鹿蹄草纯多糖ltc-0-1及其应用的制作方法

文档序号:918262阅读:417来源:国知局
专利名称:鹿蹄草纯多糖ltc-0-1及其应用的制作方法
技术领域
本发明属于医药、保健食品开发技术领域,涉及中药鹿蹄草提取物鹿蹄草纯多糖LTC-0-1及其在医药和保健食品中的应用。
背景技术
鹿蹄草corbieri Levl为鹿蹄草科鹿蹄草属植物,民间用于治疗风湿关节痛,肾虚腰痛,腰膝无力,虚劳咳嗽,外伤出血,痈肿疮毒,蛇咬伤等。现代研究表明,鹿蹄草具有明显的抗菌、抗炎、促进免疫、改善冠心病症状等作用(郑虎占,董泽宏,佘靖.中药现 代研究与应用.第6卷.北京学苑出版社,1999:5844;李东,杨松,宋宝安,等.鹿蹄草属植物的研究.贵州大学学报自然科学版,2008,25 (2): 188)。关于鹿蹄草中多糖类成分的研究除申请人课题组外,尚未见其他报道(莫正昌,吴兰芳,杨娟,王道平.鹿蹄草多糖LTC- II分离纯化及结构性质研究.中国中药杂志,2011,36 (12) : 1633-1636,但本发明中的多糖纯组分LTC-0-1与该报道中的完全不同。)
一些蛋白类神经营养因子NTFs在当前被认为是治疗神经退行性病变、神经损伤、中风等多种以前素手无策的脑疾患的最佳希望。目前研究最多的神经营养类物质是蛋白类神经营养因子(NTFs ),其次是小分子类神经营养物。外源性蛋白类神经营养因子由于蛋白本质所具有的抗原特性,药代动力学不理想,半衰期短易被蛋白酶水解而不宜口服;相对分子质量较大,不易透过血脑屏障进入中枢靶器官等缺陷,其临床应用疗效并不好。非肽类小分子类神经营养物主要是一些免疫抑制剂,这些药物存在来源有限,价格昂贵,副作用大等缺陷。目前有学者采用大鼠嗜铬细胞瘤PC12细胞株模型,发现一些植物多糖具有NGF样神经营养活性(杨娟,杨付梅,孙黔云.刺梨多糖的分离纯化及其神经营养活性.中国药学杂志,2006,41 (13) : 980-982;杨小生,张占军,杨再昌,朱海燕.土党参多糖、衍生物及其制备方法和应用[P]. 1648136,2005;方积年,丁侃.夹竹桃花多糖及其衍生物、制备方法及其应用[P]. 99125746.4,2001 ;冉靓,杨小生,朱海燕,王伯初.土人参多糖的分离及诱导PC12细胞分化活性.中草药,2007,38 (4) : 512-514)。相对于NGF的抗原本性和来源及制备上的困难,植物多糖具有来源丰富,分离纯化相对简单,性质稳定,便于生产、保存、运输等优点,开展神经营养活性多糖研究有广阔的发展前景。轴突和树突的生长过程是神经元分化和发育成熟的重要标志。神经元突起的生长是人们认识和解决神经再生和一些退行性疾病的关键环节。我们在运用GFP绿色荧光蛋白转基因小鼠模型和大鼠嗜铬细胞瘤PC12细胞株模型开展民族药中具有神经营养作用的物质研究时,筛选出鹿蹄草多糖LTC-0-1能使GFP小鼠海马神经元突起平均长度增长,突起数量增多,树突棘密度明显增大和神经元突触后膜蛋白表达增多,促使神经元成熟等途径发挥其神经营养活性作用;该结果目前国内外未见相关报道。LTC-0-1同时还能诱导PC12细胞的神经元样分化,促进细胞的突起生长,提高细胞乙酰胆碱酯酶AchE的活性,细胞生长相关蛋白GAP-43的表达量上升,具有神经营养活性。

发明内容
