本发明属于医药保健领域，具体涉及一种营养保健海洋牛奶。
背景技术：
：牡蛎作为中国卫生部公布的第一批68种药食同源的食品之一，牡蛎中丰富的蛋白质、糖原、牛磺酸、EPA、DHA以及维生素、锌、钙、硒、铁等生物活性成分。其中所含的牛磺酸是一种β-氨基酸，为一种重要的细胞保护剂，其主要生物作用是能够维护膜结构的稳定和调节渗透平衡，对细胞膜的脂质过氧化具有防护作用。研究表明，牛磺酸参与糖代谢的调节，加速糖酵解；可与胰岛素受体结合，促进肌肉组织对葡萄糖、必需氨基酸的摄取和利用，加速糖酵解，增加糖原异生；增强心肌收缩力，增加血液输出，同时防止心肌损伤；能保护肝脏。随着市场激烈的竞争，人们生活节奏加快，劳动和社会生活使人们身体日益疲惫不堪，但身处在这样的紧张环境中，身体也处于亚健康状态，免疫机能也相应的随之降低。因此研究和开发营养保健海洋牛奶具有相当重要的意义。技术实现要素：有鉴于此，本发明提供一种营养保健海洋牛奶，本发明的海洋牛奶营养丰富，口感好，富含人体所需的免疫调节因子，能够显著提高机体的免疫能力，同时还具有美白功能，适合各年龄段人群，尤其适合女性消费者饮用。本发明的技术方案为：一种营养保健海洋牛奶，以重量份计，由以下组分组成：活性组分A40-50，氯化钾1-3，山梨糖醇5-8，柠檬酸钠2-4，白砂糖10-30，活性组分B11-15，活性组分C9-13，碳酸氢钠2-6，猕猴桃香精0.3-0.5，乳酸钙3-5，水50-120。进一步的，所述的营养保健海洋牛奶，以重量份计，由以下组分组成：活性组分A43，氯化钾2，山梨糖醇6，柠檬酸钠3，白砂糖14，活性组分B13，活性组分C11，碳酸氢钠4，猕猴桃香精0.4，乳酸钙4，水78。进一步的，所述活性组分A为牡蛎酶解产物，所述牡蛎酶解产物的制备方法为：S1.取牡蛎全脏器，使料水比为1:2-1:8(w/v)，用2mol/L盐酸将溶液pH值调至2.0-3.5以呈现胃部酸碱环境，以酶与底物浓度比为1200-1500U/g加入胃蛋白酶，在恒温水浴振荡器中保持37℃、100-130r/min振荡酶解1.5-2.5h，在此条件下获得经胃蛋白酶酶解的初产物；S2.用2mol/L的氢氧化钠将经胃蛋白酶酶解后的酶解液pH值调至8.0-9.0，保持37℃酶解温度，复合酶添加量为4500-6000U/g，所述复合酶中胰蛋白酶与胰凝乳蛋白酶的质量比为4:1-6:1，所述料水比1:3-1:6，酶解时间为3-4.5h，酶解结束后，在100℃沸水浴中灭酶10min；将S2中的酶解产物通过真空冷冻干燥，设置干燥条件为预冷温度-30℃,预冷时间2h，加热温度从-10℃开始18h后缓慢升温,达到25℃,并保持到干燥终点，得到牡蛎酶解产物。更进一步的，所述活性组分A为牡蛎酶解产物，所述牡蛎酶解产物的制备方法为：S1.取取牡蛎全脏器，使料水比为1:3(w/v)，用2mol/L盐酸将溶液pH值调至2.5以呈现胃部酸碱环境，以酶与底物浓度比为1300U/g加入胃蛋白酶，在恒温水浴振荡器中保持37℃、110r/min振荡酶解2h，在此条件下获得经胃蛋白酶酶解的初产物；S2.用2mol/L的氢氧化钠将经胃蛋白酶酶解后的酶解液pH值调至8.5，保持37℃酶解温度，复合酶添加量为5200U/g，所述复合酶中胰蛋白酶与胰凝乳蛋白酶的质量比为5:1，所述料水比1:4.5，酶解时间为3.5h，酶解结束后，在100℃沸水浴中灭酶10min；将S2中的酶解产物通过真空冷冻干燥，设置干燥条件为预冷温度-30℃,预冷时间2h，加热温度从-10℃开始18h后缓慢升温,达到25℃,并保持到干燥终点，得到牡蛎酶解产物。进一步的，所述活性组分B为绿鳍马面鲀鱼皮酶解产物，所述绿鳍马面鲀鱼皮酶解产物的制备方法为：S1.