水稻低磷胁迫转录因子OsPHR2在小麦中的应用

文档序号:8407630阅读:618来源:国知局
水稻低磷胁迫转录因子OsPHR2在小麦中的应用
【技术领域】
[0001] 本发明属于转基因育种技术领域,具体涉及水稻低磷胁迫转录因子〇sPHR2在小 麦中的应用。
【背景技术】
[0002] 磷素是植物生长和发育所必需的大量元素之一,是核酸、磷脂和ATP等生命大分 子的重要组成成分,在植物的全生育期内起着极其重要的作用,全国土壤普查结果表明,我 国有近半数省(区)其总面积的50%以上的土壤有效磷含量在5mg/kg以下,土壤有效磷含 量在10mg/kg以下的占到80% -90%,土壤缺磷是作物生产的主要限制因素之一。当环境 中磷匮乏时,植物形态发育上的变化主要是根构型的变化,包括增加根茎比,侧根数目以及 根毛的数目和长度等。度等(陈Il等,2011 ;Abel et al,2011 ;Lopez_Bucio et al,2002 ; Ma et al,2001)。生理生化方面的变化包括高亲和Pi转运体的诱导表达,土壤分泌有机 酸,内源磷酸酶和RNase的诱导表达,以及增加有机酸和质子的释放,从而来增加磷的吸收 和再循环能力。
[0003] MYB转录因子中的MYB-CC家族基因成员是参与植物对营养成分饥饿胁迫调控过 程的重要基因。Wykoff等通过图位克隆的方法首先从拟南芥中克隆了 AtPHRl基因,并证明 该基因属于MYB-CC家族成员,参与了磷酸盐饥饿应答信号传导途径。浙江大学吴平教授课 题组从水稻中克隆了 2个拟南芥AtPHRl的同源基因 OsPHRl和0sPHR2,系统进化树分析表 明,OsPHRl和0sPHR2与AtPHRl同属于MYB-CC家族成员,两个基因都通过调节磷饥饿诱导 基因的表达而参与磷饥饿信号传导,具有相似的功能。但只有0sPHR2的超表达株系能够在 正常磷的环境下使水稻大量富集磷,且一些磷转运蛋白也相应的上调。在低磷条件下,过量 表达0sPHR2基因可提高植物根系对低磷信号的响应,植株根构型的改变较野生型株系更 为强烈,其结果是根增长,根毛增多,磷吸收利用率显著提高。0sPHR2是水稻磷信号调控体 系的重要因子,在土壤缺磷条件下可显著提高植物对磷的吸收。
[0004] 本发明将0sPHR2基因导入到普通小麦品种郑麦0856中,创制出了可稳定表达与 遗传,无选择标记,且磷素吸收利用效率较受体郑麦0856明显提高的转基因小麦材料,为 选育节本高效优质转基因小麦品种提供技术和材料支撑。

