转伴矿景天SpNramp5基因的重金属超富集转基因工程水稻的创制及应用的制作方法

本发明属于转基因植株和重金属污染治理领域，具体涉及转伴矿景天SpNramp5基因的重金属超富集转基因工程水稻的创制及应用。

背景技术：

重金属污染问题已成为一个世界性重大环境问题，重金属污染不仅威胁动植物、微生物生产发育，还通过食物链等威胁人类健康乃至生命。导致土壤污染的重金属主要有As、Cd、Co、Cr、Cu、Hg等，一般为几种重金属的复合污染。重金属矿区、经济高速发展区的重金属污染情况尤为严重，导致我国许多农产品由于重金属超标而被拒绝进入国际市场。

各国对重金属污染的生态效应和防治的研究越来越重视，已探索出多种治理技术。然而传统的重金属污染技术如土壤固化、玻璃化、淋滤化、洗土法、客土法、电化学法等物理化学方法，不仅成本高昂，难以大规模使用，而且常常导致土壤结构破坏、土壤生物活性下降和土壤肥力退化。因此，寻求一种廉价而永久有效，又可以维持土壤肥力的替换方法一直是国际上研究的难点和热点。

利用绿色植物清除污染物的策略，即植物修复技术具有成本低，环境友好和可再利用等特点，是一种非常有前景的环境污染原位治理途径。广义的植物修复指通过植物萃取、转化、固定、挥发、降解作用将土壤及水体中有机污染物、重金属等污染物清除的过程。通过种植具有重金属富集能力的植物，将植物收割并妥善处理(如灰化等)，以到达将重金属移出土壤环境，清除土壤重金属污染的目的。

基因是决定植物对土壤重金属吸收积累特性的最重要因素，重金属富集植物耐重金属的机制主要包括三个方面，第一，排斥机制，阻碍重金属的吸收或体内运输，吸收后又排出体外；第二，局域化机制，使重金属在植物的液泡、表皮毛、细胞壁等特定部位积累，从而与细胞中的其他组分隔离，达到解毒的效果；第三，络合机制，植物体内物质与重金属络合，包括与无机物络合形成硫化物，与小分子有机物如GSH、草酸、组氨酸和柠檬酸等络合后在液泡中聚集，与大分子的金属鏊合蛋白络合。但目前，野生重金属富集植株存在耐性有限、成长缓慢、生物量小、生长环境特殊、以及重金属重返等问题。基因工程技术是目前土壤重金属修复研究中最具前景的高新生物技术，因此，将植物的重金属超富集基因克隆并转移到生物量大、生产迅速的植物上以提高植物修复的能力，是解决土壤重金属污染问题的有效方法。

技术实现要素：

本发明的目的在于提供一种转伴矿景天SpNramp5基因的重金属超富集转基因工程水稻的创制及应用，解决野生重金属富集植株存在耐性有限、成长缓慢、生物量小、生长环境特殊、以及重金属重返等问题。

为实现上述目的，本发明提供一种转伴矿景天SpNramp5基因的重金属超富集转基因工程水稻的创制，具体指重金属超富集转基因工程水稻的构建方法，包括：

(1)重金属超富集基因的克隆，克隆伴矿景天中SpNramp5基因。伴矿景天(Sedum plumbizincicola)是在我国南方矿区发现的一种重金属超富集植物，因其对重金属具有超强的抗性和富集能力，是目前重金属污染土壤修复试验的一种主要的修复植物。SpNramp5蛋白对镉、锰等重金属离子具有很强的转运能力，研究结果表明，SpNramp5是伴矿景天对镉、锰等重金属吸附和积累的关键基因，对植株在含镉等重金属污染土壤环境中正常生长及解毒发挥重要的作用；

(2)超量表达双元载体的构建，以植物表达载体为基础，构建包含强启动子、筛选基因的转化载体，将步骤(1)克隆得到的SpNramp5基因通过同源重组方法插入所述转化载体，获得超量表达双元载体；

(3)重金属超富集转基因植株构建，将步骤(2)所得的超量表达双元载体通过根癌农杆菌转入水稻愈伤组织中，用筛选培养基进行筛选培养，获得的转基因抗性水稻愈伤组织经过诱导、分化、生根、转基因苗的锻炼和移栽，筛选重金属超富集转基因阳性植株；

