源于草酸青霉的4-4’异构化黑麦酮酸D在食管癌方面的应用的制作方法

本发明涉及一种源于草酸青霉的4-4’异构化黑麦酮酸d在食管癌方面的应用。

背景技术：

黑麦酮酸是一类由微生物次级代谢产生的多酚类有机化合物，自1952年黑麦酮酸a首次从真菌中发现至今，已经过去了半个多世纪。该类化合物发现至今，一共报道了9个，分别是黑麦酮酸a-i。除了黑麦酮酸i是4-2’连接，其余所有天然来源的黑麦酮酸均为2-2’连接，而4-4’连接非常罕见。本发明人在原有研究的基础上，通过对草酸青霉(penicilliumoxalicum)ibpt-6（已于2013年12月25日保藏在中国典型培养物保藏中心，地址：武汉武汉大学，保藏编号是：cctccno：m2013714）的发酵产物粗提取物的活性成分进行研究，获得一种异构化为罕见的4-4’连接的黑麦酮酸类化合物，其具有抗人食管癌活性，而目前尚未见该化合物对人食管癌细胞的增殖抑制活性的报道，市场上也尚未见有与此相关的药物。

技术实现要素：

本发明的目的在于提供一种源于草酸青霉的4-4’异构化黑麦酮酸d在食管癌方面的应用。该化合物具有抑制食管癌细胞增殖作用及抗人食管癌活性，可用于制备抗食管癌的药物。

为实现上述目的，本发明采用如下技术方案：

一种源于草酸青霉的4-4’异构化黑麦酮酸d，其结构式为：

。

该化合物的制备方法，是通过发酵培养草酸青霉(penicilliumoxalicum)ibpt-6，获取发酵物，然后从发酵物中分离纯化获得。其具体步骤如下：

1.发酵生产

培养微生物的常规方法，取草酸青霉(penicilliumoxalicum)ibpt-6接种到pda固体斜面培养基上，28℃培养箱中培养2-3天，然后接种到培养液中，28℃静止培养30天后获得菌丝体和发酵液；所述培养液组成为：每升水含甘露醇20.0g、酵母膏3.0g、麦芽糖20.0g、味精10.0g、葡萄糖10.0g、kh2po40.5g、mgso4·7h2o0.3g、nacl15.0g；

2.浸膏的获得

用纱布将菌丝体和发酵液分离；菌丝体用丙酮溶液（含20%~30%水）连续超声破壁3次，过滤去除残渣，得到菌丝体的含丙酮和水的粗提物；减压浓缩去除丙酮，得到粗体物的水溶液，再以体积比1:2加入乙酸乙酯萃取3次，得乙酸乙酯粗提液，减压浓缩至近干，得菌丝体浸膏。

3.化合物的分离精制

菌丝体浸膏通过100-200目硅胶拌样，以石油醚-二氯甲烷-甲醇为梯度洗脱液进行减压硅胶色谱柱层析；经过简单的薄层色谱分析，合并，分离成组分a-e；组分c（二氯甲烷洗脱物）再以二氯甲烷:甲醇=1:2为洗脱剂进行凝胶柱层析（sephadexlh-20），经过薄层色谱分析、合并后得到四个亚组分c-1~c-4；亚组分c-3通过半制备液相色谱（1010型ods-a，10×250mm，5μm；分离流速为5ml/min，流动相为含0.1%tfa的55%乙腈），得到所示化合物（tr18.5min）。

所述草酸青霉(penicilliumoxalicum)ibpt-6，已于2013年12月25日保藏在中国典型培养物保藏中心，地址：武汉武汉大学，保藏编号是：cctccno：m2013714。

本发明还保护了所述化合物在制备抑制人食管癌细胞增殖药物中的用途，及该化合物在制备抗人食管癌药物中的用途。

本发明的显著优点：本发明所得黑麦酮酸化合物具有显著的抑制人食管癌细胞增殖活性，目前尚未见该化合物对人食管癌细胞增殖抑制活性的报道，因此市场上也尚未见有与此相关的药物。

附图说明

图1为本发明所得4-4’异构化黑麦酮酸d的主要cosy、hmbc和noe信号。

具体实施方式

为了使本发明所述的内容更加便于理解，下面结合具体实施方式对本发明所述的技术方案做进一步的说明，但是本发明不仅限于此。

在如下的实施例中所指的化合物为4-4’异构化黑麦酮酸d，其化学结构式为：

。

实施例1该化合物的发酵生产及分离精制

1.发酵生产

生产菌的发酵培养：按培养微生物的常规方法，取草酸青霉(penicilliumoxalicum)ibpt-6（已于2013年12月25日保藏在中国典型培养物保藏中心，地址：武汉武汉大学，保藏编号是：cctccno：m2013714）适量，接种到pda固体斜面培养基上在28℃培养箱中培养2-3天；然后接种到装有400ml培养液[培养液组成(克/升)：甘露醇20.0，酵母膏3.0，麦芽糖20.0，味精10.0，葡萄糖10.0，kh2po40.5，mgso4·7h2o0.3，nacl15.0]的1000ml锥形瓶中，28℃静止培养30天后获得菌丝体和发酵液。

