专利名称：一株用于生物脱硫的红串红球菌及应用的制作方法
技术领域：
本发明属于生物技术领域，涉及到一株新筛选的菌株红串红球菌。该红串红球菌能够选择性断裂含碳物质的C-S键，保持含碳物质的生热值基本不变。本发明的红串红球菌特别适用于含有有机硫化合物的物质中脱硫，如用于脱除含硫的煤炭或原油及其馏分中的硫。
背景技术：
硫元素是石油中继碳元素和氢元素之后的第三大元素，并且它无论在已加工或未加工的燃油中都是不受欢迎的组分。石油中的硫元素造成石油精炼过程中对设备的腐蚀，另外，含硫燃油燃烧产生的SO2会造成环境污染。环境部门对石油产品如汽油与柴油中硫含量的管制标准越来越严格。为了净化空气，成品汽油与柴油中允许的硫含量急剧下降。
无机的硫铁矿硫和有机硫各占煤炭的3.5％(w/w)。硫铁矿硫相对容易被脱除。微生物如真菌(HE De-wen，CHAI Li-yuan，SONG Wei-feng，″ExperimentalResearch on Factors Affecting Desulfurization Mechanism of Fungi，″EnvironmentalScience and Technology，27(1)5-6)等通过氧化或还原方式代谢无机硫和有机硫为水溶性硫酸盐。HE De-wen等人报道的真菌能够利用无机的硫铁矿硫化合物作为能源，并且在2天内脱除煤炭中总硫量的43.75％，无机硫含硫的54.84％。玫瑰色红球菌ITGS8能够在96小时内脱除Mengen褐煤中55.2％的硫酸盐硫，20％的硫铁矿硫，23.5％的有机硫，和30.2％的总硫含量(Bozdemir，T.O.，Durusoy，T.，Erincin，E.，and Yurum，Y.1996.Biodesulfurization of Turkish lignites.l.Optimization of the growth parameters of Rhodococcus rhodochrous，asulfur-removing bacterium.Fuel，75(3)1596-1600)。
Kodama等人曾在1973年报道一个在有氧条件下，通过“kodama”途径裂解二苯并噻吩(DBT)导致DBT芳香环断裂的转化过程(Kodama K.，Umehara K.，Shimizu K.，Nakatanni S.，Minoda Y.，Yamada K.1973.Identification of microbialproducts from dibenzothiophene and its proposed oxidation pathway.Agr.Biol.Chem.3745-50)，但是在这个过程中DBT的硫元素并没有被释放出来，“kodama”途径见图1。Van Afferden M等人也在1990年报道了一个利用DBT作为单一碳源、硫源与能源的特异性路径(Van Afferden M.，Schacht S.，Klein J.，Trüper H.G.1990.Desulfurization of dibenzothiophene by Brevibacterium sp.DO.Arch.Microbiol.153324-328)。这两个路径都导致了芳香环中C-C键的断裂，造成燃油中燃烧热值降低，因此这两个代谢途径都不是在BDS过程中希望利用的路径。
Kilbane等人1989年在Rhodococcus rhodochrous IGTS8(US 5,002,888)和Bacillus sphaericus strain ATCC No.53969(US 5,104,801)中发现一个选择性断裂C-S键的路径，命名为“4S”路径。Rhodococcus rhodochrous IGTS8能够执行一个针对杂环分子，如噻吩、硫化物、二硫化物、硫醇、亚砜和砜中的硫原子的选择性逐步氧化过程，而碳骨架不被代谢(Kayser K.J.，Bielaga-Jones B.A.，Jackowski K.，Odusan O.