雄性育性的保持方法及其应用与流程

文档序号：11767641阅读：935来源：国知局

本发明属于植物生物技术领域，具体涉及植物隐性核雄性不育基因的克隆，及其雄性不育系的繁殖方法和在杂交育种中的应用，更具体地涉及一个小麦隐性核雄性不育基因及其启动子的克隆，及其在杂交育种中的应用。

技术背景

杂种优势是生物界的普遍现象，杂交种育种是选育新品种的主要途径，是近代育种工作最重要方法。与水稻、玉米、高粱等相比，小麦杂种优势利用的研究相对滞后，近十年来其平均产量的增长也趋于停滞、甚至出现连续多年下滑的局面。小麦是自花授粉作物，小麦杂种优势利用的核心问题是高效生产小麦杂交种的技术体系，国内外大量科学家为此已做出巨大的努力，并取得一系列重要成果。综合近50年来的研究进展，小麦杂种优势利用研究主要集中于：核质互作雄性不育的利用(“三系法”)、化学杀雄技术的利用(“化杀法”)和光温敏核雄性不育的利用(“两系法”)。三系法由于不育系难以繁殖、恢复源较窄、细胞质副效应等原因，未能在生产上大面积应用。化杀法避开了恢复与保持间的相互关系，曾被认为是一种很有希望的小麦杂交制种新技术，但由于其在制种过程中稳定性差、制种成本高及环境污染等多方面原因，在实际生产上也难以推广利用。基于光温敏的两系法虽然具有制种成本低、恢复源广泛，较易获得优势组合等优点，但也面临着两大关键问题——环境因素的不稳定性对不育系育性的影响和利用光温敏特性所选育的小麦不育系十分有限。

隐性核雄性不育突变体用于作物杂种优势利用，其不育性具有易被恢复而不易被保持的特性。与细胞质雄性不育杂交小麦体系相比，隐性核雄性不育突变体用于杂交小麦开发具有以下优点：1)不存在外源细胞质的负面影响，杂种f1优势强；2)父本系对杂种f1的育性恢复度高；3)不育系、保持系、父本系的育种亲本材料选择不受特定恢/保关系的限制，选材范围极广、种质资源利用率高，有利于选育高配合力的杂交种。但是，按照常规方法无法实现纯合核不育系种子的大量有效生产。因此，针对小麦杂种优势利用的现状，建立高效小麦雄性不育繁育新体系，是杂交小麦获得成功应用的最关键因素之一。

小麦显性核雄性不育系由于其自身的遗传特点，既找不到完全的恢复系，也找不到完全的保持系，比如1972年在我国发现的太谷核不育系(即ms2)，因此只适用于常规育种轮回选择和回交育种手段，不能用作杂交小麦育种的亲本。而隐性核雄性不育材料与任何正常材料杂交，f1代均可育，任何育性正常的材料都是其恢复系，只要解决核不育性的标识和有效保持的问题，就能应用于新一代小麦杂交育种技术。

小麦基因组巨大(17gb)，约是人类的5倍，水稻的40倍，拟南芥的100倍；组成极其复杂，由a、b、d三个具有部分同源关系的染色体组组成，每个染色体组由7对染色体构成，共有21对染色体，是典型的异源六倍体(zhangzb,etal.,2002)，并且约75％是简单重复序列(rachelb,etal.,2012；iwgsc,2014)。近年来，虽然小麦及其近缘种的基因组测序工作取得了很大进展，但截至目前，仍然没有完整的参考基因组序列公布(vogeljp,etal.,2010；theinternationalbarleygenomesequencingconsortium,2012；rachelb,etal.,2012；linghq,etal.,2013；jiaj,etal.,2013；iwgsc,2014)。如此复杂的基因组使得小麦功能基因的研究工作异常困难，目前为止国际范围内小麦突变体成功克隆基因的例子只有寥寥几个。

本发明通过流式细胞术和高通量测序的方法，成功克隆了育性恢复基因frg1，该基因可以完全恢复兰州核雄性不育突变体或其等位突变体的雄性育性，为构建新型小麦杂交育种技术体系奠定了基础。同时，为解决小麦现有的“三系”和两系”杂交技术所存在不育系育性不稳定、杂交品种资源受局限、制种技术复杂、制种成本高等技术瓶颈问题，提供了更多的可能性。本发明所提供的基因及不育系的繁殖和保持方法，对小麦杂交育种工作具有重要的意义和应用价值。

技术实现要素：

本文提到的所有参考文献都通过引用并入本文。

除非有相反指明，本文所用的所有技术和科学术语都具有与本发明所属领域普通技术人员通常所理解的相同的含义。除非有相反指明，本文所使用的或提到的技术是本领域普通技术人员公知的标准技术。材料、方法和例子仅作阐述用，而非加以限制。

