殊培养25天，将长出真根的苗和未长出真根的苗分开管理，再培养80天 后，长出真根的苗得到再生植株。
[0029] 所述的优良家系是指，从澳大利亚引种的种源/家系，通过栽培试验、测定分析，选 择出适合本地生长、生长量高、抗逆性强，已成功驯化的家系/种群。所述的优良单株是指， 经试验测定分析后，确定的优良家系中树高、胸径、蓄积量等生长指标突出，木材材性、干 形、抗病虫害能力等指标优越的优势木个体。
[0030] 上述步骤（11)中的发育不完全根是指，从苗茎切口长出的根状突起，长0.5-1.0cm，表面光滑，没有根毛，又称假根的根状组织;特殊培养是指，将发育不完全根的苗移 栽后弱光培养，光照强度lOOOLux，用微型喷头喷淋雾状水保湿，始终保持叶面湿润，栽培基 质保持不干不溃状态，不积水，小苗生长稳定后，叶面喷施低浓度大量元素和微量元素肥。 [0031 ] 实施例2 一种大花序按的组培快繁方法，其步骤如下： (1) 在澳大利亚引种的家系试验林中，经测试对比，选择出适合本地生长的大花序按优 良家系； (2) 在大花序按优良家系中，通过测量胸径、树高、蓄积、连年生长量、木材材性W及干 形指标，综合对比后选择出优良单株； (3) 将优良单株在离地面18cm高度处伐倒，促萌芽，当萌芽条长到15cm时，剪取萌芽条， 用水浸泡基部带回实验室备用； (4) 萌芽条修剪去叶片、叶柄，用自来水流水冲洗4min，再用饱和洗衣粉溶液洗涂 lOmin，用纯净水清洗干净； 巧)在超净工作台上，将萌芽条剪去嫩梢段和基部老化部分，留半木质化茎段，切成长 2-3cm，保留有1-2个潜伏芽的切段做消毒材料； (6) 将待消毒材料置于高压灭菌处理过的无菌瓶中，用75%酒精溶液浸泡16s，无菌水清 洗4次，洗去残留酒精，再用0.1%HgCL2溶液浸泡并适当揽拌，8min后倒去化化2溶液至专用收 集罐中，用无菌水清洗材料6次； (7) 用綴子夹取清洗好的茎段，放置在灭菌的接种碟上，用灭菌过的滤纸吸干表面水 分，切去叶柄和茎段的两端，接种到无菌芽诱导培养基上，无菌芽诱导培养基为:改良MS+N 6 苄基腺嚷岭（6-BA)1.0mg/L+糞乙酸0.3mg/L+维生素 C 2.0 mg/L+核黄素7.0 mg/L+薦糖 30g/L+琼脂3.75g/L，抑5.8-6.0;全暗培养10天后，在溫度26±2°C，光照12h/d，光照强度 1500-20001UX条件下培养20天； (8) 外殖体萌芽后，侧芽和不定芽不断生长，萌芽18天后，选取没有污染的无菌芽，切割 后转入继代增殖培养基上，继代增值培养基为:改良MS+N 6苄基腺嚷岭(6-BA)0.4mg/L+糞乙 酸0.15mg/L+核黄素7.0mg/L+维生素 C2.0mg/L+薦糖30g/L+琼脂3.75g/L，pH5.8-6.0;在 溫度26 ± 2°C，光照强度2000-25001UX条件下，培养20天，W促进丛芽增殖和生长，在增殖培 养基上反复继代培养，无菌芽苗数量不断增多； (9) 当继代培养的芽苗长到2-3cm，并有3-4对叶片时，切取芽苗转入生根培养基上培 养，生根培养基为：1/2改良MS+ABT10.6mg/L+IBA0. lmg/L+薦糖15g/L+琼脂3.9g/L，pH 5.8-6.2;溫度28-30°C，光照强度1200-15001UX，培养6天，当切口冒出短根或根点，出根率达到 30-40%时，移瓶至溫度28-35°C，光照强度3000-50001UX的自然光下培养20天； (10) 将生根齐全，苗高3-4cm的生根瓶苗，洗去琼脂，移栽至用KMn化消毒过的黄屯、±和 赔石做基质的营养杯或羟基质育苗杯上，黄屯、上和赔石的比例为5:1，培养70天，得到再生 植株； (11) 将具有发育不完全根、苗高1.5-2.0cm的生根瓶苗，洗去琼脂，移栽到用KMn化消毒 过的黄屯、赔石+河沙按照4:1:1的比例配置的营养杯或羟基质育苗杯上，小苗移栽前用 ABT1生根粉20化pm水溶液浸泡20min，移栽后特殊培养27d，将长出真根的苗和未长出真根 的苗分开管理，再培养70天后，长出真根的苗得到再生植株。