，Kilbane J.J.1993.Utilization of organosulfur compoundsby axenic and mixed cultures of Rhodococcus rhodochrous IGTS8.J.Gen.Microbiol.1393123-3129)。特别是通过“4S”途径Rhodococcus rhodochrous IGTS8能够降解DBT产生2-羟基联苯(2-HBP)和硫酸盐(Gallagher J.R.，Olson E.S.，StanleyD.C.1993.Microbial desulfurization of dibenzothiophenea sulfur specific pathway.FEMS Microbiol.Lett.10731-36)，“4S”途径见图2。
Kilbane等人公布了他们的工作之后各国科技工作者又先后筛选出一大批与IGTS8相似的能够选择性断裂有机硫化合物中C-S的菌株，这些菌株如有Sphingomonas sp.Strain AD109(US 5,132,219)，Norcardia sp.CKYS2(US6,197,570)，Gordona sp.CYKS1(US 6,204,046)，Mycobacterium(CN 1379084A)，Pseudomonas delafildii R-8(CN 1386847A)等等。这些菌株都不属于红球菌，当然属于红球菌的菌株也有报道，如中国科学院化工冶金研究所缑仲轩等人筛选出的红平红球菌LSSE-1(CN 1418948A)。红平红球菌LSSE-1能够专一性断裂有机硫化合物中的C-S键，对矿质燃料如石油，煤等脱硫不损失燃烧热值，具有较高的应用价值。利用红平红球菌LSSE-1制备的生物催化剂能够对加氢精制柴油进行深度脱硫，从263ppm降低到50ppm以下。LSSE-1在以DBT为单一硫源的基本培养基中生长84h达到指数生长期，菌体浓度为4.18OD(600nm处，下同)，168h达到稳定生长期，菌体浓度为5.87OD，生长84h和168h的细胞的比脱硫活力分别为0.22和0.14mg(S)·g-1(DCW)·h-1(李珊，邢建民，缑仲轩等人，红平红球菌LSSE8-1的培养及其对二苯并噻吩中硫元素脱除的影响，过程工程学报，2(3)257-261)。
虽然已经分离出很多能够用于燃油BDS过程的菌株，但是还有很多限制因素阻碍了石油BDS过程的商业化应用。这些限制因素例如有用于脱硫的菌株生长周期太长，脱硫菌株的专一催化活性不够高，脱硫过程中产生的硫酸盐严重的抑制生物催化剂的活性，以及石油对脱硫菌株的毒性缩短了生物催化剂的寿命等等。
因此迫切需要一株具有增强的专一性催化活性，和增强的催化稳定性的菌株用于生物脱硫过程。
发明内容
本发明目的在于克服以往的脱硫菌株的缺点，提供一株从被石油污染的土壤中新筛选出的，生长周期短、脱硫活性高、同时还能耐受高浓度硫酸根离子、具有良好的耐油性，以及催化活性稳定的能专一性断裂含有机硫的化合物中C-S键的菌株。以及该菌株在含硫的煤炭或原油及其馏分脱硫中的应用。
本发明提供一种用于生物脱硫的红串红球菌红串红球菌(Rhodococcuserythropolis)FSD-2，2004年10月11日保藏于“中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心”，其保藏号为CGMCC NO.1209。
本发明提供的红串红球菌革兰氏染色为阳性；细胞形态多样性，多数为杆状；菌落颜色为橘红色。
本发明提供的红串红球菌的16SrRNA基因序列为TGGCGGCGTGCTTAACACATGCAAGTCGAGCGGTAAGGCCTTTCGGGGTACACGAGCGGCGAACGGGTGAGTAACACGTGGGTGATCTGCCCTGCACTTCGGGATAAGCCTGGGAAACTGGGTCTAATACCGGATATGACCTCCTATCGCATGGTGGGTGGTGGAAAGATTTATCGGTGCAGGATGGGCCCGCGGCCTATCAGCTTGTTGGTGGGGTAATGGCCTACCAAGGCGACGACGGGTAGCCGACCTGAGAGGGTGACCGGCCACACTGGGACTGAGACACGGCCCAGACTCCTACGGGAGGCAGCAGTGGGGAATATTGCACAATGGGCGAAAGCCTGATGCAGCGACGCCGCGTGAGGGATGACGGCCTTCGGGTTGTAAACCTCTTTCAGCAGGGACGAAGCGCAAGTGACGGTACCTGCAGAAGAAGCACCGGCTAACTACGTGCCAGCAGCCGCGGTAATACGTAGGGTGCAAGCGTTGTCCGGAATTACTGGGCGTAAAGAGTTCGTAGGCGGTTTGTCGCGTCCTTTGTGAAAACCAGCAGCTCAACTGCTGGCTTGCAGGCGATACGGGCAGACTTGAGTACTGCAGGGGAGAACTGGAATTCCTGGGGTAACA本发明红串红球菌FSD-2作为生物催化剂对所有含硫化合物如原油、柴油、汽油、煤炭等进行脱硫处理方法。
本发明的红串红球菌FSD-2无论是生长细胞，休止细胞，细胞抽提液，以及细胞中与生物脱硫有关的酶的提取液都可以用于所有含硫化合物如原油、柴油、汽油、煤炭等的脱硫处理。
本发明红串红球菌FSD-2制备的休止细胞在4℃条件可以长期保存并保持脱硫活性。
本发明提供的红串红球菌FSD-2主要应用于含硫化合物如石油、煤炭等的脱硫，含硫化合物中的硫元素为有机硫或无机硫。本发明提供的红串红球菌可利用的硫源广泛，如可以利用硫酸盐、磺酸盐、砜类、噻吩及其衍生物、苯并噻吩及其衍生物以及二苯并噻吩(DBT)及其衍生物作为单一硫源生长，见图4。本发明的红串红球菌FSD-2对含硫有机物如DBT及其衍生物中的C-S键进行专一性降解，不破坏烃结构中的C-C键，因此不损失燃料的燃烧值。本发明红串红球菌FSD-2的生长周期短、脱硫活性高、同时还能耐受高浓度硫酸根离子、具有良好的耐油性。
图1是DBT降解的“kodama”途径。
图2是R.erythropolis IGTS8降解DBT的“4S”途径。
图3是Rhodococcus erythropolis FSD-2在平板上的生长状态。
图4是FSD-2菌株以不同含硫化合物为单一硫源生长时的菌体浓度，其中T、BT、TSA、MTP、MT、DMT、TXTO、DMDBT、MBT、DBT分别代表噻吩、苯并噻吩、邻甲苯磺酸、2-甲基硫茚、2-甲基噻吩、2，5-二甲基噻吩、噻吩-9-酮、4，6-二甲基二苯并噻吩、3-甲基苯并噻吩和二苯并噻吩。
图5是R.erythropolis FSD-2菌株与相关菌株基于16SrRNA的进化树。
图6是柴油经过红串红球菌FSD-2处理之前后含硫经合物含量的变化关系。
图7是FSD-2对DBT代谢产物的质谱图。
图8是HBP浓度与OD关系曲线。
图9是FSD-2降解DBT生成2-HBP与培养时间的关系。
图10是1～3号精制柴油深度生物脱硫前后的GC-SCD图谱。
具体实施例方式
本发明的红串红球菌FSD-2是以山东孤岛油田采取的被石油污染的土壤为菌源，DBT作为选择压力分离出的一株能够专一性断裂DBT中C-S键的菌株，其生理生化试验结果见表1。
表1 红串红球菌FSD-2的生理生化试验结果
经“中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心”鉴定，该菌株属于红串红球菌(Rhodococcus erythropolis)，命名为FSD-2。
图3为该红串红球菌在FMAD琼脂平板上的生长状态。FMA培养基配方5g/l葡萄糖、2g/l NH4Cl、14.04g/l Na2HPO4、2.24g/l KH2PO4、0.2g/l MgCl2·6H2O，微量元素溶液母液和维生素溶液母液的加入量各为1.0ml/l，pH值7.0～7.2。微量元素母液含有0.5g/l FeCl2·4H2O、0.5g/l ZnCl2、0.5g/l MnCl2·4H2O、0.1g/lNaMoO4·2H2O、0.05g/l CuCl2、0.05g/l NaWO4·2H2O和120mmol/l HCl。维生素母液含有400mg/l泛酸钙、200mg/l肌醇、400mg/l烟酸、400mg/l盐酸吡哆醇、200mg/l对氨基甲苯和0.5mg/l VB12；FMAD培养基即FMA培养基中加入适量DBT，如0.1～10mmol/l。
