一种快速鉴定特定血清型沙门菌的pcr检测试剂盒的制作方法
【专利摘要】本发明属于生物技术检测领域，具体涉及一种快速鉴定特定血清型沙门菌的PCR检测试剂盒。所述试剂盒中包括tcpS基因检测引物，所述tcpS基因检测引物包括核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示的正向引物和核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示的反向引物。本发明的试剂盒能快速高通量鉴定肠炎、鸡白痢/伤寒和都柏林血清型沙门菌，可作为沙门菌传统血清学分型的辅助方法，并为这三种特定血清型沙门菌的监测与实验室诊断提供了一种简单快速、重复性好的新方法。
【专利说明】
一种快速鉴定特定血清型沙门菌的PCR检测试剂盒
技术领域
[0001] 本发明属于生物技术检测领域，具体涉及一种快速鉴定特定血清型沙门菌的PCR 检测试剂盒。
【背景技术】
[0002] 沙门菌病是公共卫生学上有重要意义的人畜共患病之一，其病原沙门菌属于肠杆 菌科，蛋、家畜和肉制品是主要传播媒介，它不但可引起多种畜禽疾病，造成全身性败血症 和肠炎，还可以作为食源性疾病的病原体，引起人类胃肠炎和食物中毒。在我国，细菌性食 物中毒中，约有70 %~80 %是由沙门菌引起的。目前，根据Kauf fman-Whi te (K-W)血清型分 型方法，依据沙门菌菌体抗原及鞭毛抗原的不同，沙门菌目前的血清型有2500种以上，中国 已报道了 292种不同的血清型，分属于35个0群。
[0003] 传统的检测方法即非选择性和选择性增菌、生化特性及血清学鉴定很费力、耗时， 需4-7天才能完成，其它如抗体检测法，虽然快速，但其高假阳性使之不适于常规检测。此 外，低水平的病原菌污染，食品加工后导致沙门菌的"致伤"及食品其它成分的干扰等因素， 使得沙门菌的检测受到一些限制。因此，急需一些快速、特异、敏感的检测方法，以及时发现 致病菌，控制污染及其可能对人体健康产生的危害。
【发明内容】
[0004] 针对现有技术中所存在的问题，本发明的目的在于提供一种快速鉴定特定血清型 沙门菌的PCR检测试剂盒及其制备和应用。
[0005] 为了实现上述目的及其他相关目的，本发明采用如下技术方案：
[0006] 本发明的第一方面，提供一种快速鉴定特定血清型沙门菌的PCR检测试剂盒，所述 试剂盒中包括tcpS基因检测引物，所述tcpS基因检测引物包括核苷酸序列如SEQ ID N0.1 所示的正向引物和核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示的反向引物。
[0007] 本发明的试剂盒采用PCR检测技术进行tcpS基因检测，根据扩增及检测情况可分 析判断检测对象是否属于肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌之一。因此， 引物的设计是本发明试剂盒的关键。
[0008] 基于本发明所述试剂盒是采用PCR技术来进行检测的，所以试剂盒中还可以包括 其他一些PCR所需要的常规试剂，如:无菌水(ddH2〇)、dNTP、PCR buffer、rTaq酶、样品基因 组DNA提取试剂等常用PCR反应试剂中的一种或多种。由于此类PCR常用试剂均可经市场途 径单独购得或者自行配置，因此具体需要将哪些试剂装配入试剂盒，可以根据客户实际需 要配置，为方便起见，也可全部装配入试剂盒。
[0009] 本发明的试剂盒，可以是含有独立包装的引物对，也可以是含有配置好的含有引 物对的PCR检测液。
[0010] 所述PCR检测液可自行配置，也可直接以市售的不含引物的通用PCR检测液加入引 物获得。例如，所述试剂盒中还可以含有无菌水(ddH2〇)、dNTP、PCR buf f er、rTaq酶。加入本 发明的引物、待检样本DNA提取物或者或者样本菌液即可获得PCR反应体系。
[0011] 优选地，所述试剂盒中还可含有阳性对照。所述阳性对照为含有tcpS基因表达的 DNA样本。
[0012] 优选地，所述试剂盒中还可含有阴性对照。阴性对照可为无 tcpS基因表达的DNA样 本。