其中，所述SpNramp5基因核苷酸序列如SEQ ID NO：1所示，所述水稻品种为日本晴。

较佳地，所述步骤(1)中，克隆伴矿景天中SpNramp5基因的方法为：

以伴矿景天的cDNA为模板，以如SEQ ID NO：2和SEQ ID NO：3所示的序列为引物进行PCR扩增，得到SpNramp5基因。

较佳地，所述植物表达载体为pCAMBIA1301载体，所述强启动子为Ubiquitin启动子，所述筛选基因为Bar筛选基因，所述转化载体还包括3×Flag标签。采用包含Ubiquitin启动子的转化载体，目的基因表达量高，遗传稳定性好，实际应用前景突出，且强化了目标基因的高转化，有望获得目标基因高效转化的转基因材料。另外，添加的3×Flag标签，可方便在蛋白水平进行转化效率及遗传稳定性分析，有望为应用实践筛选出具有持久稳定遗传的转基因株系。

较佳地，上述所述转化载体的构建方法包括以下步骤：

(a)在所述pCAMBIA1301载体多克隆位点Kpn I和Sac I之间添加所述3×Flag标签；

(b)采用PCR扩增反应克隆所述pCAMBIA3301载体上的所述Bar筛选基因；

(c)使用内切酶Xho I酶切步骤(a)中获得的载体，并将所述Bar筛选基因与酶切后的载体进行同源重组；

(d)采用Hind III和BamH I酶切pUN1301载体上的Ubiquitin启动子；

(e)使用内切酶Hind III和BamH I酶切步骤(c)中获得的重组载体，并将所述Ubiquitin启动子与酶切后的重组载体连接。

具体地，所述Ubiquitin启动子的核苷酸序列如SEQ ID NO：4所示，所述Bar筛选基因核苷酸序列如SEQ ID NO：5所示，所述3×Flag标签的核苷酸序列如SEQ ID NO：6所示。

较佳地，步骤(b)中，所述克隆pCAMBIA3301载体上的所述Bar筛选基因的PCR引物序列如SEQ ID NO：10和SEQ ID NO：11所示。

较佳地，所述筛选培养基包含草铵膦。

较佳地，所述植物表达载体为pCAMBIA1301载体，所述强启动子为2×CaMV35S启动子，所述筛选基因为HYG筛选基因。采用包含2×CaMV35S启动子的转化载体，目的基因表达量高，遗传稳定性好，实际应用前景突出，且强化了目标基因的高转化，有望获得目标基因高效转化的转基因材料。

较佳地，所述HYG筛选基因为所述pCAMBIA1301载体自带的筛选基因，所述转化载体的构建方法包括以下步骤：

(a)使用内切酶Hind III和Pst I酶切所述pCAMBIA1301载体；

(b)使用内切酶Hind III和BamH I酶切所述pCAMBIA1301载体，获得CaMV35S启动子；

(c)根据CaMV35S启动子的核苷酸序列设计含有内切酶Hind III和Pst I酶切位点的引物，并以CaMV35S启动子为模板进行PCR扩增反应，获得含有Hind III和Pst I酶切位点的CaMV35S启动子，并使用内切酶Hind III和Pst I对PCR获得的CaMV35S启动子进行酶切；