利用Vector NTI Suite 8软件对红串红球菌FSD-2的16SrRNA基因分别与玫瑰色红球菌IGTS8(US 5,104,801)以及红平红球菌LSSE8-1(CN 1418948A)的16SrRNA基因进行同源性比对，结果FSD-2与IGTS8的同源性为98.7％，与LSSE8-1的同源性为97.2％，可见FSD-2菌株与IGTS8和LSSE8具有较高的同源性，同属于红球菌，但同时也具有明显的差别，显然并非相同菌株。
通过在美国国家生物信息中心(NCBI)网页的Blast分析，对红串红球菌FSD-2菌株的16SrRNA基因在国际Genbank库中进行同源性比对，得到101个菌株与本发明的菌株FSD-2具有相似性，其中绝大多数为红球菌或其衍生菌株，同源性在97％～99％之间，图5为R.erythropolis FSD-2菌株与相关菌株基于16SrRNA的进化树。FSD-2与相关菌株亲缘关系很近，但是与每支菌却不完全相同，说明本发明菌株为首次被分离鉴定。
本发明的菌株红串红球菌FSD-2能够在丰富培养基，如LB中迅速生长，也可以在加有无机硫源如Na2SO4，或有机硫源如DBT的FMA中生长。菌株FSD-2在pH4～9均能良好生长，最佳pH6～8；生长温度28～42℃，最佳温度30～32℃；属于好氧菌。
本发明的红串红球菌FSD-2几乎能够降解所有的含硫化合物，如磺酸盐、砜类、噻吩及其衍生物、苯并噻吩及其衍生物以及二苯并噻吩(DBT)及其衍生物，释放其中的硫元素为无机硫化合物溶解于水相中。图6是一种经过加氢处理的柴油利用红串红球菌FSD-2处理前后含硫化合物含量的变化图。
本发明提供的以红串红球菌FSD-2为生物催化剂的生物脱硫方法是(1)生长细胞脱硫利用红串红球菌FSD-2接种于无硫矿质培养基FMA中，并加入适量的需进行生物脱硫处理的含硫化合物如DBT，石油或煤炭作为单一硫源，红串红球菌FSD-2边生长边对底物脱硫；(2)休止细胞脱硫利用FMAD培养基(FMA培养基中加入适量DBT)或丰富培养基如LB培养基培养红串红球菌FSD-2到对数期末期，收集细菌，然后利用0.85％的生理盐水洗涤两次，重新悬浮于pH7.0的磷酸盐缓冲液中，加入1％的葡萄糖，做成休止细胞，再往休止细胞中加入适量的需进行生物脱硫处理的含硫化合物如DBT，石油或煤炭培育一段时间，即可实现对这些化合物的脱硫；(3)固定化细胞脱硫按照(2)中制备休止细胞的方法制备红串红球菌FSD-2菌株的菌体悬浮液，利用海藻酸钠、聚丙烯酰氨凝胶、琼脂糖、壳聚糖等制备成含有FSD-2菌株的珠子，以这些珠子作为生物催化剂可以对需进行生物脱硫处理的含硫化合物如DBT，石油或煤炭进行脱硫；(4)细胞抽提液脱硫按照(2)中制备休止细胞的方法制备红串红球菌FSD-2菌株的菌体悬浮液，利用细胞破碎仪破碎细胞，离心去除细胞碎片，得到的细胞抽提液中加入适量需进行生物脱硫处理的含硫化合物如DBT，石油或煤炭进培育合适的时间即可实现生物脱硫。
本发明的红串红球菌FSD-2耐油性强。菌体浓度为11.37g(DCW)·l-1的休止细胞，按油水比(OWR)2∶5加入柴油，对柴油进行生物脱硫处理，30℃培育12小时，平均比脱硫活性为0.7798mg(S)·g-1(DCW)·h-1，比OWR为1∶5时平均比脱硫活力的0.6491mg(S)·g-1(DCW)·h-1还高20.14％。
本发明的红串红球菌FSD-2催化活性稳定。利用休止细胞对柴油脱硫，OWR为1∶5时，经过处理柴油18小时后的细胞的脱硫活性与处理柴油3小时后的细胞的脱硫活性仅降低了0.0654mg(S)·g-1(DCW)·h-1。
本发明的红串红球菌FSD-2能够耐受高浓度的硫酸盐。利用休止细胞对柴油脱硫，OWR为1∶5，加入Na2SO4到终浓度为20mM时，30℃培育12小时，平均比脱硫活性为0.6231mg(S)·g-1(DCW)·h-1，比未加入Na2SO4的休止细胞处理柴油时比脱硫活力仅降低4％。