[0013] 本发明的第二方面，提供了前述快速鉴定特定血清型沙门菌的PCR检测试剂盒的 使用方法，包括如下步骤：
[0014] (1)提取样品基因组DNA;
[0015] (2)加样:将样品基因组DNA、阳性对照或阴性对照分别加入装有PCR反应体系的 PCR管中，获得对应的样品反应管、阳性反应管或阴性反应管，所述PCR反应体系中含有前述 tcpS基因检测引物；
[0016] (3 )PCR反应:反应管置于PCR仪上，设置循环参数，进行PCR反应；
[0017] (4)PCR反应结束后，分析结果。
[0018] 优选地，所述方法为非疾病诊断目的的方法。
[0019] 步骤(1)中，提取样品基因组DNA为现有技术。
[0020]优选地，步骤(3)中，PCR反应的条件设置为：（a)94°C 5min;(b)94°C 45s;(c)59°C 45s;(d)72°C lmin，步骤(a)~（d)循环 30 次，（e)72°C lOmin。
[0021] 本发明的第三方面，提供了前述试剂盒在制备tcpS基因检测产品中的用途。
[0022] 优选地，所述检测产品用于检测和筛选属于肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者 都柏林沙门菌之任一的沙门菌。
[0023] 与现有技术相比，本发明具有如下有益效果：
[0024] 本发明通过广泛而深入的研究，首次发现tcpS基因仅存在于肠炎、鸡白痢/伤寒和 都柏林这三种血清型沙门菌中，以特异性引物通过PCR技术验证了tcpS基因在不同沙门菌 血清型及其它细菌中的分布。本发明的试剂盒能快速高通量鉴定肠炎、鸡白痢/伤寒和都柏 林血清型沙门菌，可作为沙门菌传统血清学分型的辅助方法，并为这三种特定血清型沙门 菌的监测与实验室诊断提供了一种简单快速、重复性好的新方法。
【附图说明】
[0025] 图1:为在NCBI全基因组数据库中Blastn搜索tcpS基因；其中，"Description"为含 有tcpS基因的细菌名称，"Ident"为tcpS基因核苷酸序列的相似性。
[0026] 图2 :为PCR鉴定tcpS基因在沙门菌不同血清型中的分布图片；其中，泳道Μ为： DL2000Marker;泳道 050041丄50336、51^5928、506004、9855和569为：化口5基因（882&口处有目 的条带）；C50041和C50336为肠炎沙门菌，SL5928为都柏林沙门菌，S06004和9855为鸡白痢 沙门菌，SG9为鸡伤寒沙门菌，Y8为鼠伤寒沙门菌，Y7为德尔卑沙门菌，C500为猪霍乱沙门 菌，G2为伦敦沙门菌，T8为鸭沙门菌，T9为火鸡沙门菌，T3为乌干达沙门菌，ZX为罗森沙门 菌。
[0027]图3:为PCR鉴定tcpS基因在不同种细菌中的分布图片；其中，泳道Μ为：DL2000 Marker;泳道C50041为:tcpS基因（882bp处有目的条带）；C50041为肠炎沙门菌，1314和1352 为大肠杆菌，S19为布鲁氏菌，E⑶e和XYSN为李斯特菌，11186和104为空肠弯曲菌，H37Rv为 结核分枝杆菌。
[0028] 图4A:为PCR鉴定1~48株沙门菌中含tcpS的细菌，其中，泳道Μ为：DL2000Marker; 泳道1~48为猪场分离的沙门菌;可扩增出目的条带的泳道即为肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒 沙门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一。
[0029] 图4B:为PCR鉴定49~96株沙门菌中含tcpS的细菌，其中，泳道Μ为:DL2000Marker; 泳道49~96为猪场分离的沙门菌;可扩增出目的条带的泳道即为肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒 沙门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一。
