胨10.0g，牛肉膏10.0g，酵母浸粉5.0g,葡萄糖20.0g,柠檬酸铵2.0g,乙酸钠5.0g,硫酸锰0.05g，磷酸氢二钠2.0g,余量为去离子水，培养基总量为1L。
[0051]所述种子扩大培养基的配方为:鱼蛋白胨或胰蛋白胨10.0g，牛肉膏10.0g，酵母浸粉5.0g、葡萄糖20.0g，柠檬酸铵2.0g,乙酸钠5.0g，硫酸锰0.05g，磷酸氢二钠2.0g，谷氨酸钠50g，余量为反渗透水，调pH5，培养基总量为1L。
[0052](2)加热杀菌:发酵结束，将体系升温80°C，保持20min，杀灭菌体；
[0053](3)冷却:采用薄板冷却器，将上述的发酵液冷却至40°C，并导入脱色罐中，待用；
[0054](4)活性炭处理:采用活性炭脱色，发酵液加入占发酵液质量0.1%的活性炭，保持40°C，搅拌20min进行脱色；
[0055](5)过滤:脱色后的发酵液进行趁热过滤，采用0.20 μ m钛棒过滤，分离直至滤液澄清；
[0056](6)离心固液分离:将上述澄清液进行离心，2000g离心lOmin，收集含γ -氨基丁酸的上清液；
[0057](7)离子交换法脱盐:将上述上清液以I倍床体积流速流过强酸性离子交换树脂，除去反应液中的氯化钠，待阳离子交换树脂吸附饱和后，然后用纯水洗到中性，用2mol/L稀氨水洗脱，氨水用量以树脂当量计；树脂用纯水洗到中性，再用盐酸再生备用；采用离子交换法脱盐法进行纯化，即可获得γ-氨基丁酸溶液，含量达到5% ;
[0058](8)喷射循环真空浓缩:采用外循环式真空浓缩，温度60°C，获得浓缩Y-氨基丁酸溶液，γ-氨基丁酸浓度达到30% ;
[0059](9)结晶干燥:γ-氨基丁酸浓溶液加入95%食用酒精，浓溶液与95%食用酒精用量的体积比为1: 5，析出γ-氨基丁酸沉淀结晶，搅拌冷却至室温，离心分离，95%酒精洗涤，甩干，60°C真空干燥4小时，得γ-氨基丁酸结晶，白色至淡黄色粉末或颗粒，纯度为95%。
[0060]实施例3
[0061]一种生产高纯度γ -氨基丁酸的方法，按照如下步骤进行:
[0062](1)28°C条件下，将希氏乳杆菌在乳酸细菌培养基中培养，220rpm振荡培养48h，获得种子菌液，按照接种量5%，在温度30°C的条件下供气在种子扩大培养基中培养72h，分批流加L-谷氨酸钠至扩大培养发酵液，加入量为扩大培养发酵液质量的5%，同时流加4mol/L的盐酸，控制pH6.0和反应温度40°C，继续反应5天，即停止反应；
[0063]所述乳酸细菌培养基的配方为:鱼蛋白胨或胰蛋白胨l0.0g，牛肉膏l0.0g，酵母浸粉5.0g,葡萄糖20.0g,柠檬酸铵2.0g,乙酸钠5.0g,硫酸锰0.05g，磷酸氢二钠2.0g,余量为去离子水，培养基总量为1L。
[0064]所述种子扩大培养基的配方为:鱼蛋白胨或胰蛋白胨10.0g，牛肉膏10.0g，酵母浸粉5.0g、葡萄糖20.0g，柠檬酸铵2.0g,乙酸钠5.0g，硫酸锰0.05g，磷酸氢二钠2.0g，谷氨酸钠50g，余量为反渗透水，调pH6.5，培养基总量为1L。
[0065](2)加热杀菌:发酵结束，将体系升温100°C，保持40min，杀灭菌体；
[0066](3)冷却:采用薄板冷却器，将上述的发酵液冷却至70°C，并导入脱色罐中，待用；
[0067](4)活性炭处理:采用活性炭脱色，发酵液加入占发酵液质量1.0%的活性炭，保持70°C，搅拌40min进行脱色；
[0068](5)过滤:脱色后的发酵液进行趁热过滤，采用0.24 μ m钛棒过滤，分离直至滤液澄清；
[0069](6)离心固液分离:将上述澄清液进行离心，4000g离心20min，收集含γ -氨基丁酸的上清液；
[0070](7)离子交换法脱盐:将上述上清液以2倍床体积流速流过强酸性离子交换树脂，除去反应液中的氯化钠，待阳离子交换树脂吸附饱和后，然后用纯水洗到中性，用2mol/L稀氨水洗脱，氨水用量以树脂当量计；树脂用纯水洗到中性，再用盐酸再生备用；采用离子交换法脱盐法进行纯化，即可获得γ-氨基丁酸溶液，含量达到5% ;