[003引所述的优良家系是指，从澳大利亚引种的种源/家系，通过栽培试验、ii定分析，选 择出适合本地生长、生长量高、抗逆性强，已成功驯化的家系/种群。所述的优良单株是指， 经试验测定分析后，确定的优良家系中树高、胸径、蓄积量等生长指标突出，木材材性、干 形、抗病虫害能力等指标优越的优势木个体。
[0033] 上述步骤（11 )中的发育不完全根是指，从苗茎切口长出的根状突起，长0.5-1.0cm，表面光滑，没有根毛，又称假根的根状组织;特殊培养是指，将发育不完全根的苗移 栽后弱光培养，光照强度lOOOLux，用微型喷头喷淋雾状水保湿，始终保持叶面湿润，栽培基 质保持不干不溃状态，不积水，小苗生长稳定后，叶面喷施低浓度大量元素和微量元素肥。
[0034] 实施例3 一种大花序按的组培快繁方法，其步骤如下： (1) 在澳大利亚引种的家系试验林中，经测试对比，选择出适合本地生长的大花序按优 良家系； (2) 在大花序按优良家系中，通过测量胸径、树高、蓄积、连年生长量、木材材性W及干 形指标，综合对比后选择出优良单株； (3) 将优良单株在离地面20cm高度处伐倒，促萌芽，当萌芽条长到18cm时，剪取萌芽条， 用水浸泡基部带回实验室备用； (4 )萌芽条修剪去叶片、叶柄，用自来水流水冲洗5 m i η，再用饱和洗衣粉溶液洗涂 lOmin，用纯净水清洗干净； 巧)在超净工作台上，将萌芽条剪去嫩梢段和基部老化部分，留半木质化茎段，切成长 2-3cm，保留有1-2个潜伏芽的切段做消毒材料； (6) 将待消毒材料置于高压灭菌处理过的无菌瓶中，用75%酒精溶液浸泡17s，无菌水清 洗5次，洗去残留酒精，再用0.1%HgCL2溶液浸泡并适当揽拌，9min后倒去化化2溶液至专用收 集罐中，用无菌水清洗材料6次； (7) 用綴子夹取清洗好的茎段，放置在灭菌的接种碟上，用灭菌过的滤纸吸干表面水 分，切去叶柄和茎段的两端，接种到无菌芽诱导培养基上，无菌芽诱导培养基为:改良MS+N 6 苄基腺嚷岭（6-BA)1.0mg/L+糞乙酸0.4mg/L+维生素 C 2.0 mg/L+核黄素7.0 mg/L+薦糖 30g/L+琼脂3.75g/L，抑5.8-6.0;全暗培养12天后，在溫度26±2°C，光照12h/d，光照强度 1500-20001UX条件下培养15天； (8) 外殖体萌芽后，侧芽和不定芽不断生长，萌芽20天后，选取没有污染的无菌芽，切割 后转入继代增殖培养基上，继代增值培养基为：改良MS+N 6苄基腺嚷岭（6-BA) 0.5mg/L+糞 乙酸0.15mg/L+核黄素7.0 mg/L+维生素 C 2.0mg/L+薦糖30g/L+琼脂3.75g/L，pH 5.8-6.0; 在溫度26±2°C，光照强度2000-25001UX条件下，培养18天，W促进丛芽增殖和生长，在增殖 培养基上反复继代培养，无菌芽苗数量不断增多； (9) 当继代培养的芽苗长到2-3cm，并有3-4对叶片时，切取芽苗转入生根培养基上培 养，生根培养基为：1/2改良MS+ABT10.6mg/L+IBA0. lmg/L+薦糖15g/L+琼脂3.9g/L，pH 5.8-6.2;溫度28-30°C，光照强度1200-15001UX，培养10天，当切口冒出短根或根点，出根率达到 30-40%时，移瓶至溫度28-35°C，光照强度3000-50001UX的自然光下培养15天； (10) 生根齐全，苗高3-4cm的生根瓶苗，洗去琼脂，移栽至用KMn化消毒过的黄屯、±和赔 石做基质的营养杯或羟基质育苗杯上，黄屯、上和赔石的比例为5:1，培养80天，得到再生植