本发明提供了一个育性恢复基因frg1(fertilityrestorationgene1)，所述育性恢复基因的核苷酸序列选自下列组的序列之一：

(a)如seqidno：2、5、6、8、9、11、12、14、15、17、18、20、21、23、24、

26、27或35所示的核苷酸序列；

(b)其编码氨基酸序列如seqidno：4、7、10、13、16、19、22、25或28所示的核苷酸序列；

(c)在严谨条件下能够与(a)或(b)中所述序列的dna杂交的dna序列；或

(d)与(a)-(c)所述序列有至少80％(优选为至少85％)序列相似性，且具有育性恢复功能的dna序列；或

(e)与(a)-(d)之任一所述序列互补的dna序列。

本领域技术人员应该知晓，本发明所述的育性恢复基因还包括与frg1基因的核苷酸序列或蛋白序列高度同源，并且具有同样的育性调控或恢复功能的同源基因序列。所述高度同源且具有育性调控功能的的同源基因包括在严谨条件下能够与具有seqidno：2、5、6、8、9、11、12、14、15、17、18、20、21、23、24、26、27或35所示序列的dna杂交的dna序列。或是其编码的氨基酸序列与seqidno:4、7、10、13、16、19、22、25或28所示的蛋白氨基酸序列具有85％以上相似性的核苷酸序列。本文中使用的“严谨条件”是公知的，包括诸如在含400mmnacl、40mmpipes(ph6.4)和1mmedta的杂交液中于53℃-60℃杂交12-16小时，然后在62℃-68℃下用含0.5×ssc、和0.1％sds的洗涤液洗涤15-60分钟。

上述同源基因还包括与seqidno：2、5、6、8、9、11、12、14、15、17、18、20、21、23、24、26、27或35所示序列的全长有至少80％、85％、90％、95％、98％、或99％序列相似性，且具有育性调控功能的dna序列，可以从任何植物中分离获得。其中，序列相似性的百分比可以通过公知的生物信息学算法来获得，包括myers和miller算法、needleman-wunsch全局比对法、smith-waterman局部比对法、pearson和lipman相似性搜索法、karlin和altschul的算法。这对于本领域技术人员来说是公知的。

本发明还提供了一种表达盒，所述表达盒含有本发明所公开的育性恢复基因的dna序列，所述育性恢复基因的核苷酸序列选自下列组的序列之一：

(a)如seqidno：2、5、6、8、9、11、12、14、15、17、18、20、21、23、24、26、27或35所示的核苷酸序列；

(b)其编码氨基酸序列如seqidno:4、7、10、13、16、19、22、25或28所示的核苷酸序列；

(c)在严谨条件下能够与(a)或(b)中所述序列的dna杂交的dna序列；或

(d)与(a)-(c)所述序列有至少80％(优选为至少85％)序列相似性，且具有育性恢复功能的dna序列；或

(e)与(a)-(d)之任一所述序列互补的dna序列。

具体地，上述表达盒中的育性恢复基因还可操作性的连有一个可驱动其表达的启动子，所述启动子包括但不限于组成型表达启动子、诱导型启动子、组织特异表达启动子、或时空特异表达启动子。更具体地，所述启动子是一个花粉特异表达启动子。优选地，所述花粉特异表达启动子的核苷酸序列如seqidno:1所示。

本发明上述表达盒，还进一步的包含一个花粉失活基因，所述花粉失活基因可以干扰植株中含有该花粉失活基因的雄性配子的功能或形成。所述花粉失活基因包括但不限于barnase基因、淀粉酶基因、dam甲基化酶等。更具体的，所述花粉失活基因是玉米a淀粉酶基因，优选其核苷酸序列如seqidno:29所示。

本发明上述表达盒，还进一步的包含一个筛选基因，所述筛选基因可以用于将含有该表达盒的植株、植物组织细胞或载体筛选出来。所述筛选基因包括但不限于抗生素抗性基因、或是抗除草剂基因、或是荧光蛋白基因等。具体地，所述筛选基因包括但不限于：氯霉素抗性基因、潮霉素抗性基因、链霉素抗性基因、奇霉素抗性基因、磺胺类抗性基因、草甘磷抗性基因、草丁膦抗性基因、bar基因、红色荧光基因dsred、mcherry基因、青色荧光蛋白基因、黄色荧光蛋白基因、荧光素酶基因、绿色荧光蛋白基因等。

本发明还公开了一种植物育性调控的方法，所述方法通过将育性恢复基因转入到frg1雄性不育突变体，使frg1雄性不育突变体的雄性育性恢复，其中所述的育性恢复基因的核苷酸序列选自下列组的序列之一：

(a)如seqidno：2、5、6、8、9、11、12、14、15、17、18、20、21、23、24、26、27或35所示的核苷酸序列；

(b)其编码氨基酸序列如seqidno:4、7、10、13、16、19、22、25或28所示的核苷酸序列；

(c)在严谨条件下能够与(a)或(b)中所述序列的dna杂交的dna序列；或

(d)与(a)-(c)所述序列有至少80％(优选为至少85％)序列相似性，且具有育性恢复功能的dna序列；或

(e)与(a)-(d)之任一所述序列互补的dna序列。

本发明还提供了一种调控植物育性的方法，通过影响育性基因frg1的表达来调控植物的育性。包括但不限于通过突变frg1基因的方法，获得frg1雄性不育突变体材料；或是通过基因互补的方法，将frg1基因用于恢复由相应的frg1基因突变所导致的雄性不育，使雄性不育突变体恢复成可育。在本发明中，所述的突变包括在育性调控基因的核苷酸序列上进行取代、缺失或添加一个或多个核苷酸。获得突变的方法包括但不限于物理诱变、化学诱变或rnai、talen、crispr-cas9等基因编辑方法。