取绿鳍马面鲀鱼皮搅碎，使料水比为1:1-1:2(w/v)，用2mol/L盐酸将溶液pH值调至2.0以呈现胃部酸碱环境，以酶与底物浓度比为800-1000U/g加入胃蛋白酶，在恒温水浴振荡器中保持37℃、75-105r/min振荡酶解1-1.5h，在此条件下获得经胃蛋白酶酶解的初产物；S2.用2mol/L的氢氧化钠将经胃蛋白酶酶解后的酶解液pH值调至8.0-9.0，保持37℃酶解温度，复合酶添加量为2500-3500U/g，所述复合酶中胰蛋白酶与胰凝乳蛋白酶的质量比为6:1-8:1，所述料水比1:2-1:4，酶解时间为2.5-3.5h，酶解结束后，在100℃沸水浴中灭酶10min；将S2中的酶解产物通过喷雾干燥的方式，设置干燥条件为进风温度160℃,进样速度为50ml/min,离心雾化器转速为25000r/min，得到绿鳍马面鲀鱼皮酶解产物。更进一步的，所述活性组分B为绿鳍马面鲀鱼皮酶解产物，所述绿鳍马面鲀鱼皮酶解产物的制备方法为：S1.取绿鳍马面鲀鱼皮搅碎，使料水比为1:1.5(w/v)，用2mol/L盐酸将溶液pH值调至2.0以呈现胃部酸碱环境，以酶与底物浓度比为880U/g加入胃蛋白酶，在恒温水浴振荡器中保持37℃、85r/min振荡酶解1.3h，在此条件下获得经胃蛋白酶酶解的初产物；S2.用2mol/L的氢氧化钠将经胃蛋白酶酶解后的酶解液pH值调至8.2，保持37℃酶解温度，复合酶添加量为2900U/g，所述复合酶中胰蛋白酶与胰凝乳蛋白酶的质量比为7:1，所述料水比1:2.5，酶解时间为2.8h，酶解结束后，在100℃沸水浴中灭酶10min；将S2中的酶解产物通过喷雾干燥的方式，设置干燥条件为进风温度160℃,进样速度为50ml/min,离心雾化器转速为25000r/min，得到绿鳍马面鲀鱼皮酶解产物。进一步的，所述活性组分C为泽泻菌体粗提物，所述泽泻菌体粗提物的制备方法为：取新鲜植物的根、茎、叶分别洗净至没有明显的杂质，表面消毒处理后，接种至PDA（分离内生真菌）和高氏一号培养基（分离内生放线菌）上培养5-7d，然后分离获取菌落；从活化斜面中挑取菌丝块接种于装有100mL发酵培养基的锥形瓶中，置30℃，150r/min摇床振荡培养3d；发酵培养物除去菌体，滤液用等体积乙酸乙酯萃取3次，合并有机相，45℃减压浓缩蒸干，即为混合菌液粗提物；离心和过滤得到的菌体，用适量95%乙醇冷凝回流3次，合并乙醇相，减压浓缩蒸干，即为菌体粗提物。上述技术方案中，所述的运动功能饮料的制备方法为：按配比，将各组分混合，搅拌分散均匀后即可得成品。本发明原材料易于采购，制作简单；并富含丰富的蛋白质、维生素与矿物质；便于携带，方便食用，快速消除饥饿感，口感柔和，味道独特；适宜各个年龄段人群食用。本发明经验证，长久食用可达到增强免疫力和美白的效果，基于本发明中主要活性组分采用模拟人体胃肠消化的方式制得，配合从植物体内提取出的活性菌体成分，活性菌体成分进入肠道内，一方面可以在肠道内定殖，维持肠道微生物菌群的平衡；另一方面是活性菌体成分与牡蛎酶解产物以及绿鳍马面鲀鱼皮酶解产物共同作用于宿主的免疫系统，诱发肠道免疫，并刺激胸腺，脾脏等免疫器官，促进巨噬细胞活性，通过增强B、T淋巴细胞对抗原刺激的反应性，发挥特异性免疫活性，从而增强机体的免疫功能，易于被人体吸收，条件95%人群长期服用无不适症状。具体实施方式以下结合具体实施例来对本发明作进一步的描述。实施例1一种营养保健海洋牛奶，以重量份计，由以下组分组成：活性组分A43，氯化钾2，山梨糖醇6，柠檬酸钠3，白砂糖14，活性组分B13，活性组分C11，碳酸氢钠4，猕猴桃香精0.4，乳酸钙4，水78。进一步的，所述活性组分A为牡蛎酶解产物，所述牡蛎酶解产物的制备方法为：S1.