[0030] 图4C:为PCR鉴定97~128株沙门菌中含tcpS的细菌，其中，泳道Μ为： DL2000Marker;泳道97~128为猪场分离的沙门菌;可扩增出目的条带的泳道即为肠炎沙门 菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一。
[0031] 图5:为PCR鉴定1~22株沙门菌中含tcpS的细菌，其中，泳道Μ为:DL2000Marker;泳 道1~2 2为鸡场分离的沙门菌;可扩增出目的条带的泳道即为肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙 门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一。
[0032] 图6:为PCR鉴定1~11株沙门菌中含tcpS的细菌，其中，泳道Μ为:DL2000Marker;泳 道1~11为牛场分离的沙门菌;可扩增出目的条带的泳道即为肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙 门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一。
【具体实施方式】
[0033] 在进一步描述本发明【具体实施方式】之前，应理解，本发明的保护范围不局限于下 述特定的具体实施方案;还应当理解，本发明实施例中使用的术语是为了描述特定的具体 实施方案，而不是为了限制本发明的保护范围。
[0034] 当实施例给出数值范围时，应理解，除非本发明另有说明，每个数值范围的两个端 点以及两个端点之间任何一个数值均可选用。除非另外定义，本发明中使用的所有技术和 科学术语与本技术领域技术人员通常理解的意义相同。除实施例中使用的具体方法、设备、 材料外，根据本技术领域的技术人员对现有技术的掌握及本发明的记载，还可以使用与本 发明实施例中所述的方法、设备、材料相似或等同的现有技术的任何方法、设备和材料来实 现本发明。
[0035] 实施例1生物信息学方法鉴定tcpS基因的分布
[0036] 在 NCBI 中使用Blastn在线比对软件（http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/ Blast, cgi)在全基因组数据库中搜索tcpS基因，搜索结果表明tcpS基因仅存在于肠炎沙门 菌、鸡白痢/伤寒沙门菌和都柏林沙门菌中，且核苷酸序列相似性为100%，而沙门菌其它血 清型和其它物种均没有这个基因（图1)。
[0037]实施例2试剂盒的制备
[0038]引物设计与合成：以tcpS基因为模板，设计并分析引物，并根据基因组DNA序列情 况，从中选择最佳检测用引物对，其核苷酸序列如下表1所示：
[0039]表 1
[0041 ] 上述引物对可单独包装，也可以配成PCR检测液。所述PCR检测液中，上述引物对的 量采用本领域技术人员所知悉的常规用量即可。
[0042] 也就是说，本发明的试剂盒，可以是含有上述独立包装的引物对，也可以是含有配 置好的含有引物对的PCR检测液。
[0043] 进一步地，所述试剂盒还可以含有无菌水(ddH2〇)、dNTP、PCR buffer、rTaq酶、样 品基因组DNA提取试剂等等。
[0044] 实施例3试剂盒鉴定tcpS基因仅存在特定血清型沙门菌中
[0045] 采用实施例2所述试剂盒中的引物，以不同血清型沙门菌和其它细菌的基因组分 别为模板，PCR方法鉴定tcpS基因在不同细菌中的分布特点。
[0046] PCR 反应体系为（254〇:(1(1!12〇16.2541^(1犯13241^10\?0?1311打612.541^汀。口5-FlyL，tcpS-R lyL，模板2yL，rTaq酶0 · 25yL。
[0047] PCR程序为94°C 5min;94°C 45s，59°C 45s，72°C lmin，30个循环；72°C lOmin。
[0048] PCR产物进行1 %琼脂糖凝胶电泳，PCR电泳结果表明仅在以肠炎、鸡白痢/伤寒和 都柏林沙门菌基因组为模板的泳道中有目的条带（图2、图3)，胶回收后测序结果表明所有 的tcpS基因的核苷酸相似性均为100 %。表明以实施例2所述试剂盒中特定的tcpS扩增引 物，可以通过PCR方法快速鉴定未知细菌是否为这三种血清型沙门菌。