本发明还包括一种获得frg1雄性不育突变体的方法，所述方法通过突变植物内源的育性调控基因frg1，或突变与其高度同源的基因的核苷酸序列，使该植物体丧失雄性育性的过程。所述育性调控基因frg1的氨基酸序列如seqidno：4、7、10、13、16、19、22、25或28所示。所述育性调控基因frg1的核苷酸序列如seqidno：2、5、6、8、9、11、12、14、15、17、18、20、21、23、24、26、27或35所示。所述“突变”包括但不限于以下方法，如用物理或化学的方法所导致的基因突变，化学方法包括用ems等诱变剂处理所导致的诱变，所述突变还可以是点突变，也可以是dna缺失或插入突变，也可以是通过rnai等基因沉默手段或者通过基因定点突变的方法，所述基因定点突变的方法包括但不限于zfn定点突变方法、talen定点突变方法、和/或crispr/cas9等基因编辑方法。

本发明还提供了一种frg1突变体材料的应用方法，其特征在于所述突变材料是由核苷酸序列的突变所造成，含有该突变后的核苷酸序列的植株具有雄性不育的表型，其中所述核苷酸序列为frg1基因的核苷酸序列，优选如seqidno:2、5、6、8、9、11、12、14、15、17、18、20、21、23、24、26、27或35所示。所述突变体材料的应用，包括但不限于在杂交育种中的应用，更具体的是指将frg1突变体植株作为不育系母本，与恢复系杂交，生产杂交种子。

本发明还公开了一种雄性不育系的保持方法，所述方法以frg1雄性不育突变体为转化受体材料，将紧密连锁的3个目标基因转化至该不育突变体受体植株中。所述3个目标基因分别是育性恢复基因frg1、花粉失活基因和筛选标记基因。其中，育性恢复基因frg1可使不育的转化受体育性恢复，花粉失活基因可使含有转化的外源基因的花粉失活，即失去授精能力，筛选基因可以用于转基因种子或组织和非转基因种子或组织的分拣，分拣出的非转基因种子用作不育系生产杂交种，转基因种子用作保持系来源源不断地、稳定地生产不育系。

本发明中，在小麦植株中所述frg1雄性不育突变体是指兰州核雄性不育突变体或其等位突变体。本发明中frg1雄性不育突变体也可以称为frg1不育系或frg1雄性不育系，在小麦植株中，也可称为兰州核雄性不育系、兰州核不育、或兰州核雄性不育系的等位不育系等。

上述雄性不育系的保持方法中，所述的花粉失活基因包括但不限于barnase基因、淀粉酶基因、dam甲基化酶等。更具体的，所述花粉失活基因是玉米a淀粉酶基因zm-aa，优选其核苷酸序列如seqidno:29所示。所述花粉失活基因与偏好于雄性配子表达的启动子相连。更具体地，所述偏好于雄性配子表达的启动子包括但不限于pg47启动子、zm13启动子等。所述筛选基因可以用于将含有该表达盒的植株或载体筛选出来。所述筛选基因包括但不限于抗生素抗性基因、或是抗除草剂基因、或是荧光蛋白基因等。具体地，所述筛选基因包括但不限于：氯霉素抗性基因、潮霉素抗性基因、链霉素抗性基因、奇霉素抗性基因、磺胺类抗性基因、草甘磷抗性基因、草丁膦抗性基因、bar基因、红色荧光基因dsred、mcherry基因、青色荧光蛋白基因、黄色荧光蛋白基因、荧光素酶基因、绿色荧光蛋白基因等。

更具体地，本发明还公开了一种雄性不育系的繁殖方法，所述方法包括以下步骤：

(a)向frg1雄性不育系中转入下述载体，以获得含有下述载体的保持系，所述载体包含：育性恢复基因frg1，所述育性恢复基因frg1可以恢复frg1雄性不育系的雄性生育力；和花粉失活基因，所述花粉失活基因表达时，会干扰植株中含有该花粉失活基因的雄性配子的功能或形成，从而使得所述植株中产生的具有活性的雄性配子都是不含所述载体的；和筛选基因，所述筛选基因可以用于转基因种子或组织和非转基因种子或组织的分拣。

(b)将转入上述载体后形成的保持系植株自交，同时产生不含载体的frg1雄性不育系和含载体的保持系种子；或是将保持系植株的花粉赶到frg1雄性不育系植株上，使frg1雄性不育系授粉繁殖出frg1雄性不育系的种子。