(d)将步骤(c)中获得的酶切产物进行回收，并与步骤(a)中获得的酶切载体连接。

具体地，所述2×CaMV35S启动子的核苷酸序列如SEQ ID NO：7所示，所述HYG筛选基因的核苷酸序列如SEQ ID NO：8所示。

较佳地，所述筛选培养基含有潮霉素。

较佳地，步骤(2)中，所述超量表达双元载体的构建包括以下步骤：

采用PCR扩增反应克隆SpNramp5基因，所述克隆SpNramp5基因的同源重组PCR引物包含BamH I酶切位点。

较佳地，所述克隆SpNramp5基因的同源重组PCR引物序列如SEQ ID NO：12和SEQ ID NO：13所示。

较佳地，所述根癌农杆菌为EHA105。

本发明还提供一种转伴矿景天SpNramp5基因的重金属超富集转基因工程水稻的创制中所得的重金属超富集转基因植株在土壤重金属修复中的应用。

与现有技术相比，本发明提供的转伴矿景天SpNramp5基因的重金属超富集转基因工程水稻的创制具有如下几方面的优点：第一、选择转化的目标基因功能明确，来自于野生重金属超富集植物伴矿景天，其编码蛋白对镉等重金属的转运吸收的效率高，因此有望获得可供实践使用的超富集转基因植株；第二、构建包含强启动子的转化载体，目的基因表达量高，遗传稳定性好，实际应用前景突出；第三、采用强启动子启动目标基因，强化了目标基因的高转化，因此有望获得目标基因高效转化的转基因材料；第四、受体材料品种选择特殊，本发明选用的水稻品种为日本晴水稻，遗传转化效果好，并且生物量大，适应性广，可在南北方广大地区使用，因此在土壤修复中的应用前景广阔。

附图说明

图1为SpNramp5基因电泳图；

图2为克隆SpNramp5基因菌落PCR电泳图；

图3为SpNramp5基因超量表达双元载体酶切验证图；

图4为pUb-SpNramp5-Bar超量表达双元载体图；

图5为p2×35S-SpNramp5-HYG超量表达双元载体图；

图6为SpNramp5转基因遗传转化阶段图；

图7为SpNramp5转基因阳性植株鉴定图；

图8为SpNramp5转基因植株重金属吸附水平鉴定图。

具体实施方式

为更好地说明本发明的目的、技术方案和有益效果，下面将结合附图和具体实施例对本发明作进一步说明。需说明的是，下述实施所述方法是对本发明做的进一步解释说明，不应当作为对本发明的限制。本发明的实施例中所用的材料、试剂若无特殊说明皆可从商业途径获得。

实施例1 SpNramp5基因克隆

将伴矿景天幼苗使用液氮研磨成粉末状，使用Trizol法提取其RNA，使用TOYOBO反转录试剂盒将其反转录成cDNA，根据NCBI提供的SpNramp5基因的cDNA序列使用Primer5设计其上下游引物，并合成引物，设计引物的核苷酸序列为：

上游序列：5′TTCCGGCCTTCGACTTTGACG 3′(如SEQ ID NO：2所示)；

下游序列：5′AACCGTTAACGCGCATTCGCACA 3′(如SEQ ID NO：3所示)。

待引物合成后，使用1×TE进行溶解，接着进行PCR扩增，以伴矿景天cDNA为模板，使用高保真酶GXL Premix对其进行扩增，将扩增产物使用1％的琼脂糖凝胶进行电泳，将目标条带切下，使用胶回收试剂盒进行回收，扩增产物电泳图如图1所示，箭头所指条带为目的条带。然后将回收产物与PMD19-T(simple)载体进行过夜连接，将连接产物使用热激法转化大肠杆菌感受态Top10，挑单克隆做菌液PCR，扩增结束后，将扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳，电泳图如图2所示，图中箭头所指1-12号菌液为阳性菌液。将阳性菌株进行测序，测序正确后将菌液接入LB-Amp培养基摇菌，提质粒备用。

实施例2 重金属超富集转基因植物的转化载体的构建

(1)包含Ubiquitin启动子、Bar筛选基因和3×Flag标签转化载体的构建基于实验室自有的pCAMBIA1301-3×Flag载体，通过以下步骤进行改造后获得：

①获取Bar筛选基因：pCAMBIA3301载体含有Bar筛选基因和CaMV35S启动子，在本实施例中，利用pCAMBIA3301载体自带的CaMV35S启动子启动Bar筛选基因，可增强目的基因的高效转化，CaMV35S启动子的核苷酸序列如SEQ ID NO：9所示。使用Xho I内切酶切割pCAMBIA3301载体，将酶切产物进行1％的琼脂糖凝胶进行电泳，回收小条带(608bp)。根据pCAMBIA1301载体序列以及Bar基因序列设计同源重组引物，设计引物的核苷酸序列为：

上游序列：5‘ACAAATCTATCTCTCTCGAGTCTACCATGAGCCCAGAACG 3’；

下游序列：5‘TTATTATGGAGAAACTCGAGTCAAATCTCGGTGACGGGCA 3’。

其中，上游序列如SEQ ID NO：10所示，下游序列如SEQ ID NO：11所示。随后以回收的片段为模板，用Bar同源重组引物进行PCR扩增，回收片段后备用。用Xho I内切酶切割pCAMBIA1301-3×Flag载体，将酶切产物进行1％的琼脂糖凝胶进行电泳，回收大条带。将之前回收到的小条带和大条带进行同源重组，将同源重组后的产物使用热激法转化大肠杆菌感受态Top10，挑单克隆做菌液PCR，然后将阳性菌株送测序公司测序，Bar基因的核苷酸序列如SEQ ID NO：5所示，测序正确后将菌液接入LB-Kan培养基摇菌，提质粒备用，中间载体pCAMBIA1301-3×Flag-Bar构建成功。