[0049] 实施例4试剂盒在猪场的应用
[0050] 采用实施例2中试剂盒，检测128株沙门菌，可快速准确地检测出肠炎沙门菌、鸡白 痢/伤寒沙门菌和都柏林沙门菌这三种血清型。具体步骤如下：
[0051] 1)沙门菌的分离
[0052] 本试验中样品采自江苏某猪场，样品的采集、增菌及沙门菌的分离和生理生化鉴 定参考现有技术中已建立方法（Li Y，et al.Food Control，2016;Cai Y，et al.Int J Food Microbiol ,2016)，本次试验共分离鉴定了 128株沙门菌。
[0053 ] 2) PCR方法检测样本中肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌和都柏林沙门菌
[0054]将128株沙门菌分别接种到LB液体培养基中，37°C 180rpm过夜培养，次日，以菌液 为模板扩增tcpS基因，PCR反应体系为（25yL):ddH2〇 16.25yL，dNTP 2yL，10XPCR buffer2 · 5yL，tcpS-F lyL，tcpS-R lyL，模板（菌液）2yL，rTaq酶0 · 25yL jCR程序为94°C 5min;94°C 45s，59°C 45s，72°C lmin，30个循环；72°C lOmiruPCR产物进行 1%琼脂糖凝胶 电泳，可扩增出tcpS目的条带的细菌则为肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门 菌这三种血清型之一。结果显示128株沙门菌中共有21株含tcpS基因，分别是3、4、5、13、14、 15、26、27、41、43、47、48、51、52、55、56、73、75、76、113和119(图4)，这些沙门菌为肠炎沙门 菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一。
[0055] 3)沙门菌的传统血清型鉴定
[0056]本次试验分离的128株沙门菌的血清型鉴定参考现有技术中已建立方法(Li Y，et al .Food Control，2016;Cai Y，et al.Int J Food Microbiol ,2016)，血清型鉴定结果表 明128株沙门菌中共有21株肠炎沙门菌，分别为3、4、5、13、14、15、26、27、41、43、47、48、51、 52、55、56、73、75、76、113和119，？0?检测结果与血清型鉴定结果完全一致。
[0057]在本实施例中，采用血清型鉴定的方法，将128株沙门菌中的属于肠炎沙门菌、鸡 白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一的沙门菌筛选出来，需要至少2天的 时间。而采用本发明实施例2的检测试剂盒，仅需3个小时，即可将128株沙门菌中的属于肠 炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一的沙门菌准确筛选出 来，且正确率为100%。
[0058]实施例5试剂盒在鸡场的应用
[0059]采用实施例2中试剂盒，检测22株沙门菌，可快速准确地检测出肠炎沙门菌、鸡白 痢/伤寒沙门菌和都柏林沙门菌这三种血清型。具体步骤如下：
[0060] 1)沙门菌的分离
[0061] 本试验中样品采自江苏某鸡场，样品的采集、增菌及沙门菌的分离和生理生化鉴 定参考现有技术中已建立方法（Li Y，et al.Food Control，2016;Cai Y，et al.Int J Food Microbiol ,2016)，本次试验共分离鉴定了22株沙门菌。
[0062 ] 2) PCR方法检测样本中肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌和都柏林沙门菌