上述雄性不育系的繁殖方法中，所述的花粉失活基因包括但不限于barnase基因、淀粉酶基因、dam甲基化酶等。更具体的，所述花粉失活基因是玉米a淀粉酶基因zm-aa，优选其核苷酸序列如seqidno:29所示。所述花粉失活基因与偏好于雄性配子表达的启动子相连。更具体地，所述偏好于雄性配子表达的启动子包括但不限于pg47启动子、zm13启动子等。所述筛选基因可以用于将含有该表达盒的植株或载体筛选出来。所述筛选基因包括但不限于抗生素抗性基因、或是抗除草剂基因、或是荧光蛋白基因等。具体地，所述筛选基因包括但不限于：氯霉素抗性基因、潮霉素抗性基因、链霉素抗性基因、奇霉素抗性基因、磺胺类抗性基因、草甘磷抗性基因、草丁膦抗性基因、bar基因、红色荧光基因dsred、mcherry基因、青色荧光蛋白基因、黄色荧光蛋白基因、荧光素酶基因、绿色荧光蛋白基因等。

本发明还公开了一种保持系的生产方法，所述方法包括以下步骤:

(a)向frg1雄性不育系中转入下述载体，即获得了frg1雄性不育系的保持系，所述载体包含：育性恢复基因frg1，所述育性恢复基因frg1可以恢复frg1雄性不育系的雄性生育力；和花粉失活基因，所述花粉失活基因表达时，会干扰植株中含有该花粉失活基因的雄性配子的功能或形成，从而使得所述植株中产生的可育雄性配子都是不含所述载体的；和筛选基因，所述筛选基因可以用于转基因种子和非转基因种子的分拣。

上述保持系的生产方法中，所述的花粉失活基因包括但不限于barnase基因、淀粉酶基因、dam甲基化酶等。更具体的，所述花粉失活基因是玉米a淀粉酶基因zm-aa，优选其核苷酸序列如seqidno:29所示。所述花粉失活基因与偏好于雄性配子表达的启动子相连。更具体地，所述偏好于雄性配子表达的启动子包括但不限于pg47启动子、zm13启动子等。所述筛选基因可以用于将含有该表达盒的植株或载体筛选出来。所述筛选基因包括但不限于抗生素抗性基因、或是抗除草剂基因、或是荧光蛋白基因等。具体地，所述筛选基因包括但不限于：氯霉素抗性基因、潮霉素抗性基因、链霉素抗性基因、奇霉素抗性基因、磺胺类抗性基因、草甘磷抗性基因、草丁膦抗性基因、bar基因、红色荧光基因dsred、mcherry基因、青色荧光蛋白基因、黄色荧光蛋白基因、荧光素酶基因、绿色荧光蛋白基因等。

本发明还公开了一种保持系的繁殖方法，所述方法包括以下步骤：

(b)将转入上述载体后形成的保持系植株自交，即按1:1的比例繁殖获得了不含载体的frg1雄性不育系种子和含载体的保持系种子。

本发明还公开了一种种子的生产方法，所述方法包括：

(a)向frg1雄性不育系中引入下述载体，获得frg1雄性不育系的保持系，所述载体包含：育性恢复基因frg1，所述育性恢复基因frg1可以恢复frg1雄性不育系的雄性生育力；和花粉失活基因，所述花粉失活基因表达时，会干扰植株中含有该花粉失活基因的雄性配子的功能或形成，从而使得所述植株中产生的可育雄性配子都是不含所述载体的。

(b)将转入上述载体后的保持系植株自交；和

(c)自交后即获得含有所述载体的保持系种子和不含载体的frg1雄性不育系。

本发明上述的雄性不育系的繁殖或保持方法、保持系的生产方法或繁殖方法、种子的生产方法等中，其中步骤(a)也可以是向普通的植株中引入含有育性恢复基因frg1、花粉失活基因和筛选基因的载体，获得含有所述载体的转基因植株后，再与frg1雄性不育系杂交，经过定向选育，获得背景为frg1雄性不育系、并且含有所述载体的保持系植株。

本发明上述的雄性不育系的繁殖方法或保持方法、保持系的生产方法或繁殖方法、种子的生产方法等中，其中所述的育性恢复基因的核苷酸序列选自下列组的序列之一：

(a)如seqidno：2、5、6、8、9、11、12、14、15、17、18、20、21、23、24、26、27或35所示的核苷酸序列；

(b)其编码氨基酸序列如seqidno:4、7、10、13、16、19、22、25或28所示的核苷酸序列；

(c)在严谨条件下能够与(a)或(b)中所述序列的dna杂交的dna序列；或

(d)与(a)-(c)所述序列有至少80％(优选为至少85％)序列相似性，且具有育性恢复功能的dna序列；或

(e)与(a)-(d)之任一所述序列互补的dna序列。

上述育性恢复基因frg1还可操作性的连有一个花粉特异表达的启动子，可以驱动frg1基因在植物花粉中的表达。所述花粉特异表达的启动子选自由ms26、np1、msp1、pair1、pair2、zep1、mell、pss1、tdr、udt1、gamyb4、ptc1、api5、wda1、cyp704b2、ms26、ms22、dpw、mads3、osc6、rip1、csa、aid1、5126或ms45等育性调控基因的启动子构成的组之一。更具体的，所述花粉特异表达启动子的核苷酸序列如seqidno:1所示。上述育性恢复基因frg1还可操作性的连有一个终止子，所述终止子可以是已经公开的任一个基因的终止子，具体地，其中一个终止子的核苷酸序列如seqidno:3所示。

