治疗结肠直肠癌的方法_4

文档序号:9290999阅读:来源:国知局
20 %至约40 %的微晶体 纤维素,或以重量计约10%至约30%的微晶体纤维素。例如,本公开的片剂可以包括颗粒 内相,其包含以重量计约30%至约60%例如约45%至约65%、或者可替代地以重量计约5 至约10 %的GED-0301,以重量计约30 %至约50%、或者可替代地约5 %至约15 %的甘露糖 醇,约5%至约15%的微晶体纤维素,约0%至约4%或约1 %至约7%的羟丙基甲基纤维 素,以及以重量计约0%至约4%例如约2%至约4%的羟基乙酸淀粉钠。
[0076] 在另一种实施方式中,针对SMAD7的反义寡核苷酸的用于口服给药的药物片剂制 剂包含颗粒内相,其中所述颗粒内相包含诸如GED-0301的反义寡核苷酸或其可药用盐(例 如钠盐)和可药用添加剂,并且所述制剂还可以包含颗粒外相,其可以包含诸如崩解剂的 可药用赋形剂。颗粒外相可以包含选自微晶体纤维素、硬脂酸镁及其混合物的组分。药物 组合物还可以包含以片剂的重量计约12%至16%的肠溶包衣。例如,用于口服使用的可药 用片剂可以包含以重量计约〇. 5%至10%的反义寡核苷酸,例如GED-0301或其可药用盐, 以重量计约30 %至50 %的甘露糖醇,以重量计约10 %至30 %的微晶体纤维素,以及包含丙 烯酸乙酯-甲基丙烯酸共聚物的肠溶包衣。
[0077] 在另一个实施例中,用于口服使用的可药用片剂可以包含:颗粒内相,其包含以重 量计约5至约10%的反义寡核苷酸,例如GED-0301或其可药用盐,约40重量%的甘露糖 醇,约8重量%的微晶体纤维素,约5重量%的羟丙基甲基纤维素和约2重量%的羟基乙酸 淀粉钠;颗粒外相,其包含约17重量%的微晶体纤维素,约2重量%的羟基乙酸淀粉钠,约 0. 4重量%的硬脂酸镁;以及片剂上的肠溶包衣,其包含丙烯酸乙酯-甲基丙烯酸共聚物。
[0078] 在某些实施方式中,药物组合物可以包含肠溶包衣,其包含以重量计约13 %或约 15%、16%、17%或18%的例如AcydEZE⑩(参见例如PCT公布号W02010/054826,其全部 内容通过参考并入本文)。
[0079] 包衣溶解并且活性成分释放时的速率,是它的溶出度。在一种实施方式中,当例如 在USP/EP 2型装置(桨叶式)中,在IOOrpm和37°C下并在pH为7. 2的磷酸盐缓冲液中 试验时,所设想的片剂在约120分钟至约240分钟后,例如在180分钟后,具有约50%至约 100%的寡核苷酸释放的溶出曲线。在另一种实施方式中,当例如在USP/EP 2型装置(桨 叶式)中,在IOOrpm和37°C下并在pH为I. 0的稀HCl中试验时,所设想的片剂在120分钟 后具有寡核苷酸基本上不释放的溶出曲线。在另一种实施方式中,当例如在USP/EP 2型装 置(桨叶式)中,在IOOrpm和37°C下并在pH为6. 6的磷酸盐缓冲液中试验时,所设想的片 剂在30分钟后可能具有约10%至约30%或不超过约50%的寡核苷酸释放的溶出曲线。
[0080] 在某些实施方式中,本公开的制剂例如片剂,在口服给药于患者时,可以在患者中 产生极低的寡核苷酸血浆浓度。在另一种实施方式中,本公开的制剂在口服给药于患者时, 局部递送到患者的结肠或直肠,例如递送到患者的受影响或患病的位点。
[0081] 在某些实施方式中,本文中提供的方法还可以包括给药涉及本文中公开的疾病和 障碍的治疗的至少一种其他药剂。在一种实施方式中,所设想的其他药剂可以共同给药 (例如依次地或同时地)。
[0082] 所设想的药剂包括免疫抑制剂,其包括糖皮质激素、细胞抑制剂、抗体、作用于免 疫亲和素的药剂、干扰素、阿片受体、TNF结合蛋白、麦考酚酯和小生物药剂。例如,所设想 的免疫抑制剂包括但不限于:他克莫司、环孢霉素、吡美莫司、西罗莫司、依维莫司、麦考酚 酸、芬戈莫德、地塞米松、氟达拉滨、环磷酰胺、氨甲喋呤、咪唑硫嘌呤、来氟米特、特立氟胺、 阿那白滞素、抗胸腺细胞球蛋白、抗淋巴细胞球蛋白、莫罗莫那(muromonab) -CD3、阿夫土 珠单抗(afutuzumab)、利妥昔单抗(rituximab)、特普力珠单抗(teplizumab)、伊法利珠 单抗(efalizumab)、达利珠单抗(daclizumab)、巴利昔单抗(basiliximab)、阿达木单抗 (adalimumab)、英夫利昔单抗(infiximab)和依那西普。