取取牡蛎全脏器，使料水比为1:3(w/v)，用2mol/L盐酸将溶液pH值调至2.5以呈现胃部酸碱环境，以酶与底物浓度比为1300U/g加入胃蛋白酶，在恒温水浴振荡器中保持37℃、110r/min振荡酶解2h，在此条件下获得经胃蛋白酶酶解的初产物；S2.用2mol/L的氢氧化钠将经胃蛋白酶酶解后的酶解液pH值调至8.5，保持37℃酶解温度，复合酶添加量为5200U/g，所述复合酶中胰蛋白酶与胰凝乳蛋白酶的质量比为5:1，所述料水比1:4.5，酶解时间为3.5h，酶解结束后，在100℃沸水浴中灭酶10min；将S2中的酶解产物通过真空冷冻干燥，设置干燥条件为预冷温度-30℃,预冷时间2h，加热温度从-10℃开始18h后缓慢升温,达到25℃,并保持到干燥终点，得到牡蛎酶解产物。进一步的，所述活性组分B为绿鳍马面鲀鱼皮酶解产物，所述绿鳍马面鲀鱼皮酶解产物的制备方法为：S1.取绿鳍马面鲀鱼皮搅碎，使料水比为1:1.5(w/v)，用2mol/L盐酸将溶液pH值调至2.0以呈现胃部酸碱环境，以酶与底物浓度比为880U/g加入胃蛋白酶，在恒温水浴振荡器中保持37℃、85r/min振荡酶解1.3h，在此条件下获得经胃蛋白酶酶解的初产物；S2.用2mol/L的氢氧化钠将经胃蛋白酶酶解后的酶解液pH值调至8.2，保持37℃酶解温度，复合酶添加量为2900U/g，所述复合酶中胰蛋白酶与胰凝乳蛋白酶的质量比为7:1，所述料水比1:2.5，酶解时间为2.8h，酶解结束后，在100℃沸水浴中灭酶10min；将S2中的酶解产物通过喷雾干燥的方式，设置干燥条件为进风温度160℃,进样速度为50ml/min,离心雾化器转速为25000r/min，得到绿鳍马面鲀鱼皮酶解产物。进一步的，所述活性组分C为泽泻菌体粗提物，所述泽泻菌体粗提物的制备方法为：取新鲜植物的根、茎、叶分别洗净至没有明显的杂质，表面消毒处理后，接种至PDA（分离内生真菌）和高氏一号培养基（分离内生放线菌）上培养5-7d，然后分离获取菌落；从活化斜面中挑取菌丝块接种于装有100mL发酵培养基的锥形瓶中，置30℃，150r/min摇床振荡培养3d；发酵培养物除去菌体，滤液用等体积乙酸乙酯萃取3次，合并有机相，45℃减压浓缩蒸干，即为混合菌液粗提物；离心和过滤得到的菌体，用适量95%乙醇冷凝回流3次，合并乙醇相，减压浓缩蒸干，即为菌体粗提物。实施例2本实施例提供一种营养保健海洋牛奶，以重量份计，由以下组分组成：活性组分A40，氯化钾2，山梨糖醇6，柠檬酸钠3，白砂糖14，活性组分B11，活性组分C9，碳酸氢钠4，猕猴桃香精0.4，乳酸钙4，水78。本实施例中活性组分A、活性组分B、活性组分C的成分及制备方式与实施例1一致。实施例3本实施例提供一种营养保健海洋牛奶，以重量份计，由以下组分组成：活性组分A50，氯化钾2，山梨糖醇6，柠檬酸钠3，白砂糖14，活性组分B15，活性组分C13，碳酸氢钠4，猕猴桃香精0.4，乳酸钙4，水78。本实施例中活性组分A、活性组分B、活性组分C的成分及制备方式与实施例1一致。实施例4本实施例提供一种营养保健海洋牛奶，以重量份计，由以下组分组成：活性组分A50，氯化钾2，山梨糖醇6，柠檬酸钠3，白砂糖14，活性组分B15，活性组分C9，碳酸氢钠4，猕猴桃香精0.4，乳酸钙4，水78。本实施例中活性组分A、活性组分B、活性组分C的成分及制备方式与实施例1一致。实施例5本实施例提供一种营养保健海洋牛奶，以重量份计，由以下组分组成：活性组分A40，氯化钾2，山梨糖醇6，柠檬酸钠3，白砂糖14，活性组分B11，活性组分C13，碳酸氢钠4，猕猴桃香精0.4，乳酸钙4，水78。本实施例中活性组分A、活性组分B、活性组分C的成分及制备方式与实施例1一致。效果实施例1.