本发明的红串红球菌FSD-2的休止细胞在4℃条件保存1个月，比脱硫活力在0.7147～0.8595mg(S)·g-1(DCW)·h-1之间，变化不大，便于保藏。
本发明的红串红球菌FSD-2的生长周期短，该菌株对数中后期培养物以10％接种量接入到FMAD培养基中，24小时即可到稳定期，稳定期菌体浓度为11.8OD，即3.7g(DCW)·l-1，比生长速率0.1542g(DCW)·l-1·h1。
本发明的红串红球菌FSD-2对含硫化合物降解后不断裂碳骨架，因此对烃类结构影响不大，不损失燃烧值，表2是利用MS-GC分析法测定的红球菌FSD-2的休止细胞处理前后柴油中各种烃类含量百分比变化。
表2 红球菌FSD-2的休止细胞处理前后柴油中各种烃类含量百分比变化
实施例1FSD-2菌株的筛选从山东孤岛油田附近采取被石油污染的土壤样品，经过一个三步骤过程筛选分离纯化对石油选择性脱硫的微生物。第一步，加入0.5g被石油污染的土壤样品到50ml含有终浓度为1mmol/l DBT的无硫基本培养基FBM中(FBM培养基含有10.0g/l葡萄糖，2.0g/l NH4Cl，6.3g/l KH2PO4，8.0g/l K2HPO4，0.2g/lMgCl2·6H2O，等等，含有1mmol/l DBT的FBM培养基为FBMD培养基)，30℃振荡培养5天，以10％接种量转接到FBMD培养基中，相同条件培养2天，反复转接2-3次。第二步，经过如此2-3次富集培养后，取1ml培养物，于3000rpm离心5min，取上清0.5ml做Gibb’s分析(DBT经“4S”途径降解后，生成的产物2-HBP与2，6-二氯醌-4-亚胺在碱性环境下反应生成兰色化合物)。第三步，把Gibb’s反应成兰色的培养物取出100μl，涂于FBMD琼脂平板上，30℃静置培养2-3天，挑取单菌落按上述方式在FBMD液体培养基中培养，挑选生长状态良好的菌株培养物做Gibb’s分析，有兰色反应的菌株培养物则表明该菌株有很大可能性能够专一选择性断裂DBT中的C-S键，并生成了2-HBP。
一共挑选了500株菌株，筛选得到1株生长状态良好，对DBT具有专一性脱硫能力的红串红球菌FSD-2，并于2004年10月11日保藏于“中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心”，其保藏号为CGMCC NO.1209。
实施例2FSD-2菌株代谢物分析挑取FMAD琼脂斜面培养的FSD-2菌株，接种到50ml FMAD液体培养基中。FMAD液体培养基的成分5g/l葡萄糖、2g/l NH4Cl、14.04g/l Na2HPO4、2.24g/l KH2PO4、0.2g/l MgCl2·6H2O，微量元素溶液母液和维生素溶液母液的加入量各为1.0ml/l，DBT终浓度1.0mmol/l，pH值7.0～7.2。微量元素母液含有0.5g/l FeCl2·4H2O、0.5g/l ZnCl2、0.5g/l MnCl2·4H2O、0.1g/l NaMoO4·2H2O、0.05g/lCuCl2、0.05g/l NaWO4·2H2O和120mmol/l HCl。维生素母液含有400mg/l泛酸钙、200mg/l肌醇、400mg/l烟酸、400mg/l盐酸吡哆醇、200mg/l对氨基甲苯和0.5mg/l VB12。30℃，150转/分培养24-48小时，取10ml培养物，加入2ml二氯甲烷萃取培养物中的代谢产物，萃取液采用PE Autosystem GC/Q-Mass910气相色谱—质谱联用仪分析，见图7。DBT经过红串红球菌FSD-2降解后，最终被转化为2-HBP，这与“4S”途径的最终产物一致，说明该菌株通过C-S键断裂方式降解DBT。