②获取Ubiquitin启动子：将含有pUN1301载体的菌株接入LB-Kan的培养基中，摇菌提取质粒。使用Hind III和BamH I酶切pUN1301，酶切产物进行1％的琼脂糖凝胶进行电泳，回收小条带(约2000bp)。小条带为Ubiquitin启动子。

③构建转化载体：将之前构建好的pCAMBIA1301-3×Flag-Bar使用Hind III和BamH I进行酶切，将酶切产物进行1％的琼脂糖凝胶进行电泳，回收大条带。将之前准备好的Ubiquitin启动子使用T4连接酶与之进行连接，将连接产物使用热激法转化大肠杆菌感受态Top10，挑取单克隆进行菌液PCR，将阳性菌株接入LB-Kan培养基摇菌，提质粒使用BamH I和Hind III再次进行酶切验证。将验证正确的菌进行摇菌提取质粒备用，pUb-3×Flag-Bar转化载体构建完成。

(2)包含2×CaMV35S启动子和HYG筛选基因的转化载体的构建基于实验室自有的pCAMBIA1301载体，通过以下步骤进行改造后获得：

①使用Hind III和BamH I酶切pCAMBIA1301将酶切产物进行1％的琼脂糖凝胶进行电泳，回收小条带(877bp)备用。

②根据CaMV35S启动子序列设计含Hind III和Pst I内切酶引物，以上一步回收的条带为模板，使用高保真酶进行PCR扩增，将PCR产物进行1％的琼脂糖凝胶进行电泳，回收条带。并使用Hind III和Pst I内切酶对回收产物酶切，并对酶切产物进行胶回收。

③使用Hind III和Pst I内切酶对pCAMBIA1301酶切，并对酶切产物进行胶回收。

④将②中的回收产物与③中的回收产物使用T4连接酶进行连接。将连接产物使用热激法转化大肠杆菌感受态Top10，挑取单克隆进行菌液PCR，将阳性菌株接入LB-Kan培养基摇菌，提质粒使用BamH I和Hind III再次进行酶切验证。将验证正确的菌进行摇菌提取质粒备用，p2×CaMV35S-HYG转化载体构建完成。2×CaMV35S启动子的核苷酸序列如SEQ ID NO：7所示，HYG筛选基因核苷酸序列如SEQ ID NO：8所示。

实施例3 重金属超富集转基因植株的SpNramp5基因超量表达双元载体

根据SpNramp5基因的ORF区两端设计同源重组引物，设计的同源重组引物的核苷酸序列为：

上游序列(如SEQ ID NO：12所示)：

5‘TTCTGCAGGTCGACTCTAGAGGATCCATGGCATCAACTGTCGGAAACGC3’；

下游序列(如SEQ ID NO：13所示)：

5‘CTTTGTAGTCGGTACCCGGGGATCCCTCTAAGACAGCTCTGCGTTGCGG3’。

以含有SpNramp5的19T载体为模板使用高保真酶进行PCR扩增。将PCR产物进行1％的琼脂糖凝胶进行电泳，回收目的条带，备用。分别将构建好的pUb-3×Flag-Bar转化载体和p2×CaMV35S-HYG转化载体使用BamH I单酶切，将酶切产物直接进行胶回收，备用。将同源重组片段与酶切后的载体进行同源重组。将同源重组产物使用热激法转化大肠杆菌感受态Top10，挑取单克隆进行菌液PCR，将阳性菌株接入LB-Kan培养基摇菌，提质粒使用BamH I进行单酶切验证，酶切验证图如图3所示，图中为pUb-SpNramp5-Bar超量表达转化载体的酶切验证图，其中箭头所指条带为目的条带，即质粒1-3为阳性质粒。将验证正确的质粒送测序公司测序。将测序正确的质粒通过电转法转入根癌农杆菌EHA105，将转化后的菌液涂布在Yep-Kan平板上，待其长出来单克隆菌落时，挑取单克隆摇菌，做菌液PCR，将阳性菌株保存备用。构建成功的SpNramp5基因超量表达双元载体，pUb-SpNramp5-Bar转化载体图谱如图4所示，p2×35S-SpNramp5-HYG转化载体图谱如图5所示。