本发明上述的雄性不育系的繁殖或保持方法、保持系的生产方法或繁殖方法、种子的生产方法等中，所述的花粉失活基因包括但不限于barnase基因、淀粉酶基因、dam甲基化酶等。更具体的，所述花粉失活基因是玉米a淀粉酶基因zm-aa，优选其核苷酸序列如seqidno:29所示。所述花粉失活基因与偏好于雄性配子表达的启动子相连。更具体地，所述偏好于雄性配子表达的启动子包括但不限于pg47启动子、zm13启动子等。

本发明上述的雄性不育系的繁殖或保持方法、保持系的生产方法或繁殖方法、种子的生产方法等中，其中所述的筛选基因包括但不限于抗生素抗性基因、除草剂抗性基因或荧光基因。具体地，所述筛选基因包括但不限于：氯霉素抗性基因、潮霉素抗性基因、链霉素抗性基因、奇霉素抗性基因、磺胺类抗性基因、草甘磷抗性基因、草丁膦抗性基因、bar基因、红色荧光基因dsred、mcherry基因、青色荧光蛋白基因、黄色荧光蛋白基因、荧光素酶基因、绿色荧光蛋白基因等。

本发明还提供了一种花粉特异表达启动子，其核苷酸序列如seqidno:1所示。将seqidno:1与报告基因gus相连，构建载体转化水稻和小麦，检测分析转基因植株中的gus表达活性和表达模式，通过对转基因植株的根、茎、叶和花进行gus染色分析，结果发现本发明所提供的启动子驱动gus基因在植物花粉中表达。说明本发明所提供的seqidno:1是一个花粉特异性表达的启动子。

本发明所提供的植物花粉特异表达启动子，含有序列表中如seqidno:1所示的核苷酸序列，或包含与seqidno:1中所列核苷酸序列具有90％以上相似性的核苷酸序列，或包含来源于seqidno:1序列上的500个及500以上连续的核苷酸片段，并且可以驱动与该启动子操作性连接的核苷酸序列在植物花粉中的表达。含有上述序列的表达载体、转基因细胞系以及宿主菌等均属于本发明的保护范围。扩增本发明所公开的seqidno:1启动子的任一核苷酸片段的引物对也在本发明的保护范围之内。

本发明所述的“启动子”是指一种dna调控区域，其通常包含能指导rna聚合酶ii在特定编码序列的合适转录起始位点起始rna合成的tata盒。启动子还可包含其它识别序列，这些识别序列通常位于tata盒的上游或5’端，通常被称为上游启动子元件，起调控转录效率的作用。本领域技术人员应该知晓，虽然已经鉴定了针对本发明公开的启动子区域的核苷酸序列，但是分离和鉴定处于本发明鉴定的特定启动子区域的tata盒上游区域的其它调控元件也在本发明的范围内。因此，本文公开的启动子区域通常被进一步界定为包含上游调控元件，例如用于调控编码序列的组织表达性和时间表达功能的那些元件、增强子等。以相同的方式，可以鉴定、分离出使得能在目标组织(例如雄性组织)中进行表达的启动子元件，将其与其它核心启动子一起使用，以验证雄性组织优先的表达。核心启动子指起始转录所需的最小限度的序列，例如被称为tata盒的序列，这是编码蛋白质的基因的启动子通常都具有的。因此，可选地，frg1基因的上游启动子可与其自身的或来自其它来源的核心启动子关联使用。

核心启动子可以是任何一种已知的核心启动子，例如花椰菜花叶病毒35s或19s启动子(美国专利no.5,352,605)、泛素启动子(美国专利no.5,510,474)、in2核心启动子(美国专利no.5,364,780)或玄参花叶病毒启动子。

所述基因启动子的功能可以通过以下方法进行分析：将启动子序列与报告基因可操作性连接，形成可转化的载体，再将该载体转入植株中，在获得转基因后代中，通过观察报告基因在植物各个组织器官中的表达情况来确认其表达特性；或者将上述载体亚克隆进用于瞬时表达实验的表达载体，通过瞬时表达实验来检测启动子或其调控区的功能。

用来测试启动子或调控区域功能的适当表达载体的选择将取决于宿主和将该表达载体引入宿主的方法，这类方法是本领域普通技术人员所熟知的。对于真核生物，在载体中的区域包括控制转录起始和控制加工的区域。这些区域被可操作地连接到报告基因，所述报告基因包括yfp、uida、gus基因或荧光素酶。包含位于基因组片段中的推定调控区的表达载体可以被引入完整的组织，例如阶段性花粉，或引入愈伤组织，以进行功能验证。