实施例3FSD-2菌株生长细胞降解DBT挑取FMAD琼脂斜面培养的FSD-2菌株，接种到50ml FMAD液体培养基中。FMAD液体培养基的成分5g/l葡萄糖、2g/l NH4Cl、14.04g/l Na2HPO4、2.24g/l KH2PO4、00.2g/l MgCl2·6H2O，微量元素溶液母液和维生素溶液母液的加入量各为1.0ml/l，DBT终浓度0.5mmol/l，pH值7.0～7.2。微量元素母液含有0.5g/l FeCl2·4H2O、0.5g/l ZnCl2、0.5g/l MnCl2·4H2O、0.1g/l NaMoO4·2H2O、0.05g/l CuCl2、0.05g/l NaWO4·2H2O和120mmol/l HCl。维生素母液含有400mg/l泛酸钙、200mg/l肌醇、400mg/l烟酸、400mg/l盐酸吡哆醇、200mg/l对氨基甲苯和0.5mg/l VB12。30℃，150转/分培养，定期取样做Gibb’s分析。Gibb’s分析方法如下培养物于5000转/分离心，取上清0.5ml，加入3.5ml pH10的0.05M硼砂-0.2N NaOH缓冲液调pH8.0以上，加入10μl 1％的2，6-二氯醌-4-亚胺(Gibb’s试剂)，30℃反应20分钟，利用可见分光光度计于590nm测定吸光度。吸光度值代入到标准曲线(图8)即可得到培养物中HBP的浓度。本发明的红串红球菌FSD-2培养60h后，FMAD培养基中的0.5mmol/l DBT全部降解，见图9。
实施例4FSD-2菌株休止细胞对精制柴油深度脱硫挑取FMAD琼脂斜面培养的FSD-2菌株，接种到50ml FMAD液体培养基中。FMAD液体培养基的成分5g/l葡萄糖、2g/l NH4Cl、14.04g/l Na2HPO4、2.24g/l KH2PO4、00.2g/l MgCl2·6H2O，微量元素溶液母液和维生素溶液母液的加入量各为1.0ml/l，DBT终浓度0.2mmol/l，pH值7.0～7.2。微量元素母液含有0.5g/l FeCl2·4H2O、0.5g/l ZnCl2、0.5g/l MnCl2·4H2O、0.1g/l NaMoO4·2H2O、0.05g/l CuCl2、0.05g/l NaWO4·2H2O和120mmol/l HCl。维生素母液含有400mg/l泛酸钙、200mg/l肌醇、400mg/l烟酸、400mg/l盐酸吡哆醇、200mg/l对氨基甲苯和0.5mg/l VB12。30℃，150转/分培养24-48小时，按10％接种量转接同样的FMAD液体培养基，培养到对数期中后期，离心收集菌体，菌体用0.85％生理盐水洗涤两次，在用pH7.0的磷酸缓冲液重新悬浮到菌体浓度为12g(DCW)·l-1的悬浮液，加入1％(w/v)的葡萄糖作为能源，即制备成可用于柴油生物脱硫的休止细胞。按OWR为1∶5加入精制柴油，30℃，150转/分培育12小时，回收柴油，采用库仑仪分析柴油中的总硫含量，见表3。
表3 FSD-2休止细胞对精制柴油深度脱硫前后总硫含量
分别对1号，2号与3号精制柴油进行了GC-SCD分析，三个精制柴油样品深度脱硫前后的含硫化合物分布见图10。
实施例5FSD-2菌株休止细胞对加氢汽油深度脱硫挑取FMAD琼脂斜面培养的FSD-2菌株，接种到50ml FMAD液体培养基中。FMAD液体培养基的成分5g/l葡萄糖、2g/l NH4Cl、14.04g/l Na2HPO4、2.24g/l KH2PO4、00.2g/l MgCl2·6H2O，微量元素溶液母液和维生素溶液母液的加入量各为1.0ml/l，DBT终浓度0.2mmol/l，pH值7.0～7.2。微量元素母液含有0.5g/l FeCl2·4H2O、0.5g/l ZnCl2、0.5g/l MnCl2·4H2O、0.1g/l NaMoO4·2H2O、0.05g/l CuCl2、0.05g/l NaWO4·2H2O和120mmol/l HCl。维生素母液含有400mg/l泛酸钙、200mg/l肌醇、400mg/l烟酸、400mg/l盐酸吡哆醇、200mg/l对氨基甲苯和0.5mg/l VB12。30℃，150转/分培养24-48小时，按10％接种量转接同样的FMAD液体培养基，培养到对数期中后期，离心收集菌体，菌体用0.85％生理盐水洗涤两次，在用pH7.0的磷酸缓冲液重新悬浮到菌体浓度为4g(DCW)·l-1的悬浮液，加入1％(w/v)的葡萄糖作为能源，即制备成可用于生物脱硫的休止细胞。按OWR为1∶5加入加氢汽油，30℃，150转/分培育12小时，回收汽油，采用库仑仪分析汽油中的总硫含硫。总硫含量为435μg·ml-1的加氢汽油，经16h脱硫后，总硫含量降为218μg·ml-1，比脱硫活力为0.6879mg(S)·g-1(DCW)·h-1。