2.浸膏的获得

用纱布将菌丝体和发酵液分离；菌丝体用丙酮溶液（含20%~30%水）连续超声破壁3次，过滤去除残渣，得到菌丝体的含丙酮和水的粗提物；减压浓缩去除丙酮，得到粗体物的水溶液，再以体积比1:2加入乙酸乙酯萃取3次，得乙酸乙酯粗提液，减压浓缩至近干，得菌丝体浸膏36.5g。

3.化合物的分离精制

菌丝体浸膏通过100-200目硅胶拌样，以石油醚-二氯甲烷-甲醇为梯度洗脱液进行减压硅胶色谱柱层析；经过简单的薄层色谱分析，合并，分离成组分a-e。组分c（12.7g，二氯甲烷洗脱物）再以二氯甲烷:甲醇=1:2为洗脱剂进行凝胶柱层析（sephadexlh-20），经过薄层色谱分析、合并后得到四个亚组分c-1~c-4。亚组分c-3（4.9g）通过半制备液相色谱（1010型ods-a，10×250mm，5μm；分离流速为5ml/min，流动相为含0.1%tfa的55%乙腈），得到所示化合物（1.1g，tr18.5min）。

化合物常温下为黄色粉末，高分辨电喷雾质谱hresi-ms在m/z：661.1531处给出分子离子峰[m+na]⁺（calcdforc32h30nao14,661.1533）；提示分子量为638，结合波谱信息推测分子式为c32h30o14。¹h和¹³c-nmr数据见表1，主要的cosy，hmbc和noe信号见图1。

表1化合物的¹h和¹³c-nmr数据(500mhz¹hand126mhz¹³c,indmso-d6)

实施例2体外抗肿瘤活性的测试

1实验样品及实验方法

1）被测样品溶液的配制：精密称取适量实施例1制备的化合物，用dmso配制成所需浓度的溶液，供测活性。

2）细胞液的配制：从-80℃超低温冰箱或者液氮中取出冻存的细胞株，在37℃水浴锅中迅速溶化，1000rpm离心5min，超净台中吸去冻存液，加入1ml培养基吹打后吸入培养瓶中，加入10毫升新鲜dmem或rpmi1640培养基，轻轻摇动使细胞在培养基中均匀悬浮，置37℃、5%co2的培养箱中培养。当细胞长满需要传代时，先弃去瓶内的旧培养基，再用pbs冲洗2遍，加入300μl胰酶（确保胰酶能覆盖瓶底），在37°c培养箱中消化至细胞变圆即将脱落时，加入含10%胎牛血清的培养基终止消化，吹打混匀后分至2-3个新的培养瓶中，补充培养基使细胞在培养箱中继续生长。

3）细胞增殖抑制活性测试（wst-1法）：

抗肿瘤细胞活性评价采用wst-1试剂盒检测法，取对数生长期的肿瘤细胞消化后制成细胞浓度为3×10⁴/ml的单细胞悬液，将细胞悬液混匀后取100μl接种于96孔板中，为确保每孔的细胞数目一致，每加5个复孔，就将细胞悬液混匀一次。然后置于37℃、5%co2培养箱内培养过夜。吸去上清液，用培养基将药物稀释成不同的浓度加到相应的96孔板内，对照组加入含有相同量dmso的培养基。培养72h后，加入wst-1溶液37℃孵育2-4h后，轻轻振荡混匀，用酶标仪测定其在450nm吸光值。取5孔平均od值，按照公式：细胞增殖抑制率=（od对照组-od空白组）/（od实验组-od空白组）×100%计算每个浓度的药物对肿瘤细胞的增殖抑制率，并采用graphpadprism5.0软件计算出半数抑制率ic50。

2.实验结果

细胞增殖抑制活性测试结果结果见表2。

表2化合物对人食管癌细胞增殖的抑制活性

3.结论

该化合物对人食管癌细胞具有较好的抗肿瘤活性，可用于制备食管癌细胞增殖抑制药物或抗肿瘤药物，用于食管癌的研究。

以上所述仅为本发明的较佳实施例，凡依本发明申请专利范围所做的均等变化与修饰，皆应属本发明的涵盖范围。