此外，本发明的启动子还可与并非frg1基因的核苷酸序列相连，以表达其它异源核苷酸序列。本发明的启动子核苷酸序列及其片段和变体可与异源核苷酸序列一起组装在一个表达盒中，用于在目的植株中表达，更具体地，在该植株的雄性器官中表达。所述表达盒有合适的限制性酶切位点，用于插入所述启动子和异源核苷酸序列。这些表达盒可用于对任何植株进行遗传操作，以获得想要的相应表型。

本发明所公开的花粉特异表达启动子，可用于驱动下列异源核苷酸序列的表达，以使转化的植株获得雄性不育的表型，所述异源核苷酸序列可编码促使碳水化合物降解的酶或修饰酶、淀粉酶、脱支酶和果胶酶，更具体的如barnase基因、玉米a淀粉酶基因、生长素基因、rotb、细胞毒素基因、白喉毒素、dam甲基化酶，或是显性的雄性不育基因。

在某些实施方式中，本发明中所提到的可操作性地连接在本发明启动子下游的核苷酸序列，其中所述的“核苷酸序列”可以是操作性连接于本文所公开的启动子之后的结构基因、调节基因、结构基因的反义基因、调节基因的反义基因或者能够干扰内源基因表达的小rna。

本发明还提供了一个转录终止子序列，所述转录终止子的核苷酸序列如seqidno:3所示，具有终止基因转录表达的功能。

本发明还提供了一种表达盒、载体或工程菌株，所述表达盒、载体或工程菌株中包含了本发明所提供的花粉特异表达启动子seqidno:1。具体地，可以将本发明所提供的育性恢复基因frg1的核苷酸序列构建到本发明所提供的启动子seqidno:1的下游，从而驱动该育性基因在转化受体植株中的表达。

本发明的所提供的花粉特异表达启动子可用于外源基因在花粉中的特异性表达，从而避免该外源基因在植物其他组织中持续表达所带来的不利影响，还可以用于植物花粉生长发育相关基因的功能分析和鉴定；可用于雄性不育系和保持系的创建；并可应用于花粉败育实验中，从而避免由植物转基因漂移或花粉逃逸所带来的生物安全问题，对植物雄性不育系和保持系的创造具有重要意义。

本发明所提供的frg1基因的核苷酸序列和启动子序列或表达盒可被插入载体、质粒、酵母人工染色体、细菌人工染色体或其他适合转化进宿主细胞中的任何载体中。优选的宿主细胞是细菌细胞，尤其是用于克隆或储存多核苷酸、或用于转化植物细胞的细菌细胞，例如大肠杆菌、根瘤土壤杆菌和毛根土壤杆菌。当宿主细胞是植物细胞时，表达盒或载体可插入至被转化的植物细胞的基因组中。插入可以是定位的或随机的插入。

本发明所述的将核苷酸序列、载体或表达盒转入植株或引入植株或对植株进行转化，均指通过常规的转基因方法，将核苷酸序列、载体或表达盒转入到受体细胞或受体植株中。植物生物技术领域技术人员已知的任何转基因方法均可被用于将重组表达载体转化进植物细胞中，以产生本发明的转基因植物。转化方法可包括直接和间接的转化方法。合适的直接方法包括聚乙二醇诱导的dna摄入、脂质体介导的转化、使用基因枪导入、电穿孔、以及显微注射。所述转化方法也包括农杆菌介导的植物转化方法等。

与现有技术相比，本发明具有如下的有益效果：本发明提供了一种育性恢复基因frg1及其启动子，及将该基因用于frg1雄性不育系的繁殖和保持的方法。本发明所提供的育性恢复基因、核雄性不育系的育性保持和不育系的繁殖方法，对作物的杂交育种生产来说，具有重大的生产推广价值和应用价值，本发明提供的育性恢复基因还解决了小麦兰州核雄性不育系或其等位不育系的繁殖和保持问题，对于突破并改良现有的“三系”和“两系”杂交技术具有重要意义。

参考文献：

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附图说明

图1是eefrg1基因与小麦中同源基因的基因组dna序列比对。

图2是eefrg1基因与小麦中同源基因的cds序列比对。

图3是eefrg1基因与小麦中同源基因的蛋白序列比对。

图4是eefrg1基因与近缘种中同源基因的基因组dna序列比对。

图5是eefrg1基因与近缘种中同源基因的cds序列比对。

图6是eefrg1基因与近缘种中同源基因的蛋白序列比对。

具体实施方式

下面对本发明的实施例作详细说明，本实施例在以本发明技术方案为前提下进行实施，给出了详细的实施方式和具体的操作过程，但本发明的保护范围不限于下述的实施例。

实施例1、长穗偃麦草frg1基因的克隆

小麦兰州核雄性不育突变体是典型的单基因控制的隐性突变。4ags-ms双端体异附加系是在兰州核雄性不育突变体中附加了半条长穗偃麦草的4ag染色体(4ags)(周宽基等，1996)，附加的4ags染色体能够恢复突变体雄性不育的表型，表明长穗偃麦草4ags染色体中含有育性恢复基因fertilityrestorationgene1(frg1)。