[0071](8)喷射循环真空浓缩:采用外循环式真空浓缩，温度90°C，获得浓缩Y-氨基丁酸溶液，γ-氨基丁酸浓度达到30% ;
[0072](9)结晶干燥:γ -氨基丁酸浓溶液加入95%食用酒精，浓溶液与95%食用酒精用量的体积比为1: 10，析出γ-氨基丁酸沉淀结晶，搅拌冷却至室温，离心分离，95%酒精洗涤，甩干，60°C真空干燥8小时，得γ-氨基丁酸结晶，白色至淡黄色粉末或颗粒，纯度为95%。
[0073]实施例4
[0074]一种生产高纯度γ -氨基丁酸的方法，按照如下步骤进行:
[0075](I) 27°C条件下，将希氏乳杆菌在乳酸细菌培养基中培养，ISOrpm振荡培养30h，获得种子菌液，按照接种量3%，在温度29°C的条件下供气在种子扩大培养基中培养56h，分批流加L-谷氨酸钠至扩大培养发酵液，加入量为扩大培养发酵液质量的5%，同时流加3mol/L的盐酸，控制pH 5.0和反应温度35°C，继续反应4天，即停止反应；
[0076]所述乳酸细菌培养基的配方为:鱼蛋白胨或胰蛋白胨l0.0g，牛肉膏l0.0g，酵母浸粉5.0g,葡萄糖20.0g,柠檬酸铵2.0g,乙酸钠5.0g,硫酸锰0.05g，磷酸氢二钠2.0g,余量为去离子水，培养基总量为1L。
[0077]所述种子扩大培养基的配方为:鱼蛋白胨或胰蛋白胨l0.0g，牛肉膏10.0g，马唐提取物5.0g、葡萄糖20.0g，朽1檬酸钱2.0g,乙酸钠5.0g，硫酸猛0.05g，磷酸氢二钠2.0g,谷氨酸钠50g，余量为反渗透水，调pH5.5，培养基总量为1L。
[0078]所述马唐提取物的提取方法如下:将马唐植株晒干，用3-7倍质量的30%异丙醇水溶液在60-70°C减压回流提取。提取2次，每次1-3小时，合并提取液，减压回收溶媒，浓缩提取液至原体积的0.1-0.05倍，向浓缩液中加入95%乙醇使乙醇浓度达到50%，沉淀过滤，用70%乙醇洗涤沉淀至百色，在60°C下真空干燥制成。
[0079](2)加热杀菌:发酵结束，将体系升温90°C，保持30min，杀灭菌体；
[0080](3)冷却:采用薄板冷却器，将上述的发酵液冷却至50°C，并导入脱色罐中，待用；
[0081](4)活性炭处理:采用活性炭脱色，发酵液加入占发酵液质量0.5%的活性炭，保持50 °C，搅拌30min进行脱色；
[0082](5)过滤:脱色后的发酵液进行趁热过滤，采用0.22 μ m钛棒过滤，分离直至滤液澄清；
[0083](6)离心固液分离:将上述澄清液进行离心，3000g离心15min，收集含γ -氨基丁酸的上清液；
[0084](7)离子交换法脱盐:将上述上清液以1.5倍床体积流速流过强酸性离子交换树月旨，除去反应液中的氯化钠，待阳离子交换树脂吸附饱和后，然后用纯水洗到中性，用2mol/L稀氨水洗脱，氨水用量以树脂当量计；树脂用纯水洗到中性，再用盐酸再生备用；采用离子交换法脱盐法进行纯化，即可获得γ-氨基丁酸溶液，含量达到10% ;
[0085](8)喷射循环真空浓缩:采用外循环式真空浓缩，温度70°C，获得浓缩Y-氨基丁酸溶液，γ-氨基丁酸浓度达到40% ;
[0086](9)结晶干燥:γ-氨基丁酸浓溶液加入95%食用酒精，浓溶液与95%食用酒精用量的体积比为1: 7，析出Y-氨基丁酸沉淀结晶，搅拌冷却至室温，离心分离，95%酒精洗涤，甩干，60°C真空干燥6小时，得γ-氨基丁酸结晶，白色至淡黄色粉末或颗粒，纯度为99%。
[0087]实施例5
[0088]一种生产高纯度γ -氨基丁酸的方法，按照如下步骤进行:
[0089](I) 27°C条件下，将希氏乳杆菌在乳酸细菌培养基中培养，ISOrpm振荡培养30h，获得种子菌液，按照接种量3%，在温度29°C的条件下供气在种子扩大培养基中培养56h，分批流加L-谷氨酸钠至扩大培养发酵液，加入量为扩大培养发酵液质量的5%，同时流加3mol/L的盐酸，控制pH 5.0和反应温度35°C，继续反应4天，即停止反应；
[0090]所述乳酸细菌培养基的配方为:鱼蛋白胨或胰蛋白胨l0.0g，牛肉膏l0.0g，酵母浸粉5.0g,葡萄糖20.0g,柠檬酸铵2.0g,乙酸钠5.0g,硫酸锰0.05g，磷酸氢二钠2