增强免疫力效果实验将通过实施例1制得的牛奶浓缩脱水干燥，制备成粉末状，作为测试样品。对照品：天美健牌大豆肽蛋白粉；来源：北京同仁堂健康药业股份有限公司；成人临床推荐用量：0.167g.kg-1.d-1。受试动物品系和级别：BALB/c小鼠，Hartley豚鼠，SPF级；数量及性别：BALB/c小鼠60只，雄性；Hartley豚鼠6只，均可。购入体重BALB/c小鼠17-19g，Hartley豚鼠250-350g。由广东省医学实验动物中心提供，实验动物使用许可证号：SYXK（粤）2013-0002。实验期间，小鼠自由进食饮水，每天观察小鼠状态。根据样品的基本情况进行剂量设计，样品低、中、高按成人临床用量的5倍、10倍、20倍设计剂量，分别为0.15g.kg-1.d-1、0.30g.kg-1.d-1、0.60g.kg-1.d-1；阳性对照组剂量按成人推荐剂量的5倍设计，为0.835g.kg-1.d-1。将60只雄性小鼠随机各分为5组（阴性对照组、阳性对照组、受试样品低、中、高剂量组），每组12只，其中2只作为备用动物。各组小鼠每天按0.1mL/10g体重灌胃相应样品液，阴性对照组给予等量纯净水，每天1次，连续给药30天。试验开始、试验结束均称量体重1次，试验期间每周称量体重1次。小鼠淋巴细胞转化实验末次给药1h，无菌取脾置于盛有RPMI-1640培养液的培养皿中，并放置200目筛网，用注射器活塞在其上方研磨制成脾细胞悬液，分装脾细胞悬液至加有淋巴细胞分离液的离心管中。400g，20℃下离心20min，离心完毕，取出离心管中淋巴细胞层离心管，加入RPMI-1640培养液洗涤数次，250g，4℃下离心10min。洗涤完毕后，弃去上清液，加入完全培养基，吹打均匀，用台盼兰染色计数保证95%以上活细胞率，将细胞浓度调整为3×106个/ml。将每份脾细胞悬液分两孔加入48孔培养板中，每孔0.5ml，一孔加25ulConA液（相当于5ug/ml），另一孔作为对照，置于5%CO2,37℃CO2孵箱中培养48h后每孔轻轻吸去上清液0.3ml，加入0.3mlRPMI-1640培养液，同时加入CCK8试剂50ul/孔，继续培养2h。结束培养后，吹打均匀，然后分装到96孔培养板中，每孔作3个平行实验，用酶标仪测450nm波长下的光密度值。淋巴细胞的增殖能力由加ConA孔的光密度值与不加ConA孔的光密度值的差值表示。小鼠体液免疫功能（血清溶血素）影响给药25天，用生理盐水洗涤(2000r/min，10min)已脱纤维的羊血3次，在压积SRBC中加入生理盐水配成2%（v/v）的细胞悬液，每只小鼠腹腔注射0.2ml，第30天时，给药1h后，称重，所有小鼠摘除眼球取血0.8ml于离心管，静置1h，离心2000r/min，10min，收集血清。颈椎脱臼处死小鼠。用SA缓冲液稀释300倍的血清取1ml置试管内，再一次加入10%（v/v）SRBC0.5ml、用SA缓冲液稀释9倍的补体1ml，设置对照管（用SA代替血清），37℃恒温水浴20min，再冰浴，然后离心2000r/min，10min。取上清液1ml于新试管，加3.75ml都氏试剂、0.25ml10%（v/v）SRBC，充分混匀，静置10min，以对照管为空白，540nm处分别测定各管光密度值，溶血素的量以半数溶血值（HC50）表示。小鼠体液免疫（抗体生成细胞）的影响给药25天，用生理盐水洗涤已脱纤维的羊血3次，每次离心2000r/min，10min，在压积SRBC中加入生理盐水配成2%（v/v）的细胞悬液，每只小鼠腹腔注射0.2ml，第30天时，给药1h后，称重。颈椎脱臼处死小鼠后，取出脾脏，置于放有Hank’s液平皿中，经过200目筛网过滤后，再用Hank’s液洗涤两次，加入到5mLRPMI-1640培养液中将细胞悬浮，计数细胞，且调整细胞浓度为5×106个/mL。