本发明的目的是提供一种鹿蹄草多糖在预防和治疗神经退行性疾病中的应用开辟一个新的途径。为制备对神经细胞有促生长、成熟和修复损伤神经细胞的药物或保健食品提供新资源。本发明多糖LTC-0-1,是以中药鹿蹄草干燥全草为原料,经酒精回流除杂后,再用蒸馏水热提,提取物经醇沉后,得鹿蹄草粗多糖。鹿蹄草粗多糖水溶液经DEAE-纤维素柱吸附,再用蒸馏水洗脱,得鹿蹄草多糖组分LTC-O ;LTC-O水溶液经S^hacryl S-300 HR柱层析分离后,得鹿蹄草纯多糖LTC-0-1。LTC-0-1为浅灰色粉末,易溶于热水,不溶于高浓度乙醇、丙酮、正丁醇等有机溶剂。碘-碘化钾反应呈阴性,不含淀粉,硫酸苯酚反应呈阳性。LTC-0-1经气相色谱测定,其成分由鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、葡萄糖、半乳糖组成,摩尔比为 I. 00 3. 63 O. 86 I. 30 6. 97 I. 30 ;分子量 1699 Da。LTC-O-1 能使 GFP绿色荧光蛋白转基因小鼠海马神经元突起平均长度增长,神经元突起数量增多,神经元树 突单位长度上树突棘密度明显增大,神经元突触后膜蛋白表达增多,促使神经元更加成熟;LTC-0-1同时还能诱导PC12细胞的神经元样分化,促进细胞的突起生长,提高细胞乙酰胆碱酯酶AchE的活性,细胞生长相关蛋白GAP-43的表达量上升,具有神经营养活性。LTC-0-1表现出对神经细胞有促生长、分化、成熟和修复损伤神经细胞功能的作用。鹿蹄草纯多糖LTC-0-1按下列步骤制备
步骤I:鹿蹄草粗多糖的制备
鹿蹄草干燥全草,加80%酒精回流提取3次,每次2 h,醇提取后的残渣挥去乙醇后,加蒸馏水沸水浴提取3次,每次2 h,合并水提液减压浓缩,乙醇沉淀,乙醇最终浓度不低于80%,沉淀真空干燥得鹿蹄草粗多糖;
步骤2、鹿蹄草纯多糖LTC-0-1的制备
粗多糖经DEAE-纤维素柱色谱,蒸馏水洗脱,硫酸-苯酚法显色,收集多糖部分;多糖洗脱液浓缩至小体积,经S^hacryl S-300 HR柱色谱,O. 2 mol/L氯化钠溶液为洗脱液,流速0.8 mL/min, 10 min每管自动收集,硫酸-苯酹法检测,吸光度对收集管数作图,收集各单一峰,冷冻干燥后得到多糖组分LTC-0-1。所述鹿蹄草纯多糖LTC-0-1对神经细胞有明显促进生长、分化、成熟作用和修复损伤的神经细胞功能。所述鹿蹄草纯多糖LTC-0-1的应用将鹿蹄草多糖制备成适宜的给药剂型,应用在制备预防和治疗神经退行性疾病老年痴呆症、学习记忆障碍、中风疾病的药物中。所述鹿蹄草纯多糖LTC-0-1的应用还可以是将鹿蹄草多糖用于制备改善记忆功能障碍,促进或提高学习记忆,作为脑保护剂的保健食品。所述鹿蹄草纯多糖LTC-0-1对PC12细胞有明显促进分化作用。本发明鹿蹄草纯多糖LTC-0-1用于制备对神经细胞有促生长、分化、成熟和修复损伤神经细胞的药物。本发明鹿蹄草纯多糖LTC-0-1用于制备对神经细胞有促生长、分化、成熟和修复损伤神经细胞的保健食品。本发明鹿蹄草纯多糖LTC-0-1用于制备预防和治疗神经退行性疾病老年痴呆症、学习记忆障碍、中风疾病的药物中。
本发明鹿蹄草纯多糖LTC-0-1用于制备改善记忆功能障碍,促进或提高学习记忆,作为脑保护剂的保健食品。


图I为LTC-0-1对海马神经元突起平均长度的影响 图2为LTC-0-1对海马神经元突起数量的影响
图3为LTC-0-1对海马神经元树突棘密度的影响 图4为LTC-0-1对突触后膜蛋白PSD95表达的影响
图5为梯度浓度LTC-0-1促进PC12细胞分化(A.空白对照组;B. 30ng/ml NGF加药组; C.10mg/mL LTC-0-1 ;D. 20 mg/mL ;E. 30 mg/mL ;F. 40 mg/mL ;G.50 mg/mL)
图6为LTC-0-1促进PC12细胞突起的生长(A. LTC-O-I促进PC12细胞突起生长与浓度的关系LTC-O-I促进PC12细胞突起生长与时间的关系)
图7为LTC-O-I剂量依赖的增强细胞中乙酰胆碱酯酶的活性 图 8 为 PC12 细胞中 GAP-43 Western blotting 结果
具体实施例方式实施例I、鹿蹄草粗多糖的制备