4ags-ms双端体异附加系中4ags染色体的长度比小麦所有染色体都显著短，测量后估计其大小约为最长小麦染色体的1/4，大概250mb左右。利用流式细胞仪分离长穗偃麦草4ags染色体，采用二代和三代测序相结合的策略拼接4ags参考基因组。结合4ags-ms双端体异附加系单核期花药的转录组测序，获得了8个候选基因。

将8个候选基因的基因组dna序列构建到pahc20载体上，利用基因枪法，转化4ag-ms单体异附加系植株幼胚。对t0代转基因植株中，不带有4ag染色体的植株(即兰州核不育纯合突变背景)进行花粉育性观察，结果只有连有基因id为cuff.199的基因组dna序列的载体能够恢复兰州核不育突变体雄性不育的表型。因此，基因id为cuff.199所对应的基因为长穗偃麦草中的育性恢复基因(fertilityrestorationgene1，frg1)，其基因组dna序列如seqidno:2所示，cds序列如seqidno:35所示，蛋白序列如seqidno:4所示，启动子序列如seqidno:1所示，终止子序列如seqidno:3所示。

以4ags-ms双端体异附加系dna为模板，扩增frg1基因启动子2265bp，序列如seqidno:1所示，扩增产物通过in-fusion方法连入pahc20-gus载体，获得pahc20-pfrg1-gus表达载体。

利用基因枪法将pahc20-pfrg1-gus质粒转化小麦幼胚，获得16株转基因阳性植株。对转基因阳性植株的根、茎、叶和不同发育时期的花进行gus染色分析，发现frg1基因启动子能驱动gus在小麦花粉中特异表达，说明frg1基因启动子为花粉特异表达型启动子。

实施例2、eefrg1在小麦中的同源基因

利用eefrg1基因(seqidno:2)在iwgsc(internationalwheatgenomesequencingconsortium)数据库中进行比对，找到两个同源基因，命名为tafrg1-1和tafrg1-2，其基因组dna序列分别如seqidno:5和seqidno:8所示，根据eefrg1基因推定的cds序列分别如seqidno:6和seqidno:9所示，蛋白序列分别如seqidno:7和seqidno:10所示。

利用clustalomega，将tafrg1-1基因的基因组dna序列、cds序列和蛋白序列分别与eefrg1基因进行比对，结果如图1-3所示，tafrg1-1基因与eefrg1基因基因组dna序列一致性为88.5％，cds序列的一致性为95.0％，蛋白序列一致性为95.9％。

利用clustalomega，将tafrg1-2基因的基因组dna序列、cds序列和蛋白序列分别与eefrg1基因进行比对，结果如图1-3所示，tafrg1-2基因与eefrg1基因基因组dna序列一致性为88.9％，cds序列的一致性为95.2％，蛋白序列一致性为95.0％。

由于tafrg1-1基因和tafrg1-1基因与eefrg1基因蛋白序列同源性均达到95％以上，推测很可能具有与eefrg1基因类似的功能。为了证实这种推测，我们分别构建了pahc20-peefrg1-gtafrg1-1-teefrg1和pahc20-peefrg1-gtafrg1-2-teefrg1载体，用eefrg1基因的启动子分别驱动tafrg1-1基因和tafrg1-2基因表达。将pahc20-peefrg1-gtafrg1-1-teefrg1和pahc20-peefrg1-gtafrg1-2-teefrg1载体分别转化4ag-ms单体异附加系植株幼胚，分别获得22株和26株转基因阳性植株，通过pcr鉴定分别发现11株和12株转基因阳性植株不带有4ag染色体，但花粉均发育正常、表现为可育，表明tafrg1-1基因和tafrg1-2基因的核酸和蛋白序列的确具有与eefrg1基因类似的功能。

实施例3、eefrg1基因与乌拉尔图小麦、粗山羊草、高粱、玉米、粟中的同源基因的序列比对

将eefrg1基因的蛋白序列在ncbi等数据库中查找，获得了乌拉尔图小麦、粗山羊草、高粱、玉米、粟基因组中预测的同源蛋白，其中玉米中包含两个eefrg1的同源基因，分别命名为zmfrg1-1和zmfrg1-2。其中，在乌拉尔图小麦中该育性基因tufrg1的基因组dna序列如seqidno:11所示，cds序列如seqidno:12所示，蛋白序列如seqidno:13所示；在粗山羊草中该育性基因aetfrg1的基因组dna序列如seqidno:14所示，cds序列如seqidno:15所示，其蛋白序列如seqidno:16所示；在高粱中该育性基因sbfrg1的基因组dna序列如seqidno:17所示，cds序列如seqidno:18所示，其蛋白序列如seqidno:19所示；在玉米中存在两个tafrg1基因的同源基因，分别命名为zmfrg1-1和zmfrg1-2，zmfrg1-1的基因组dna序列如seqidno:20所示，cds序列如seqidno:21所示，其蛋白序列如seqidno:22所示,zmfrg1-2的基因组dna序列如seqidno:23所示，cds序列如seqidno:24所示，其蛋白序列如seqidno:25所示；在粟中该育性基因sifrg1的基因组dna序列如seqidno:26所示，cds序列如seqidno:27所示，其蛋白序列如seqidno:28所示。