[0063]将22株沙门菌分别接种到LB液体培养基中，37°C 180rpm过夜培养，次日，以菌液 为模板扩增tcpS基因，PCR反应体系为（25yL):ddH20 16.25yL，dNTP 2yL，10XPCR buffer2 · 5yL，tcpS-F lyL，tcpS-R lyL，模板（菌液）2yL，rTaq酶0 · 25yL jCR程序为94°C 5min;94°C 45s，59°C 45s，72°C lmin，30个循环；72°C lOmiruPCR产物进行 1%琼脂糖凝胶 电泳，可扩增出tcpS目的条带的细菌则为肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门 菌这三种血清型之一。结果显示22株沙门菌中共有12株含tcpS基因，分别是2、3、4、7、8、11、 12、14、16、17、18和20 (图5 )，这些沙门菌为肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙 门菌这三种血清型之一。
[0064] 3)沙门菌的传统血清型鉴定
[0065]本次试验分离的22株沙门菌的血清型鉴定参考现有技术中已建立方法(Li Y，et al.Food Control，2016;Cai Y，et al.Int J Food Microbiol ,2016)，血清型鉴定结果表 明22株沙门菌中共有12株鸡白痢沙门菌，分别为2、3、4、7、8、11、12、14、16、17、18和20，卩〇? 检测结果与血清型鉴定结果完全一致。
[0066] 在本实施例中，采用血清型鉴定的方法，将22株沙门菌中的属于肠炎沙门菌、鸡白 痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一的沙门菌筛选出来，需要至少2天的时 间。而采用本发明实施例2的检测试剂盒，仅需3个小时，即可将22株沙门菌中的属于肠炎沙 门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一的沙门菌准确筛选出来，且 正确率为100%。
[0067] 实施例6试剂盒在牛场的应用
[0068] 采用实施例2中试剂盒，检测11株沙门菌，可快速准确地检测出肠炎沙门菌、鸡白 痢/伤寒沙门菌和都柏林沙门菌这三种血清型。具体步骤如下：
[0069] 1)沙门菌的分离
[0070]本试验中样品采自江苏某牛场，样品的采集、增菌及沙门菌的分离和生理生化鉴 定参考现有技术中已建立方法（Li Y，et al.Food Control，2016;Cai Y，et al.Int J Food Microbiol ,2016)，本次试验共分离鉴定了11株沙门菌。
[0071 ] 2) PCR方法检测样本中肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌和都柏林沙门菌
[0072]将11株沙门菌分别接种到LB液体培养基中，37°C 180rpm过夜培养，次日，以菌液 为模板扩增tcpS基因，PCR反应体系为（25yL):ddH20 16.25yL，dNTP 2yL，10XPCR buffer 2.5yL，tcpS-F lyL，tcpS-R lyL，模板（菌液）2yL，rTaq酶0·25μΙ^ΡΟ?程序为94°C 5min;94 °C 45s，59°C 45s，72°C lmin，30个循环;72°C lOmiruPCR产物进行1%琼脂糖凝胶电泳，可 扩增出tcpS目的条带的细菌则为肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌这三 种血清型之一。结果显示11株沙门菌中仅8号样品含tcpS基因（图6)，该沙门菌为肠炎沙门 菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一。
[0073] 3)沙门菌的传统血清型鉴定
[0074]本次试验分离的11株沙门菌的血清型鉴定参考现有技术中已建立方法(Li Y，et al.Food Control，2016;Cai Y，et al.Int J Food Microbiol ,2016)，血清型鉴定结果表 明11株沙门菌中共有1株都柏林沙门菌，为8号分离菌，PCR检测结果与血清型鉴定结果完全 一致。
