粉100-50化9111水溶 液浸泡10-30min，移栽后特殊培养25-30天，将长出真根的苗和未长出真根的苗分开管理， 再培养60-80天后，得到再生植株。
[0014] 上述的大花序按的组培快繁方法中，所述的优良家系是指，从澳大利亚引种的种 源/家系，通过栽培试验、测定分析，选择出适合本地生长、生长量高、抗逆性强，已成功驯化 的家系/种群。
[0015] 上述步骤的大花序按的组培快繁方法中，所述的优良单株是指，经试验测定分析 后，确定的优良家系中树高、胸径、蓄积量等生长指标突出，木材材性、干形、抗病虫害能力 等指标优越的优势木个体。
[0016] 上述步骤(7)中的无菌芽诱导培养基为：改良MS+N6苄基腺嚷岭(6-BA)1.0mg/L+糞 乙酸0.2-0.4mg/L+维生素 C(Vc)2.0 mg/L+核黄素（维生素 B2)7.0 mg/L+薦糖30g/L+琼脂 3.75g/L，pH 5.8-6.0。
[0017] 上述步骤(8)中的继代增值培养基为:改良MS+N6苄基腺嚷岭(6-BA)0.3-0.5mg/L+ 糞乙酸0.1-0.15111邑/1+核黄素（维生素82)7.0 111邑几+维生素0 2.0111邑/1+薦糖30邑几+琼脂 3.75g/L，pH 5.8-6.0。
[0018] 上述步骤(9)中的生根培养基为：1/2改良MS+ABTIO. 6mg/L+IBA0. lmg/L+薦糖15g/ L+琼脂3.9g/L，pH δ.8-6.2。
[0019] 上述步骤（11 )中的发育不完全根是指，从苗茎切口长出的根状突起，长0.5-1.0cm，表面光滑，没有根毛，又称假根的根状组织。
[0020] 上述步骤（11)中的特殊培养是指，将发育不完全根的苗移栽后弱光培养，光照强 度lOOOLux，用微型喷头喷淋雾状水保湿，始终保持叶面湿润，栽培基质保持不干不溃状态， 不积水，小苗生长稳定后，叶面喷施低浓度大量元素和微量元素肥。
[0021] 本发明生根培养基中的ABT1能通过强化、调控植物内源激素的含量、重要酶的活 性，促进生物分子的合成，诱导植物不定根或不定芽的形态建成，调节植物代谢作用强度， 从而提高组培苗的成活率;IBA能够促进植物主根生长，提高发芽率，成活率。本发明其它的 培养基化合物可W从化学词典或农作物栽培的教科书检索到其名称和作用，本发明采用运 些化合物进行组合对大花序按最为适合，是经过多次试验筛选才最终确定的。
[0022] 本发明的有益效果为： 1、本发明采用大花序按优良家系的优良单株萌芽作为外殖体，组培快繁材料来源的遗 传信息是已知的，并经过栽培试验检测过的，优树的生长量和抗逆性是可靠的，所有培育的 目标明确，而非随机和盲目。
[0023] 2、本发明的组培快繁方法中，组培无菌芽获得方式是由芽器官(带潜伏芽的茎段） 离体诱导丛生芽，不经过愈伤组织途径，无菌芽诱导过程中没有经过脱分化过程，培育的组 培苗遗传性状稳定，能够完整保持母树的遗传特性，不易发生变异。
[0024] 3、本发明的大花序按的组培快繁方法操作难度不高、生产成本较低。针对难生根 树种大花序按的生根技术，采用瓶内促根和移植后促根两步成苗方法，对瓶内促根后长出 发育不全根者，通过移植后特殊培养获得再生植株，并获得成功，总的生根率高达72.8% W 上，从而解决了大花序按瓶内促根率不高的缺陷，最终打破制约大花序按无性系推广的瓶 颈，在技术上取得了突破。采用本发明的大花序按的组培快繁方法可W获得大量整齐一致， 遗传性状稳定的再生植株。
[0025] 4、本发明的大花序按的组培快繁方法试验结果稳定，重复性良好，组培再生植株 经初步造林试验，造林成活率95%W上，生长良好，苗木能够保持优树的优良遗传特性，适合 大面积种植，可W应用于大规模商品化育苗。另外，在此基础上，也可W进行大花序按的转 基因育种。