将1g琼脂糖加双蒸水至100mL形成的表层培养基加热溶解后，40-45℃水浴保温.与PH7.2-7.4、2倍Hank’s液等体积混合，摇匀，每管0.5mL分装不同的试管，继续向每管加入用SA缓冲液配制成的10％SRBC(v/v）50ul和脾细胞悬液20ul，快速混匀，倾倒于涂有一层薄薄的琼脂糖的薄片上，做平行片，等到琼脂糖凝固后，将薄片水平扣放在片架上，放入二氧化碳培养箱培养1-1.5h后，将用SA缓冲液稀释了9倍的补体加到玻片架的凹槽内，继续培养1-1.5h，然后计数溶血空斑数。小鼠单核-巨噬细胞吞噬功能及免疫器官影响的测定末次给药1h，按体重从尾静脉注射用生理盐水1:3稀释的印度墨汁（10mL/kg），待墨汁注入，立即计时。注入墨汁后2、10min，分别从眼眶静脉丛采血20µL，并立即加到2mL0.1％Na2CO3溶液中，以Na2CO3溶液作空白对照，用分光光度计在600nm波长处测定光密度值（OD），计算吞噬指数a。小鼠采血后脱臼处死，解剖取肝脏、脾脏和胸腺，滤纸吸干脏器周围血液后，精密称重，计算脏器/体重比值。NK细胞活性测定末次给药1h，无菌取脾，无菌取脾置于盛有RPMI-1640培养液的培养皿中，并放置200目筛网，用注射器活塞在其上方研磨制成脾细胞悬液，分装脾细胞悬液至加有淋巴细胞分离液的离心管中。400g，20℃下离心20min，离心完毕，取出离心管中淋巴细胞层离心管，加入RPMI-1640培养液洗涤数次，250g，4℃下离心10min。洗涤完毕后，弃去上清液，加入完全培养基，吹打均匀，用台盼兰染色计数活细胞数（应在95%以上），最后用RPMI1640完全培养液调整细胞浓度为2×107个/mL。按比例将效应细胞和靶细胞（50:1）各100ul加入U型96孔板；靶细胞和培养液各100ul加入靶细胞自然释放孔；靶细胞和0.25%Triton各100ul加入靶细胞最大释放孔。每组均设3个平行孔，37℃,5%CO2培养箱培养4h后，离心1500rpm,5min。每孔吸取上清液100ul于平底96孔板，加入LDH基质液100ul/孔，反应3-10min，加入1mol/mlHCL30ul/孔，酶标490nm测定光密度值。所有数据采用SPSS16.0软件进行统计分析，测试结果如下表所示。表1实施例样品与对照组对小鼠淋巴细胞转化的影响注：采用方差分析方法进行统计分析，与阴性对照组比较，”a”:p<0.05;与阳性对照组比较,“b”:p<0.01表2实施例样品与对照组对小鼠抗体水平（血清溶血素）的影响注：采用方差分析方法进行统计分析，与阴性对照组比较，”a”:p<0.05;与阳性对照组比较,“b”:p<0.01表3实施例样品与对照组对小鼠溶血空斑数的影响注：采用方差分析方法进行统计分析，与阴性对照组比较，”a”:p<0.05;与阳性对照组比较,“b”:p<0.01。表4实施例样品与对照组对小鼠吞噬指数的影响注：采用方差分析方法进行统计分析，与阴性对照组比较，”a”:p<0.05;与阳性对照组比较,“b”:p<0.01。表6实施例样品与对照组对小鼠NK细胞活性的影响注：采用方差分析方法进行统计分析，与阴性对照组比较，”a”:p<0.05;与阳性对照组比较,“b”:p<0.01。2.美白效果测试实验小鼠脂质抗氧化实验实验样品和方法实验动物：健康12月龄昆明种小鼠60只，雌性，体重48-60g。将通过实施例1制得的牛奶浓缩脱水干燥，制备成粉末状，作为测试样品。