【发明内容】

[0005] 本发明目的在于提供水稻低磷胁迫转录因子0sPHR2在小麦中的应用,通过构建 了水稻低磷胁迫转录因子0sPHR2的线性表达载体,利用基因枪介导法将其导入到普通小 麦品种郑麦0856中,仓ij制出了可稳定表达与遗传,磷素吸收利用效率较受体郑麦0856明显 提尚的转基因小麦材料,为选育尚广优质资源尚效利用转基因小麦新品种提供技术和材料 支撑。
[0006] 本发明具体通过以下技术方案实现:
[0007] 本发明提供了水稻低磷胁迫转录因子0sPHR2在小麦中的应用,通过将水稻低磷 胁迫转录因子0sPHR2利用基因枪介导法导入到普通小麦品种郑麦0856中,获得可稳定遗 传与表达的转基因小麦植株。其具体通过以下步骤完成:
[0008] I) 0SPHR2基因线性表达载体的构建;
[0009] 2)将含有目的基因的线性载体转化小麦愈伤组织;
[0010] 3)抗性再生植株的PCR鉴定。
[0011] 进一步
[0012] 步骤⑴具体为利用HindIII酶切含有0sPHR2基因的环状表达载体 pWMB003-0sPHR2,获得含有目的基因的线性载体,该片段长3kb,是只含有玉米Ubiquitin 启动子、0sPHR2基因和Nos终止子的线性最小表达框。
[0013] 步骤(2)具体为以郑麦0856的幼胚为受体材料,在MS诱导培养基暗培养4-5d后, 置于高渗培养基渗透处理4-6h,将含有目的基因线性载体和含有bar基因线性载体,利用 基因枪介导法共转化小麦愈伤组织,在高渗培养基上继续处理16h,转至愈伤诱导培养基, 培养2周后转至草丁膦抗性筛选再生培养基,连续筛选2代,筛选的抗性苗转至生根培养 基,生根、壮苗后移栽,获得抗性再生植株。
[0014] 步骤(3)具体为提取再生植株的基因组DNA,根据0sPHR2基因序列设计了一对特 异性引物 PHR2P1 :5' -AATATGGAGGCTTTGAACC-3' 和 PHR2P2 :5' -TAACACACCCTTGGGAGTA-3', 扩增程序为:95°C 2分钟;95°C 20秒,58°C 30秒,72°C 30秒,38个循环;72°C 10分钟,目 的片段长度为476bp ;PCR反应体系为:10-50ng/ul基因组模板;10 μΜ的PCl和PC2各 0·5μ1;2·5μ1 IOXReaction Bu ??θ;τ;4μ1 dNTP mix(2.5mM) ;0·5μ1 Taq 酶,加水至 25 μ 1〇
[0015] 所述的MS诱导培养基为:MS+2mg/L 2, 4-D+O. 4%琼脂+3%蔗糖,ρΗ6· 2 ;
[0016] 所述的高渗培养基为:MS+2mg/L 2, 4-D+0. 7%琼脂+甘露醇+3%蔗糖,ρΗ5· 8 ;
[0017] 所述的草丁膦抗性筛选再生培养基为:l/2MS+0. 5mg/L ΝΑΑ+2. Omg/L ΚΤ+0. 4%琼 脂+3%蔗糖+4%??1',?册.2;
[0018] 所述的生根培养基为:l/2MS+0. 2mg/L ΝΑΑ+0. 4%琼脂+3%蔗糖,pH6. 5。
[0019] 本发明还提供了一种含有目的基因0sPHR2的线性表达载体,该片段长3kb,是只 含有玉米Ubiquitin启动子、0sPHR2基因和Nos终止子的线性最小表达框。
[0020] 本发明的有益效果为:长期以来,国内外将小麦近缘种属和其它物种的磷高效基 因导入普通小麦的主要技术途径为通过远缘杂交方法,但一直未获得突破性进展。其主要 原因为近缘种属和其它物种与小麦之间存在着生殖隔离。本发明技术方案可以打破物种之 间的生殖隔离,实现基因在不同物种中的交流,因此已成为解决农作物重要性状遗传改良 瓶颈问题的主要技术途径。、
【附图说明】
[0021] 图1是植物表达载体pWMB003-0sPHR2结构示意图;
[0022] 图2是转0sPHR2基因小麦植株基因组DNA扩增电泳图;I :0sT5-l ;2,3,4,5 :阴性 植株;6 :0sT5-7 ;7 :0sT5-28 ;8 :0sT5-167 ;9 :0sT5-183 ;10 :受体郑麦 0856 ;11 :阳性对照; M:Marker ;
[0023] 图3是转基因小麦株系目的基因0sPHR2的Southern杂交分析;M :1Kb DNALadder ;+ :阳性对照(质粒);1,2, 3 :受体郑麦0856 ;4, 5, 6 :转基因株系OsT5-28 ; 1,4一BamHI 酶切;2, 5-KpnI 酶切;3, 6- SacI 酶切;
[0024] 图4是转基因小麦0sPHR2基因的RT-PCR检测;,2, 3 :转基因株系0sT5-28 ;CK :未 转化对照(郑麦0856) ;A为0sPHR2基因的扩增产物,B为actin基因的扩增产物;
[0025] 图5是转基因小麦株系0sT5-28旗叶Western杂交结果;1 :转基因株系0sT5-28 ; 2 :阳性对照水稻;WT :未转化对照(郑麦0856);
[0026] 图6是不同条件下转基因小麦株系和对照的最长根长比较;
[0027] 图7是不同条件下转基因小麦株系和对照的根鲜重比较。
【具体实施方式】
[0028] 下面结合实施例对本发明做进一步的说明,以下所述,仅是对本发明的较佳实施 例而已,并非对本发明做其他形式的限制,任何熟悉本专业的技术人员可能利用上述揭示 的技术内容加以变更为同等变化的等效实施例。凡是未脱离本发明方案内容,依据本发明 的技术实质对以下实施例所做的任何简单修改或等同变化,均落在本发明的保护范围内。
[0029] 实施例1
[0030] 实验用质粒提取试剂盒、琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒均购自百泰克公司,Prime Star TaqDNA聚合酶、大肠杆菌(Escherichia coli)菌株DH5a感受态细胞制备试剂盒均 为TaKaRa公司产品,限制性内切酶为MBI公司产品,氨苄青霉素为Amersco公司产品,其 余试剂为进口或国产分析纯。
[0031] l)0sPHR2基因线性表达载体的构建
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