【附图说明】
[0026] 图1是大花序按优良家系中的优良单株(24年生）； 图2是大花序按优良家系中的优良单株伐倒后的萌芽； 图3是大花序按优树萌芽条作为外殖体，诱导萌生的无菌芽； 图4是大花序按无菌芽继代增殖苗； 图5是大花序按瓶内生根苗； 图6是大花序按组培瓶苗移栽； 图7是大花序按移栽苗特殊培养荫棚； 图8是大花序按组培成苗； 图9是大花序按造林情况。
【具体实施方式】
[0027] 下面对本发明的具体实例进行详细阐述，W使本发明的优点和特征能更易于被本 领域技术人员理解，从而对本发明的保护范围作出更为清楚明确的界定。
[002引 实施例1 一种大花序按的组培快繁方法，其步骤如下： (1) 在澳大利亚引种的家系试验林中，经测试对比，选择出适合本地生长的大花序按优 良家系； (2) 在大花序按优良家系中，通过测量胸径、树高、蓄积、连年生长量、木材材性W及干 形指标，综合对比后选择出优良单株； (3)将优良单株在离地面15cm高度处伐倒，促萌芽，当萌芽条长到12cm时，剪取萌芽条， 用水浸泡基部带回实验室备用； (4 )萌芽条修剪去叶片、叶柄，用自来水流水冲洗3 m i η，再用饱和洗衣粉溶液洗涂 lOmin，用纯净水清洗干净； 巧)在超净工作台上，将萌芽条剪去嫩梢段和基部老化部分，留半木质化茎段，切成长 2-3cm，保留有1-2个潜伏芽的切段做消毒材料； (6) 将待消毒材料置于高压灭菌处理过的无菌瓶中，用75%酒精溶液浸泡15s，无菌水清 洗3次，洗去残留酒精，再用0.1%HgCL2溶液浸泡并适当揽拌，7min后倒去化化2溶液至专用收 集罐中，用无菌水清洗材料5次； (7) 用綴子夹取清洗好的茎段，放置在灭菌的接种碟上，用灭菌过的滤纸吸干表面水 分，切去叶柄和茎段的两端，接种到无菌芽诱导培养基上，无菌芽诱导培养基为:改良MS+N 6 苄基腺嚷岭（6-BA)1.0mg/L+糞乙酸0.2mg/L+维生素 C 2.0 mg/L+核黄素7.0 mg/L+薦糖 30g/L+琼脂3.75g/L，pH 5.8-6.0;全暗培养8天后，在溫度26 ± 2°C，光照12h/d，光照强度 1500-20001UX条件下培养25天； (8) 外殖体萌芽后，侧芽和不定芽不断生长，萌芽15天后，选取没有污染的无菌芽，切割 后转入继代增殖培养基上，继代增值培养基为:改良MS+N 6苄基腺嚷岭(6-BA)0.3mg/L+糞乙 酸0.1111旨/1+核黄素7.0 111旨/1+维生素0 2.0111旨/1+薦糖30旨/1+琼脂3.75旨/1，抑5.8-6.0;在 溫度26 ± 2°C，光照强度2000-25001UX条件下，培养23天，W促进丛芽增殖和生长，在增殖培 养基上反复继代培养，无菌芽苗数量不断增多； (9) 当继代培养的芽苗长到2-3cm，并有3-4对叶片时，切取芽苗转入生根培养基上培 养，生根培养基为：1/2改良MS+ABT10.6mg/L+IBA0. lmg/L+薦糖15g/L+琼脂3.9g/L，pH 5.8-6.2;溫度28-30°C，光照强度1200-15001UX，培养8天，当切口冒出短根或根点，出根率达到 30-40%时，移瓶至溫度28-35°C，光照强度3000-50001UX的自然光下培养18天； (10) 将生根齐全，苗高3-4cm的生根瓶苗，洗去琼脂，移栽至用KMn化消毒过的黄屯、±和 赔石做基质的营养杯或羟基质育苗杯上，黄屯、上和赔石的比例为5:1，培养60天，得到再生 植株； (11) 将具有发育不完全根，苗高1.5-2.0cm的生根瓶苗，洗去琼脂，移栽到用KMn04消毒 过的黄屯、±+赔石+河沙按照4:1:1做基质的营养杯，移栽前用ABT1生根粉50化pm水溶液浸 泡lOmin，移栽后特