实验分组：实验小鼠按血中MDA水平随机分为6组，每组10只动物，分别为受试物低剂量组（实施例1制备的产品50mg/kg)、受试物中剂量组（实施例1样品100mg/kg)、受试物高剂量组（实施例1样品150mg/kg)、阳性对照组（中国专利申请201110415844.9中实施例2提供的产品，即女性美白养颜的组合物，给药量为100mg/kg)和空白对照组。实验方法：三个实验组、阳性对照组分别取实施例2所得粉剂、文献实施例2样品加温水稀释150倍，空白对照组给予等量温水，按照分组进行灌胃给药，连续进行30天。末次给予各组相应的处理30min后，取受试动物眼内眦静脉血，分别测定其全血谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-px)活性、活性红细胞超氧化物歧化酶（SOD)活性和小鼠血中过氧化脂质丙二醛（MDA)含量。数据统计：数据采用SPSS16.0forwindows软件进行方差分析。测试结果全血GSH-px活性测定：采用试剂盒法（南京建成生物工程研究所购买），见表7：表7受试样品对小鼠GSH-px活性的影响组别（mg/kg·BW）动物数（只）GSH-px活性（U/ml）P1P2空白对照组1020.5±2.1——阳性对照组1026.0±3.3P<0.05—受试物低剂量组1022.2±3.0P<0.05P<0.05受试物中剂量组1027.9±2.5P<0.01P<0.01受试物高剂量组1030.1±4.3P<0.01P<0.01注：表中P1为各组别与空白对照组相比的显著性分析结果，P2为受试物剂量组与阳性对照组的显著性分析结果。活性红细胞SOD活性测定：采用试剂盒法（南京建成生物工程研究所购买）见表8：表8受试样品对小鼠红细胞SOD活性的影响组别（mg/kg·BW）动物数（只）SOD活性（U/gHb）P1P2空白对照组102143±789——阳性对照组104246±322P<0.05P<0.05受试物低剂量组104105±531P<0.01P<0.01受试物中剂量组104551±224P<0.01P<0.01受试物高剂量组104994±243P1P2注：表中P1为各组别与空白对照组相比的显著性分析结果，P2为受试物剂量组与阳性对照组的显著性分析结果。小鼠血中MDA含量测定：采用试剂盒法（南京建成生物工程研究所购买），见表9：表9受试样品对小鼠血中MDA含量的影响组别（mg/kg·BW）动物数（只）MDA（mmol/mL）P1P2空白对照组1012.3±237——阳性对照组1013.8±1.7P<0.05P<0.05受试物低剂量组1011.5±2.5P<0.01P<0.01受试物中剂量组1013.5±3.9P<0.01P<0.01受试物高剂量组1016.9±2.2P1P2注：表中P1为各组别与空白对照组相比的显著性分析结果，P2为受试物剂量组与阳性对照组的显著性分析结果。同样，对其余实施例和本发明的实施例其余配比进行相同实验，结果与实施例1的效果类似。对于本领域技术人员而言，显然本发明不限于上述示范性实施例的细节，而且在不背离本发明的精神或基本特征的情况下，能够以其他的具体形式实现本发明。因此，无论从哪一点来看，均应将实施例看作是示范性的，而且是非限制性的，本发明的范围由所附权利要求而不是上述说明限定，因此旨在将落在权利要求的等同要件的含义和范围内的所有变化囊括在本发明内。此外，应当理解，虽然本说明书按照实施方式加以描述，但并非每个实施方式仅包含一个独立的技术方案，说明书的这种叙述方式仅仅是为清楚起见，本领域技术人员应当将说明书作为一个整体，各实施例中的技术方案也可以经适当组合，形成本领域技术人员可以理解的其他实施方式。对于本发明中所有未详尽描述的技术细节，均可通过本领域任一现有技术实现。当前第1页1 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