鹿蹄草干燥全草,加80%酒精回流提取3次,每次2 h。醇提取后的残渣挥去乙醇后,加蒸馏水沸水浴提取3次,每次2 h。合并水提液减压浓缩,乙醇沉淀,乙醇最终浓度不低于80%,沉淀真空干燥得鹿蹄草粗多糖。实施例2、纯多糖LTC-0-1的制备
粗多糖经DEAE-纤维素柱色谱,蒸馏水洗脱,硫酸-苯酚法显色,收集多糖部分得纯多糖。纯多糖洗脱液浓缩至小体积,经Sephacryl S-300 HR柱色谱分离,0.2 mol/L氯化钠溶液为洗脱液,流速O. 8 mL/min, 10 min每管自动收集,硫酸-苯酹法检测,在490nm波长处,以吸光度对收集管数作图,收集到两个单一峰,其中之一冷冻干燥后得到多糖组分LTC-0-1。实施例三、多糖组分LTC-0-1的纯度、理化性质、光谱分析、气相色谱分析和分子

多糖组分LTC-0-1经常规方法如全水解,分子量测定,核磁共振,红外光谱等化学和光谱方法证明为多糖结构。( I)多糖组分纯度确认
将上述获得的多糖组分LTC-0-1以O. 2 mol/L氯化钠溶液为流动相,流速O. 5 mL/min,经Sephacryl S-300 HR凝胶柱色谱进行纯度分析,多糖组分LTC-0-1为单一对称峰。又经凝胶渗透色谱法(GPC)分析,O. I mol/L磷酸盐缓冲液(pH 7.8 -8.0),结果相同。(2)鹿蹄草多糖LTC-0-1组分的理化性质
LTC-0-1为浅灰色粉末,不易溶于冷水,易溶于热水。不溶于高浓度乙醇、丙酮、正丁醇等有机溶剂。碘-碘化钾反应呈阴性,说明不含淀粉,硫酸苯酚反应呈阳性,表示有糖存在。(3)紫外光谱和红外光谱分析
紫外光谱分析,LTC-0-1水溶液在200-800nm扫描,在260nm和280nm处无吸收,说明不含核酸和蛋白;红外光谱分析,取样品lmg,KBr压片,在450 4000 cm—1区间进行红外扫描。LTC-0-1的红外光谱结果显示,在3423 cm—1和2923 cm—1处的吸收分别为多糖中O-H和C-H伸缩振动特征吸收峰,1623 CnT1为C=O伸缩振动特征吸收峰,1418 cnT1则为O-H变角振动所产生的吸收峰,而在1323 cm'1242 cm^\l038 cm^\l023 cnT1有吸收是类糖羟基(C-O-H)的O-H变角振动和C-H变角振动偶合产生的吸收带,937 cnT1和884 cnT1则分别为吡喃环中的C-O-C骨 架非对称伸缩振动产生的吸收峰和吡喃型β -端基差向异构的C-H变角振动产生的吸收峰。(4)气相色谱分析
将多糖经三氟醋酸水解法水解后,用硼氢化钠还原、吡啶和醋酐乙酰化后进行气相色谱测定。结果通过标准单糖气相色谱图的保留时间可知LTC-0-l主要由鼠李糖,阿拉伯糖,木糖,甘露糖,葡萄糖,半乳糖组成,摩尔比为1.00 :3. 63 :0. 86 :1.30 :6. 97 :1. 30。(5) LTC-0-1多糖组分分子量的测定
色谱柱SB 803 804 805 HQ串联,流动相为O. I mol/L磷酸盐缓冲液(PH7. 8-8. 0),柱温35 1,流速为0.5 mL/min,示差折光率检测器。多糖分子量标准为已知分子量的普鲁兰系列标准品。通过标准品的保留时间对已知标准分子量的对数作图得到的标准曲线。记录待测样品色谱图,采用GPC专用软件处理,结合标准曲线即可算得LTC-0-1的分子量为1699Da。
实施例四、多糖纯组分LTC-0-1促进海马神经元成熟作用