[0075] 在本实施例中，采用血清型鉴定的方法，将11株沙门菌中的属于肠炎沙门菌、鸡白 痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一的沙门菌筛选出来，需要至少2天的时 间。而采用本发明实施例2的检测试剂盒，仅需3个小时，即可将11株沙门菌中的属于肠炎沙 门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌这三种血清型之一的沙门菌准确筛选出来，且 正确率为100%。
[0076] 综上所述，本发明试剂盒相较于传统血清型鉴定方法的优势：
[0077] 传统血清型鉴定需购买特定的沙门菌血清型鉴定试剂盒，价格昂贵，步骤繁琐，尤 其在大样本中分离特定的血清型沙门菌(如肠炎沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙 门菌)时，需耗费大量时间（至少两天），且工作量庞大，其结果是由肉眼进行判断，因而可能 存在人为误差;而本发明试剂盒的检测方法操作简单，成本非常低，且对细菌的存在形式没 有要求(单菌落、冻存菌液或新鲜菌液均可），整个鉴定过程在三小时内即可完成(包含PCR 和琼脂糖凝胶电泳），且准确率达到1〇〇%。
[0078] 因此，本发明的一种快速鉴定特定血清型沙门菌的PCR检测试剂盒，有利于简化沙 门菌血清型鉴定的传统步骤，为在大量样本中筛选肠炎、鸡白痢/伤寒和都柏林血清型沙门 菌提供了一种快速鉴定的新方法。
[0079]上述实施例仅例示性说明本发明的原理及其功效，而非用于限制本发明。任何熟 悉此技术的人士皆可在不违背本发明的精神及范畴下，对上述实施例进行修饰或改变。因 此，举凡所属技术领域中具有通常知识者在未脱离本发明所揭示的精神与技术思想下所完 成的一切等效修饰或改变，仍应由本发明的权利要求所涵盖。
【主权项】
1. 一种快速鉴定特定血清型沙门菌的PCR检测试剂盒，所述试剂盒中包括tcpS基因检 测引物，所述tcpS基因检测引物包括核苷酸序列如SEQ ID NO. 1所示的正向引物和核苷酸 序列如SEQ ID NO. 2所示的反向引物。2. 根据权利要求1所述的检测试剂盒，其特征在于，所述试剂盒还含有无菌水、dNTP、 PCR buffer、rTaq酶、样品基因组DNA提取试剂中的一种或多种。3. 根据权利要求1所述的检测试剂盒，其特征在于，所述试剂盒还含有阳性对照或阴性 对照中的一种或多种。4. 根据权利要求3所述的检测试剂盒，其特征在于，所述阳性对照为含有tcpS基因表达 的DNA样本。5. 根据权利要求3所述的检测试剂盒，其特征在于，所述阴性对照可为无 tcpS基因表达 的DNA样本。6. 如权利要求1~5任一权利要求所述的检测试剂盒的使用方法，包括如下步骤： (1) 提取样品基因组DNA; (2) 加样:将样品基因组DNA、阳性对照或阴性对照分别加入装有PCR反应体系的PCR管 中，获得对应的样品反应管、阳性反应管或阴性反应管，所述PCR反应体系中含有权利要求1 中所述的tcpS基因检测引物； (3) PCR反应:反应管置于PCR仪上，设置循环参数，进行PCR反应； (4) PCR反应结束后，分析结果。7. 根据权利要求6所述的方法，其特征在于，所述方法为非疾病诊断目的的方法。8. 根据权利要求6所述的方法，其特征在于，步骤(3)中，PCR反应的条件设置为：（a)94 1€511^11 ;(13)941€458;(。）591€458;((1)72。(：111^11，步骤(&)~（(1)循环30次，（6)72。(：1〇11^11。9. 如权利要求1~5任一权利要求所述的检测试剂盒在制备tcpS基因检测产品中的用 途。10. 根据权利要求9所述的用途，其特征在于，所述检测产品用于检测和筛选属于肠炎 沙门菌、鸡白痢/伤寒沙门菌或者都柏林沙门菌之任一的沙门菌。
【文档编号】C12Q1/10GK105936935SQ201610459944
【公开日】2016年9月14日
【申请日】2016年6月22日
【发明人】焦新安, 潘志明, 熊丹, 宋丽, 焦扬, 孙林, 陈祥, 耿士忠, 黄金林, 殷月兰
【申请人】扬州大学