[0083] 给药剂量和频率
[0084] 示例性制剂包括包含约35mg至约500mg针对SMAD7的反义寡核苷酸或基本上由 其构成的剂型。例如,本文中设想了包含约35mg、40mg、50mg、60mg、70mg、80mg、90mg、100mg、 llOmg、120mg、130mg、140mg、150mg、160mg、170mg、180mg、190mg、200mg 或 250mg 针对 SMAD7 的反义寡核苷酸的制剂。在一种实施方式中,制剂可以包含约40mg、80mg或160mg针对 SMAD7的反义寡核苷酸。在某些实施方式中,制剂可以包含至少100 μ g针对SMAD7的反义 寡核苷酸。例如,制剂可以包含约 〇· lmg、0. 2mg、0. 3mg、0. 4mg、0. 5mg、lmg、5mg、10mg、15mg、 20mg或25mg针对SMAD7的反义寡核苷酸。给药量取决于多种变量,诸如待治疗的疾病或适 应症的类型和程度、患者的总体健康和身体尺寸、反义寡核苷酸的体内效能、药物制剂和给 药途径。初始剂量可以被增加到超过上限水平,以便快速达到所需的血液水平或组织水平。 可任选地,初始剂量可以小于最适值,并且可以在治疗过程中逐渐提高剂量。人类的剂量可 以在例如被设计为从40mg至160mg运行的常规I期剂量递增研究中进行优化。给药频率 可以随着各种因素而变,诸如给药途径、剂量和待治疗的疾病。示例性的给药频率为每天一 次、每周一次和每两周一次。在某些实施方式中,连续7天每天给药一次。
[0085] 实施例
[0086] 通过下面的实施例对本发明进行进一步说明。提供实施例仅仅是出于说明的目 的,并且不应被解释为以任何方式限制本发明的范围或内容。
[0087] 实施例1 :结肠直肠癌细胞中的SMAD7蛋白表达水平
[0088] 在从由于结肠直肠癌而经历结肠切除术的6位患者获取的成对的结肠直肠癌肿 瘤和非肿瘤结肠粘膜样本中,评估SMAD7蛋白表达水平。肿瘤(T)和非肿瘤(NT)组织的 SMAD7免疫染色揭示出当与非肿瘤组织相比时,肿瘤组织中的SMAD7蛋白显著积累,而在将 结肠直肠癌切片与IgG同种型对照(同种型;图1A,代表性的三个分开的实验,其中对患有 结肠直肠癌的6位患者进行分析)温育时,没有观察到染色。此外,通过蛋白免疫印迹法对 来自于结肠直肠癌患者的14对匹配的肿瘤(T)和相邻的非肿瘤(NT)组织中的SMAD7蛋白 水平进行评估。细胞提取物的蛋白免疫印迹证实,与非肿瘤组织相比,在肿瘤组织中的可观 察到的更高的SMAD7水平(图1B,示出了来自于两个代表性患者样品的提取物的蛋白免疫 印迹)。使用β-肌动蛋白作为载样对照。通过密度测量分析对同样的印迹中SMAD7的表 达水平进行的定量证实,与来自于相同患者的非肿瘤粘膜相比,结肠直肠癌样品中的SMAD7 水平显著增加(图1Β)。
[0089] 还在结肠直肠癌细胞系中研究了 SMAD7蛋白表达。从结肠直肠癌细胞系DLD-I和 HCT-116的细胞以及正常结肠上皮细胞(IEC)收集总蛋白提取物,并通过蛋白免疫印迹法 评估SMAD7表达(图1C)。IEC从由于偶发性结肠直肠癌而经历结肠切除术的患者的宏观 和微观上未受影响的粘膜中分离。蛋白免疫印迹揭示出与IEC相比,在DLD-I和HCT-116 细胞中SMAD7蛋白的表达明显更高。SMAD7抗体信号的特异性,通过用FITC偶联的SMAD7 抗体(SMAD7)或IgG同种型对照(同种型;图1D)标记的HCT-116和DLD-I细胞的FACS分 析来验证。此外,在从一系列结肠直肠癌细胞系包括HCT-116、HT-115、HT-29和DLD-I收集 的提取物中SMAD7蛋白水平的蛋白免疫印迹检测和密度测量分析,揭示出高水平的SMAD7 表达(图1E)。在同一实验中,在一种已知表达高水平SMAD7蛋白的肝细胞癌细胞系!fepG2 细胞中评估了 SMAD7表达。使用β-肌动蛋白在两套蛋白免疫印迹实验中作为载样对照, 并且作为用于图IE中示出的条带密度测量分析的归一化标准。
[0090] 实施例2 :通过SMAD7反义寡核苷酸抑制结肠直肠癌细胞的SMAD7蛋白水平