取胚胎18天的GFP小鼠海马神经元细胞。使用DMEM培养基(添加5%的马血清和5%的胎牛血清)进行培养。海马细胞贴壁后,转移至含有单层胶质细胞的培养皿中,继续无血清培养14天,加药24h后观察细胞形态变化。收集药物处理后的海马神经元细胞,加入裂解液RIPA (20 mM Tris, pH 7. 5,150mM NaCl, I mM EDTA, 10 % glycerol, I % Triton X-100和稀释过的蛋白酶抑制剂),将细胞裂解物转移进I. 5 mL的离心管中。蛋白定量采用Bradford方法。蛋白分离采用SDS-PAGE凝胶电泳,然后将蛋白条带转移至PVDF膜上,用PSD-95的特异单克隆抗体在湿润环境中孵育2 h,加入二抗。条带密度的分析采用Images Software。结果LTC-0_1使海马神经元突起平均长度增长。神经元成熟的一个方面表现在从胞体伸出突起(包括神经元树突与轴突)的长度变化。与对照组相比,LTC-0-1 (浓度均为ImM)使神经元突起长度明显增长,树突构成的网状形态更加明显(图I)。对照组细胞与实验组细胞培养条件完全相同,不做任何处理。标尺=20mm。_/Χ0. 001。LTC-0-1使神经元突起数量增多。神经元成熟的另一个方面表现在从胞体伸出的突起数量增多。图2统计的是从细胞胞体伸出的一级树突与二级树突的数量总和。如图2所示,LTC-0-1使神经元一、二级树突数量之和明显大于对照组细胞,神经元更加成熟。标尺=10mm。#7X0. 01。图3显示,LTC-0-1使神经元树突棘密度明显增大。树突棘是存在于神经元树突上,形成突触的部位。神经元越成熟,树突棘密度越大。LTC-0-1使得神经元树突单位长度上树突棘密度明显增大。标尺=5mm,>〈0. 05。Western blot分析LTC_0_124h后突触后膜蛋白PSD95的表达变化(图4)。与对照组相比,PSD95的表达明显升高,表明LTC-0-1使神经元突触后膜蛋白表达增多,神经元更加成熟。实施例五、多糖纯组分LTC-0-1促进PC12细胞的分化 (I) PC12细胞准备及给药处理
①PC12细胞常规培养
PC12细胞复苏后,培养在含10%胎牛血清、5%马血清的DMEM高糖完全培养基中。培养前需要对所有的培养皿和培养瓶用L-多聚赖氨酸进行包被处理。细胞置于37°C、5%C02的培养箱中进行培养。每两天进行细胞换液,每三天传代一次。实验所用细胞均处于对数生长期。 ②PC12细胞预处理
为了降低培养基中血清对实验的干扰影响,当细胞密度到达3 X 104/mL时,更换为测试培养基,即1%胎牛血清、2%马血清的DMEM培养基。测试培养基培养12h后,开始给药处理。③PC12细胞给药处理
根据多糖的相对分子量,将LTC-0-1粉末溶于蒸馏水中配制成母液,4°C保存。NGF固体粉末同样溶于蒸馏水中配成母液,4°C储存。根据预实验结果和相关文献,确定LTC-0-1合适给药浓度为50mg/L,阳性对照NGF的给药浓度是30ng/mL。将母液用测试培养基稀释至工作浓度,加入PC12细胞中,进行培养及后续试验。在LTC-0-1梯度实验中,所选用的梯度浓度是 0mg/mL、10 mg/mL>20 mg/mL>30 mg/mL>40 mg/mL>50 mg/mL。所有药物溶液现配现用。(2)分化的PC12细胞光镜观察
将空白对照组、阳性实验组及多糖药物实验组的PC12细胞置于倒置显微镜下观察其生长状况和形态变化,并随机选取多个视野进行拍照对比。(3) PC12细胞突起伸长分析
PC12细胞接种于6孔板中,给药处理48小时后,进行突起细胞统计。每个孔随机选择4-5个视野,统计细胞突起长度超过胞体直径I. 5倍的细胞个数,每个孔统计100个细胞,每个数据点重复3次。结果分析和数据统计采用Origin软件完成,配对t检验。(4)乙酰胆碱酯酶活性检测 ①样品准备
收集给药处理后的细胞,加入PBS反复清洗三遍,然后用细胞刮脱棒轻柔刮脱细胞,再加入PBS,混匀细胞;将此细胞液移入15mL离心管中,放进4°C台式离心机离心5min后,去除上清液;在沉淀中加入细胞裂解液,置于冰槽中孵育30min,后在4°C台式离心机中离心5min,提取上清液至I. 5mL的离心管;抽取10 μ I上清液进行蛋白定量检测;其余上清液一70°C保存。②酶活检测