权利要求
1.一株用于生物脱硫的红串红球菌，红串红球菌Rhodococcus erythropolisFSD-2，2004年10月11日保藏于“中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心”，其保藏号为CGMCC NO.1209。
2.按照权利要求1所述的红串红球菌，其特征在于该菌株革兰氏染色为阳性；细胞形态多样性，多数为杆状；菌落颜色为橘红色。
3.按照权利要求1所述的红串红球菌，其特征在于该红串红球菌的16SrRNA基因序列为TGGCGGCGTGCTTAACACATGCAAGTCGAGCGGTAAGGCCTTTCGGGGTACACGAGCGGCGAACGGGTGAGTAACACGTGGGTGATCTGCCCTGCACTTCGGGATAAGCCTGGGAAACTGGGTCTAATACCGGATATGACCTCCTATCGCATGGTGGGTGGTGGAAAGATTTATCGGTGCAGGATGGGCCCGCGGCCTATCAGCTTGTTGGTGGGGTAATGGCCTACCAAGGCGACGACGGGTAGCCGACCTGAGAGGGTGACCGGCCACACTGGGACTGAGACACGGCCCAGACTCCTACGGGAGGCAGCAGTGGGGAATATTGCACAATGGGCGAAAGCCTGATGCAGCGACGCCGCGTGAGGGATGACGGCCTTCGGGTTGTAAACCTCTTTCAGCAGGGACGAAGCGCAAGTGACGGTACCTGCAGAAGAAGCACCGGCTAACTACGTGCCAGCAGCCGCGGTAATACGTAGGGTGCAAGCGTTGTCCGGAATTACTGGGCGTAAAGAGTTCGTAGGCGGTTTGTCGCGTCCTTTGTGAAAACCAGCAGCTCAACTGCTGGCTTGCAGGCGATACGGGCAGACTTGAGTACTGCAGGGGAGAACTGGAATTCCTGGGGTAACA。
4.按照权利要求1所述的红串红球菌，其特征在于所述的该红串红球菌对含硫有机物中的C-S键进行专一性降解，不破坏有机物中的C-C键。
5.按照权利要求1所述的红串红球菌，其特征在于所述的该红串红球菌在pH4～9均能良好生长，生长温度28～42℃，属于好氧菌。
6.权利要求1所述的红串红球菌在原油、柴油、汽油、煤炭进行脱硫处理中的应用。
7.权利要求1所述的红串红球菌生长细胞在含硫化合物脱硫中的应用。
8.权利要求1所述的红串红球菌休止细胞在含硫化合物脱硫中的应用。
9.权利要求1所述的红串红球菌固定化细胞在含硫化合物脱硫中的应用。
10.权利要求1所述的红串红球菌细胞抽提液在含硫化合物脱硫中的应用。
全文摘要
本发明涉及一株用于生物脱硫的红串红球菌及应用。该菌株为红串红球菌Rhodococcus erythropolis FSD－2，于2004年10月11日保藏于CGMCC，保藏号为CGMCC NO.1209。本发明的红串红球菌FSD－2是以山东孤岛油田采取的被石油污染的土壤为菌源，DBT作为选择压力筛选分离得到，生长周期短、脱硫活性高、能耐受硫酸根离子、具有良好的耐油性，催化活性稳定，能专一性断裂含有机硫的化合物中C－S键。本发明还涉及一个利用红串红球菌FSD－2或其细胞抽提液作为生物催化剂对含有有机硫化合物的矿质燃料进行生物脱硫的方法。
文档编号C12S1/02GK1854290SQ200510046350
公开日2006年11月1日 申请日期2005年4月27日 优先权日2005年4月27日
发明者张全, 唐似茵, 佟明友, 黎元生, 高会杰 申请人:中国石油化工股份有限公司, 中国石油化工股份有限公司抚顺石油化工研究院