实施例4 转基因植株遗传转化

选取饱满，均匀，色泽正常的日本晴水稻种子，使用乙醇，次氯酸钠消毒后，置于愈伤诱导培养基上，同时准备侵染所需农杆菌。5-7天后愈伤组织长出，使用之前准备好的EHA105根癌农杆菌进行侵染，侵染之后置于共培养培养基上3天，3天后使用含有头孢的无菌水对其进行清洗，之后将其置于含草铵膦(浓度为：5mg/L)或潮霉素(浓度为：35mg/L)的筛选培养基上培养两周，其中，pUb-SpNramp5-Bar转化载体的使用含草铵膦的筛选培养基，p2×35S-SpNramp5-HYG转化载体的使用含潮霉素的筛选培养基。为了降低转基因假阳性率，将新长出来的抗性愈伤组织移到新的筛选培养基上，直到颗粒状抗性愈伤长出为止。将抗性愈伤组织转移到RE-III培养基上，直至其长出幼苗。幼苗长出后转移到HF培养基上诱导生根；等苗长到瓶盖高度开盖加入无菌水练苗。待苗子长大后可以移栽到营养土中。SpNramp5转基因水稻遗传转化阶段图如图6所示，图中A为诱导愈伤组织图，B为获得抗性愈伤组织图，C为诱导愈伤组织生根图，D为获得的转基因植株图。

实施例5 阳性转基因植株鉴定及吸附水平测定

对转基因植株进行鉴定，获得转基因阳性植株，将获得的转基因阳性植株用重金属镉进行处理，检测其中重金属镉含量，并与对照处理进行比较，分析其吸附能力。阳性转基因植株鉴定图如图7所示，图中，WT为野生型植株，横坐标为转基因植株，纵坐标为目标基因表达水平，从图中可以看出，转基因植株F1、F2、F3、F4、F6、F7、F9、F10、F11的基因表达量高，是阳性转基因植株。随后根据阳性植株鉴定结果，挑选部分转化水平高且表达稳定的转基因株系进行重金属吸附水平鉴定，结果如图8所示。从图8可以看出，转基因阳性植株对重金属镉的积累量明显高于对照野生植株，其中，转基因阳性植株F3对重金属镉的积累量最高，其次为转基因植株F2。综合数据结果得出，本发明提供的转伴矿景天SpNramp5基因的重金属超富集转基因工程水稻的创制是解决重金土壤污染问题的有效方法。

最后所应当说明的是，以上实施例仅用以说明本发明的技术方案而非对本发明保护范围的限制，尽管参照较佳实施例对本发明作了详细说明，本领域的普通技术人员应当理解，可以对本发明的技术方案进行修改或者等同替换，而不脱离本发明技术方案的实质和范围。

序列表

<110> 广东开源环境科技有限公司

<120> 转伴矿景天SpNramp5基因的重金属超富集转基因工程水稻的创制及应用

<160> 13

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 1641

<212> DNA

<213> 伴矿景天(Sedum plumbizincicola)

