTWVCKPQ (aka EMP-16)(SEQ ID NO13)；GGLYACHMGPMTWVCQPLRG (aka EMP-36)(SEQ ID NO14)；TIAQYICYMGPETWECRPSPKA (aka EMP-38)(SEQ ID NO15)；YSCHFGPLTWVCK(aka EMP-20 (SEQ ID NO16)；YCHFGPLTWVC (aka EMP-23)(SEQ ID NO17)；SCHFGPLTWVCK (aka EMP-24)(SEQ ID NO18)；GGTASCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-6)(SEQ ID NO19)；GGTYSCHFAPLTWVCKPQGG (aka EMP-9)(SEQ ID NO20)；GGTYSCFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-27)(SEQ ID NO21)；TYSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-17)(SEQ ID NO22)；TYSCHFGPLTWVCKPQ (aka EMP-18)(SEQ ID NO23)；YSCHFGPLTWVCKP (aka EMP-19)(SEQ ID NO24)；YSCHFGPLTWVC (aka EMP-21)(SEQ ID NO25)；YSCHFGALTWVCK(aka EMP-22)(SEQ ID NO26)；GGCRIGPITWVCGG (aka EMP-25)(SEQ ID NO27)；HFGPLTWV (aka EMP-26)(SEQ ID NO28)；GGTTSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-7)(SEQ ID NO29)；GGTFSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-8)(SEQ ID NO30)；GGTYSCHFGALTWVCKPQGG (aka EMP-10)(SEQ ID NO31)；GGTYSCHFGPATWVCKPQGG (aka EMP-11)(SEQ ID NO32)；GGTYSCHFGPLAWVCKPQGG (aka EMP-12)(SEQ ID NO33)；GGTYSCHFGPLTAVCKPQGG (aka EMP-13)(SEQ ID NO34)；GGTYSCHFGPLTFVCKPQGG (aka EMP-14)(SEQ ID NO35)；GGTYSCHFGPLTWVCKAQGG (aka EMP-15)(SEQ ID NO36)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-28，X＝D-Tyr)(SEQ ID NO37)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-29，X＝p-NO2-Phe)(SEQ ID NO38)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-30，X＝p-NH2-Phe)(SEQ ID NO39)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-31，X＝p-F-Phe)(SEQ ID NO40)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-32，X＝p-I-Phe)(SEQ ID NO41)；GGTXSCHFGPLTWVCKPQGG (aka EMP-33，X＝3，5-二溴-Tyr)(SEQ ID NO42)；Ac-GGTYSCHFGPLTWVCKPQGG(aka EMP-34)(SEQ ID NO43)；GGLYACHMGPMTWVCQPLGG (aka EMP-35)(SEQ ID NO44)；LGRKYSCHFGPLTWVCQPAKKD (aka EMP-37)(SEQ ID NO45)；和GGTYSEHFGPLTWVKKPQGG (aka EMP-39)(SEQ ID NO46).
32.权利要求23中所述的方法，其中所述肽二聚体是由聚乙二醇接头通过共价键形成的。
33.一种制备细胞表面受体激动剂的方法，所述方法包括将细胞表面拮抗剂二聚化。
34.权利要求33中所述的方法，其中所述细胞表面拮抗剂受体是GH拮抗剂、PDGF拮抗剂、EGF拮抗剂、G-CSF拮抗剂、EGF拮抗剂、GM-CSF拮抗剂、TPO拮抗剂、VEGF拮抗剂、FGF拮抗剂、胰岛素拮抗剂、IL-3拮抗剂、IL-5拮抗剂、IL-6拮抗剂或IL-2拮抗剂。
35.权利要求33中所述的方法，其中所述细胞表面受体拮抗剂是EPO-R拮抗剂。
36.权利要求35中所述的方法，其中所述拮抗剂包含一个(X？X2)nX3X4X5GPX6TWX7X8(SEQ ID NO19)的氨基酸序列，其中X6选自20种遗传编码的L-氨基酸；X3是C；X4是R、H、L或W；X5是M、F或I；X7是D、E、I、L或V；X8是C；X2选自20种遗传编码的L-氨基酸，n是0或1，和X？是除Y(酪氨酸)之外的20种遗传编码的L-氨基酸中的任何一种。
37.权利要求33中所述的方法，其中所述拮抗剂是SCHFGPLTWVCK(SEQ ID NO18)。
全文摘要
公开了通过给予具有人红细胞生成素的神经学治疗活性的组合物治疗神经系统疾病的方法被公开。这些组合物包括具有人红细胞生成素全部生物活性或只具有红细胞生成素某些生物活性的治疗剂，例如肽、肽二聚体、多肽和蛋白。也提供其中红细胞生成素以低于刺激血细胞生成所需要的浓度给予的改良治疗方案。
文档编号C07K7/00GK1452492SQ01813179
公开日2003年10月29日 申请日期2001年5月23日 优先权日2000年5月26日
发明者V·史密斯－斯文托斯基, M·伦兹, C·普拉塔-萨拉曼, L·乔利菲, F·法雷尔, D·L·约翰森 申请人:奥索-麦克尼尔药品公司