[0091] 在HCT-116细胞系的细胞中评估用SMAD7反义寡核苷酸GED-0301对癌细胞的转 染。将HCT-116细胞用未标记的正义(SMAD7正义)寡核苷酸或用剂量逐渐增加(0. 5yg/ ml、1 μ g/ml或2 μ g/ml)的FITC偶联的GED-0301转染6小时。图2A示出了定量PI-阳性 和FITC-阳性的被转染的HCT-116细胞的百分率的代表性点图。正如通过PI和FITC染色 所评估的,获得了高的转染效率和非常低的细胞死亡水平。在图2A中示出了获得相似结果 的两个代表性实验之一。
[0092] 也在HCT-116细胞中评估了在用不同量GED-0301转染后SMAD7蛋白水平的抑制。 将HCT-116细胞用SMAD7正义寡核苷酸(以2μg/ml)或GED-0301(以0·5μg/ml、lμg/ ml或2 μ g/ml)转染12小时。随后将细胞用磷酸盐缓冲盐水(PBS)清洗,用新鲜培养基培 养6小时,再次用PBS清洗,并培养另外24小时。然后通过蛋白免疫印迹法分析SMAD7和 β -肌动蛋白水平。图2B示出了三个代表性实验之一,证实了与用SMAD7正义寡核苷酸转 染的细胞相比,在用量逐渐增加的GED-0301转染的细胞中,SMAD7蛋白水平的可观察到的 抑制。这些结果证实,SMAD7反义寡核苷酸(GED-0301)可以被转染到结肠直肠癌细胞中并 能诱导SMAD7蛋白水平的稳健抑制。
[0093] 实施例3 :SMAD7反义寡核苷酸给药影响结肠直肠癌细胞中的细胞周期动力学
[0094] 在SMAD7正义和GED-0301寡核苷酸给药后,评估了 HCT-116和DLD-I细胞中的细 胞增殖。将HCT-116和DLD-I细胞不转染(Untr)或用1 μ g/ml的SMAD7正义或GED-0301 寡核苷酸转染。转染后12小时,将细胞用PBS清洗,再培养6小时,用PBS重新清洗,并用 羧基荧光素二乙酸酯琥珀酰亚胺酯(CFSE)标记30分钟。然后将标记的细胞用PBS清洗, 并在新鲜培养基中重新培养另外24小时。通过流式细胞术评估增殖细胞的百分率。与用 SMAD7正义寡核苷酸转染的细胞相比,在用GED-0301转染的DLD-I (白色条)和HCT-116 (黑 色条)细胞两者中观察到细胞增殖的显著降低(图2C ;HCT-116 :SMAD7正义转染的细胞相 比于GED-0301转染的细胞,*P〈0. 001 ;DLD-1 :SMAD7正义转染的细胞相比于GED-0301转 染的细胞,t P〈〇. 001)。图中的数据描绘了三个实验的平均值土标准偏差(SD)。图2C中 的柱状图描绘了来自于单个实验的用SMAD7正义(82% )或GED-0301 (47% )寡核苷酸转 染的HCT-116细胞中,细胞增殖的总百分数。因此,在结肠直肠癌细胞系HCT-116和DLD-I 中,SMAD7AS寡核苷酸的给药导致细胞增殖显著降低。
[0095] 还在GED-0301转染后,在HCT-116细胞中分析了细胞在不同细胞周期阶段中的分 布。将HCT-116细胞不转染(Untr)或用SMAD7正义或GED-0301寡核苷酸转染。将HCT-116 细胞用1 μ g/ml的SMAD7正义或GED-0301寡核苷酸转染。转染后12小时,将细胞用PBS 清洗并在新鲜培养基中培养另外24小时。然后通过流式细胞术评估处于细胞周期不同阶 段的细胞的百分率。与对照相比,在用GED-0301转染的细胞中观察到存在于S期中的细胞 的百分率统计学上显著地增加,并伴随着构成G0/G1群体的细胞的百分率统计学上显著地 降低(图2D ;GED-0301转染的细胞相比于SMAD7正义转染的细胞,对于S期来说,**P = 0.0 Ol ;对于G0/G1期来说,*P = 0. 01)。示出了获得相似结果的三个代表性实验之一。这 些结果证实,由SMAD7反义寡核苷酸GED-0301的给药促进的SMAD7蛋白的抑制,引起结肠 直肠癌细胞中细胞周期阶段群体数分布的改变。
[0096] 结肠直肠癌细胞通常在介导TGF-β 1信号传导的基因中携带突变,使它们对 TGF-β 1活性的变化没有反应。因此,在人类结肠直肠癌细胞系HCT-116和DLD-I中研究 了观察到的由SMAD7活性的变化引起的
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