<400> 1

atggcatcaa ctgtcggaaa cgccggtggt ggtggttgac ggcagcagtt tatggttggt 60

tcaggaaacg gaagcatatc aaatgctcct ttgattgaag agtctggtga tgaagttaat 120

cagattgttg tacctgataa gacgagttgg aagaactttt ttgcatacct tggtcctggt 180

tttcttgttt caattgcata tattgacccc ggaaactttg agacggattt gcaggccgga 240

gctcagtaca aatatgagtt attgtggatc atattggtgg cctcgtgtgc tgcgcttgtt 300

atacagtctt tggcagccaa cctgggtgtt gtgacaggga agcatctggc ggaacactgt 360

aggaatgagt attctaaggt tcctaacttt attttgtggg ttcttgcgga aattgctgta 420

gttgcgtgtg acatacctga agtgatcggg actgcctttg cattgaacat gctgttccat 480

attccagtct ggtgtggggt ccttttgact gggctcagta cattggttct tcttgcacta 540

cagcagtatg gggtaaggaa attagagtta ttgattgcat tcttggtgtt cactatagca 600

gcagcatttc tagcagagct tggttatgca aatcctgtac cttctgaagt tctaagtggc 660

ttatttgttc ctaaactaaa aggaaatggt gctactggac ttgccatttc acttttcggt 720

gcaatggtca tgccgcataa cttattcttg cactctgctc tggtgctctc aaggaaagta 780

cctagatcag ctcgaggcat aaaagaggcg tgcagattct atatgatgga aagtggattt 840

gctctcatgg tggcgtttct catcaatgta tctgttatat cagtcagtgg tgctgtgtgc 900

agttcatcaa ccttgagtga agaagataaa ttgagttgca gcgacttgga tttgaacaag 960

gcgtcatttt tgttacgaaa tgtcctgggc aaatggagtt caaagctttt cggcatagct 1020

ttgcttgcat ctgggcaaag ttcaaccata gctggaacat atgcagggca gtatgtaatg 1080

cagggatttc taaatctacg cttagaacca tggattcgaa actttctgac aagatgtttg 1140

gcgattgtgc caagtctgat tgttgctctc atcggtggct cagcaggtgc tggacagttg 1200

attatcattg cttcgataat tttatccttc gagcttccgt ttgctctcat cccccttctt 1260

aagttcacaa gttgcaacac aaagatgggt tcacatgcca attccacagc gatatcagtg 1320

attacatgga tcatcggctc tctgatcatg tcaatcaaca tgtactacct tgcatcaagc 1380

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ctgggctttt ccgggatggc aatctacgtc gctggagtag catacctagt aatcaggaaa 1500

aacaagaaac caacgcatct tttggcattt acaacatcag aaactcagga ggctggcgtg 1560

gttgatacat gtgtaacatc tcttcctaga gaagatattg tcgacatgca attgccgcaa 1620

cgcagagctg tcttagagta g 1641

<210> 2

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 2

ttccggcctt cgactttgac g 21

<210> 3

<211> 23

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 3

aaccgttaac gcgcattcgc aca 23

<210> 4

<211> 2011

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 4

gcatgcctgc agtgcagcgt gacccggtcg tgcccctctc tagagataat gagcattgca 60

tgtctaagtt ataaaaaatt accacatatt ttttttgtca cacttgtttg aagtgcagtt 120

tatctatctt tatacatata tttaaacttt actctacgaa taatataatc tatagtacta 180

caataatatc agtgttttag agaatcatat aaatgaacag ttagacatgg tctaaaggac 240

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cttttttttt gcaaatagct tcacctatat aatacttcat ccattttatt agtacatcca 360

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tctgtatgtg tgtgccatac atattcatag ttacgaattg aagatgatgg atggaaatat 1500

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tttgttcgct tggttgtgat gatgtggtgt ggttgggcgg tcgttcattc gttctagatc 1620

ggagtagaat actgtttcaa actacctggt gtatttatta attttggaac tgtatgtgtg 1680

tgtcatacat cttcatagtt acgagtttaa gatggatgga aatatcgatc taggataggt 1740

atacatgttg atgtgggttt tactgatgca tatacatgat ggcatatgca gcatctattc 1800

atatgctcta accttgagta cctatctatt ataataaaca agtatgtttt ataattattt 1860

tgatcttgat atacttggat gatggcatat gcagcagcta tatgtggatt tttttagccc 1920

tgccttcata cgctatttat ttgcttggta ctgtttcttt tgtcgatgct caccctgttg 1980

tttggtgtta cttctgcagg tcgactctag a 2011

<210> 5

<211> 552

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 5

atgagcccag aacgacgccc ggccgacatc cgccgtgcca ccgaggcgga catgccggcg 60

gtctgcacca tcgtcaacca ctacatcgag acaagcacgg tcaacttccg taccgagccg 120

caggaaccgc aggagtggac ggacgacctc gtccgtctgc gggagcgcta tccctggctc 180

gtcgccgagg tggacggcga ggtcgccggc atcgcctacg cgggcccctg gaaggcacgc 240

aacgcctacg actggacggc cgagtcgacc gtgtacgtct ccccccgcca ccagcggacg 300

ggactgggct ccacgctcta cacccacctg ctgaagtccc tggaggcaca gggcttcaag 360

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<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

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