将eefrg1基因的蛋白序列分别与这些同源基因的蛋白序列进行比对，结果显示来自不同植物的同源蛋白都具有非常相似的保守序列(图4-图6)。利用clustalomega进行序列比对，eefrg1基因的蛋白序列与乌拉尔图小麦、粗山羊草、高粱、粟基因组中预测的同源蛋白序列一致性分别为96.4％、95.5％、59.0％、60.9％、与玉米中两个同源蛋白的序列一致性分别为58.1％和50.8％。上述结果表明该蛋白在植物花的雄性器官发育过程中生物学功能保守，起着非常重要的作用。

实施例4、eefrg1及其同源基因在新一代小麦杂交育种技术中的应用

frg1及其同源基因可以用于新一代杂交育种技术，该技术的核心思想是：以frg1隐性核雄性不育突变体为转化受体材料，通过将紧密连锁的3个目标基因转化至不育突变体中，其中，育性恢复基因frg1可使转化受体育性恢复，花粉失活基因可使含有外源基因的花粉失活，即失去授精能力，种子标记基因可以用于转基因种子和非转基因种子的分拣，分拣出的非转基因种子即为不育系，而转基因种子用作保持系。通过保持系给不育系授粉杂交，可以在不育系上结实，由此繁殖不育系。而保持系通过自交可以源源不断地得以繁殖。由于该技术利用生物技术生产非转基因产品，解决了小麦等作物在杂交制种过程中面临的瓶颈问题，即三系法资源利用率低而两系法中不育系育性不稳定的问题。

根据以上原理，发明人首先分别对表达载体内的zmbt1-zmaa、frg1和mcherryw三个表达盒单独进行了小麦转化，并进一步对各个表达盒的功能进行了验证。结果表明各个表达盒单独转化小麦时，都能够工作良好，达到预期的设计效果。其中frg1表达盒中只要包含的是有功能的frg1基因即可，例如eefrg1,tafrg1-1,tafrg1-2,tufrg1,aetfrg1,sbfrg1,sifrg1,zmfrg1-1或zmfrg1-2等均可恢复frg1雄性不育突变体的育性。

进一步,发明人通过装配下述dna元件，构建了pahc20-frg1-aa-mcherryw载体：

1)以pahc20载体为基础；

2)frg1基因表达盒，有功能的frg1基因连接于eefrg1基因启动子(如seqidno:1)的下游、eefrg1基因终止子(如seqidno:3)的上游，frg1基因可以是eefrg1,tafrg1-1,tafrg1-2,tufrg1,aetfrg1,sbfrg1,sifrg1,zmfrg1-1或zmfrg1-2，序列如seqidno：2，seqidno：5，seqidno：8，seqidno：11，seqidno：14，seqidno：17，seqidno：20，seqidno：23，seqidno：26所示；

3)基因表达盒pg47：zmbt1-zmaa-in2-1，目标基因为zmaa，转运肽为zmbt1，zmbt1-zmaa(其核苷酸序列如seqidno：29所示)的开放读码框连接于启动子pg47(其核苷酸序列如seqidno：30所示)的下游、终止子in2-1(其核苷酸序列如seqidno：31所示)的上游。

4)基因表达盒camv35s增强子-ltp2：mcherryw-pinii，mcherryw基因(seqidno：32)的开放读码框连接于camv35s增强子-ltp2启动子(seqidno：33)和pinii终止子(seqidno：34)之间，重组成mcherryw的基因表达盒(camv35s增强子-ltp2：mcherryw-pinii)；

利用基因枪法将质粒pahc20-frg1-aa-mcherryw转化4ag-ms单体异附加系植株幼胚，经过筛选、分化、壮苗生根、pcr鉴定等过程，得到基因型为兰州核不育位点纯合突变、无长穗偃麦草4ag染色体、且转基因为单拷贝的转基因阳性植株。

对上述植株进行花粉活性检测，在非转基因植株中，不育花粉的比例小于2％，而转基因植株中不育花粉的比例为50％左右，表明本发明所提供的载体能够达到预期的花粉失活功能。

对植株所结t1代种子进行荧光分离比例调查，结果表明这些种子均显示1:1分离比，即携带外源基因的荧光种子和不携带外源基因的非荧光种子表现为1:1分离，表明本发明所提供的载体各元件作为整体表达良好，可以实现创制和繁殖不育系的目的。

sequencelisting

<110>未名兴旺系统作物设计前沿实验室（北京）有限公司

北京大学

<120>雄性育性的保持方法及其应用

<130>

<160>35

<170>patentinversion3.3

<210>1

<211>2265

<212>dna

<213>长穗偃麦草（elytrigiaelongata）

<400>1

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<213>小麦（triticumaestivuml）

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<211>223

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<213>小麦（triticumaestivuml）

<400>10

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leuleuproalaalaalaalaalapheglyglnglnproglyalapro

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65707580

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859095

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<213>乌拉尔图小麦（triticumurartu）

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<213>乌拉尔图小麦（triticumurartu）

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