检测波长为412nm ;然后将样品置于冰槽融化,在完全融化的样品中加入碘化硫代乙酸胆喊(acetylthiocholine iodide)和Ellman试剂5,5_ 二硫基_双(2_硝基苯甲酸)[5, 5’ -dithiobis-(2-nitrobenzoic acid)]进行反应,后即刻放进酶标仪中,读取Omin和15min时的读数。(5)蛋白免疫印迹实验 ①总蛋白的抽提各组经药物处理后细胞弃去培养基,并用D-Hanks冲洗3遍。冰浴上加入细胞裂解液,孵育30min。后移入离心管中,12000 rpm,离心lOmin,取上清。吸取少量用于蛋白浓度测定,其余_70°C保存。②蛋白浓度测定
配制 O. 25mg/ml,O. 5mg/ml,O. 75mg/ml, lmg/ml, I. 25mg/ml 标准浓度的 BSA (小牛血清白蛋白)溶液。在酶标板中加入200 μ I考马斯売兰和5 μ I蛋白样品,各做2个平行,黑暗放置15min后用酶标仪检测。根据标准浓度的蛋白吸光值可制得标准曲线,根据该标准曲线检测样品蛋白含量。
样品蛋白经过合适比例稀释后,取5 μ I蛋白加入200 μ I考马斯亮兰中,黑暗放置15min后用酶标仪进行检测。每个样品做3个平行孔,求平均值。根据上述绘制的标准曲线,得到样品蛋白的含量。结果
(I)LTC-O-I作用于PC12细胞后的形态学观察
观察发现LTC-O-I能剂量依赖性的促进PC12细胞的分化(图5),浓度越高,细胞形态越接近神经元样细胞,与阳性对照组的细胞形态也越相似。特别是多糖浓度到达30mg/L时,可以观察到具有明显神经元样形态的细胞(图5 E)。(2) LTC-O-I对PC12细胞突起生长的影响
LTC-O-I促进PC12细胞突起的延伸呈现剂量依赖,随着多糖浓度的提高,突起细胞的比例逐渐提高。当药物浓度为10mg/L时,突起细胞比例为13. 33%,当浓度增加至50mg/L时,突起细胞的比例增加了近3倍,为38. 2% (图6A)。但是多糖促进突起延伸对时间的依赖并不明显,LTC-O-I作用于细胞48h后,突起细胞比例的变化并不明显,甚至从统计图中发现突起细胞比例略微下降(图6B)。(3) LTC-O-I对PC12细胞中乙酰胆碱酯酶活性的影响
LTC-O-I处理PC12细胞后乙酰胆碱酯酶的活性变化,表明多糖提高胆碱酶活性呈现剂量依赖性。多糖浓度增加,细胞中胆碱酯酶的活性也在增强(图7)。与空白对照组相比,差异显著(*>〈0.01,**>〈0· 001)。(4) LTC-O-I对PCl2细胞中GAP-43蛋白表达的影响
为了解LTC-O-I在蛋白水平上对PC12细胞分化的影响,采用蛋白免疫印迹的方法检测了生长相关蛋白GAP-43的表达量。结果表明(图8),经过多糖处理后的细胞,GAP-43的表达量上升,且呈现明显的剂量依赖性。轴突和树突的生长过程是神经元分化和发育成熟的重要标志。神经元突起的生长是人们认识和解决神经再生和一些退行性疾病的关键环节。通过一系列实验证明,本发明提供的鹿蹄草多糖可以促进神经元树突的生长,包括增加树突的长度和分支数目;提高树突棘的密度;还能增强PSD-95蛋白的表达量。这些结果都表明多糖具有神经营养活性,是一类神经营养活性物质。本发明提供的鹿蹄草多糖可应用在制备预防和治疗神经退行性疾病老年痴呆症、学习记忆障碍、中风疾病的药物中和改善记忆功能障碍,促进或提高学习记忆,作为脑保护剂的保健食品中。
权利要求
1.鹿蹄草纯多糖LTC-0-1,其特征是以中药鹿蹄草干燥全草为原料,经酒精回流除杂后,再用蒸馏水热堤,提取物经醇沉后,得鹿蹄草粗多糖,鹿蹄草粗多糖水溶液经DEAE-纤维素柱吸附,再用蒸馏水洗脱,得鹿蹄草多糖组分LTC-O,LTC-O水溶液经S印hacryl S-300HR柱层析分离,得鹿蹄草纯多糖LTC-0-1 ;LTC-0-l为浅灰色粉末,易溶于热水,不溶于高浓度こ醇、丙酮、正丁醇有机溶剤,碘-碘化钾反应呈阴性,不含淀粉,硫酸-苯酚反应呈阳性;LTC-0-1分子量为1699 Da ;由鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、葡萄糖、半乳糖等单糖组成,摩尔比为 I. 00 3. 63 O. 86 I. 30 6.97 I. 30 ;LTC-0_1 能使 GFP 绿色荧光蛋白转基因小鼠海马神经元突起平均长度增长,神经元突起数量增多,神经元树突单位长度上树突棘密度明显增大,神经元突触后膜蛋白表达增多,促使神经元更加成熟;LTC-0-1同时还能诱导PC12细胞的神经元样分化,促进细胞的突起生长,提高细胞こ酰胆碱酯酶AchE的活性,细胞生长相关蛋白GAP-43的表达量上升,具有神经营养活性;LTC-0-l表现出对神经细胞有促生长、分化、成熟和修复损伤神经细胞功能的作用。
2.根据权利要求I所述的鹿蹄草纯多糖LTC-0-1提取制备方法,包括鹿蹄草粗多糖的制备,其特征在于鹿蹄草纯多糖LTC-0-1的制备エ艺为将鹿蹄草粗多糖经DEAE-纤维素柱色谱,蒸馏水洗脱,硫酸-苯酚法显色,收集多糖部分,得鹿蹄草纯多糖组分LTC-O洗脱液,多糖组分LTC-O洗脱液浓缩至小体积,经S印hacryl S-300 HR柱色谱,O. 2 mo I/L氯化钠溶液为洗脱液,流速O. 8 mL/min, 10 min姆管自动收集,硫酸-苯酹法检测,在490nm波长处,以吸光度对收集管数作图,收集到两个单一峰,其中之一冷冻干燥后得到多糖组分LTC-0-1。
3.按照权利要求I所述的鹿蹄草纯多糖LTC-0-1的应用,其特征是用于制备对神经细胞有促生长、分化、成熟和修复损伤神经细胞的药物。
4.按照权利要求I所述的鹿蹄草纯多糖LTC-0-1的应用,其特征是用于制备对神经细胞有促生长、分化、成熟和修复损伤神经细胞的保健食品。
5.按照权利要求I所述的鹿蹄草纯多糖LTC-0-1的应用,其特征是用于制备预防和治疗神经退行性疾病老年痴呆症、学习记忆障碍、中风疾病的药物中。
6.按照权利要求I所述的鹿蹄草纯多糖LTC-0-1的应用,其特征是用于制备改善记忆功能障碍,促进或提高学习记忆,作为脑保护剂的保健食品。
全文摘要
本发明鹿蹄草纯多糖LTC-0-1及其应用,属医药、保健食品领域。本发明公开了鹿蹄草纯多糖LTC-0-1的提取方法,LTC-0-1的组成和分子量,试验证明LTC-0-1能使GFP绿色荧光蛋白转基因小鼠海马神经元突起平均长度增长,神经元突起数量增多,神经元树突单位长度上树突棘密度明显增大,神经元突触后膜蛋白表达增多,促使神经元更加成熟;LTC-0-1同时还能诱导PC12细胞的神经元样分化,促进细胞的突起生长,提高细胞乙酰胆碱酯酶AchE的活性,细胞生长相关蛋白GAP-43的表达量上升,具有神经营养活性;LTC-0-1表现出对神经细胞有促生长、分化、成熟和修复损伤神经细胞功能的作用,在医药和保健食品技术领域开发应用有广阔前景。
文档编号A61K31/715GK102838685SQ20121036980
公开日2012年12月26日 申请日期2012年9月29日 优先权日2012年9月29日
发明者杨娟, 莫正昌, 邓靖, 吴兰芳, 彭梅 申请人:贵州省中国科学院天然产物化学重点实验室
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