兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白基因重组杆状病毒及疫苗的制作方法

专利名称：兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白基因重组杆状病毒及疫苗的制作方法
专利说明兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白基因重组杆状病毒及疫苗 技术领域 本发明涉及兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白重组杆状病毒及基因工程疫苗，属于生物制药领域。

背景技术：
兔病毒性出血症，又称兔瘟，是由兔病毒性出血症病毒(RHDV)引起的一种以急性、高度传染性、大面积死亡为特征的兔传染病，感染兔通常48～72h死亡，主要特征为传染性极强、呼吸系统出血、肝坏死、脏器水肿、淤血和出血等变化，给全世界养兔业造成了巨大的经济损失。国际兽医局将该病列为B类传染病，我国农业部96号令颁布为二类疫病。RHD出现比较突然且流行速度极快，现有研究结果表明世界范围内的所有RHDV分离株均为同一血清型，无论是遗传特性还是抗原性都很稳定。目前用兔病毒性出血症组织灭活疫苗免疫是预防该病的主要措施，疫苗的制备过程中必须以RHDV感染致死的兔内脏组织为原料。近年来，随着兔产品等行业的兴起以及其他动物疫苗等对家兔的需求的增加，市场对兔病毒性出血症疫苗的需求量增加了许多，但是用于制备组织灭活疫苗的非免疫兔的供应量却很不稳定，造成传统的组织灭活苗的成本不断增加，加之组织灭活苗存在散播强毒的潜在危险等种种缺点，而RHDV至今没有在细胞上传代成功，严重制约了更加安全、稳定的兔病毒性出血症疫苗的研制与生产，使人们对兔病毒性出血症疫苗的研究转向了既能起到保护作用，又能解决生物安全问题的基因工程疫苗的研制。
近年来的研究认为，RHDV属杯状病毒，含有一条单股正链RNA，由7437个核苷酸组成，与一般的杯状病毒不同，RHDV只有2个开放阅读框架(ORF)，并由ORFI的3′端部分序列编码RHDV衣壳蛋白VP60，其基因片段长度为1740bp，共编码580个氨基酸，VP60是RHDV唯一的结构蛋白，与诱导抗病毒感染的免疫反应直接相关。
杆状病毒系统具有类似于哺乳动物细胞的翻译后修饰功能，使重组蛋白在结构和功能上更接近天然蛋白。由于杆状病毒只能感染非脊椎动物，且其感染的宿主昆虫细胞也不能寄生于兔体内，所以兔体内没有针对杆状病毒蛋白或昆虫细胞蛋白的抗体，因此，利用该系统表达的VP60蛋白可作为疫苗抗原蛋白免疫家兔从而起到预防兔病毒性出血症的作用。


发明内容
技术问题 本发明的目的是通过分子生物学技术构建杆状病毒重组载体，提供一种免疫效果好、工艺简便的兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白基因工程疫苗及其制备方法。
技术方案 本发明是通过RT-PCR扩增兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白VP60全基因，通过分子生物学技术构建杆状病毒重组载体，转染Sf9细胞，使VP60基因获得表达，然后以重组杆状病毒表达的兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白VP60作为抗原，加上相应的佐剂制成预防兔病毒性出血症的基因工程疫苗。
一、表达兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白VP60的重组杆状病毒的获得 1)兔病毒性出血症病毒总RNA的提取 用DEPC处理过的水按体积比1∶10加入发生兔病毒性出血症的兔肝脏组织中，研磨成悬液，装入用DEPC处理过的1.5mL EP管中，于-20℃反复冻融3次，在高速冷冻离心机上，以7200r/min，离心20min，取上清200μL，加入Trizol 800μL，振荡混匀后，室温放置10min，加入氯仿210μL，剧烈振荡后，室温放置1min，4℃，10000r/min离心15min，取上层水相750μL，加入0.5mL异丙醇，混匀，-20℃放置15min，4℃10000r/min离心10min，去上清，缓缓加入75％乙醇1mL洗涤，4℃8000r/min离心5min，去上清，室温干燥20min，加入DEPC水10μL，使充分溶解； 2)设计合成以下引物 P15’-ATAGTCGACATGGAGGGCAAAG-3’ Sal I P25’-GCCTCGAGTCAGACATAAGAAAAGCCA-3’Xho I 3)扩增衣壳蛋白VP60基因 反转录体系为10×Buffer 2μl、10mM dNTPs 2μl、下游引物1μl、RNA酶抑制剂0.5μl、RNA模板12μl，AMV反转录酶0.5μl，DEPC水2μl，总体积为20μl，瞬间离心混匀，65℃反应15min，42℃孵育1h，95℃5min，-20℃保存备用； PCR反应体系为10×Reaction buffer 2.5μl、25mM MgCl2 1.5μl、2.5mM dNTPS0.5μl、50mM P1 0.5μl、50mM P2 0.5μl、模板RNA 4.0μl、ddH2O 15μl、EX TaqTMpolymerase 0.5μl，总体积25μl，瞬间离心混匀，采用热盖进行PCR扩增反应94℃变性3min，94℃变性1min，57℃退火1min，72℃延伸2min，30个循环后，72℃延伸10min，结束反应；对PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳鉴定，获得的衣壳蛋白VP60基因扩增片断大小为1740bp； 4)重组杆状病毒质粒Bacmid-VP60的构建 将扩增的VP60基因先克隆入转移载体pFastBacTM1中，得到重组转移载体pFastBacTM1-VP60，然后将pFastBacTM1-VP60质粒转化含有穿梭载体Bacmid的E.coliDH10Bac感受态细胞，转化产物涂于含有三种抗生素、X-gal和IPTG的LB平板，37℃培养48h后，挑选白色菌落培养并提取质粒，以此为模板，以通用pUCM13上游引物与特异性VP60下游引物进行PCR鉴定，阳性的重组质粒命名为Bacmid-VP60； 5)转染将重组杆状病毒质粒Bacmid-VP60转染Sf9细胞，经鉴定纯化获得重组病毒，并冻存于4℃、-20℃和液氮中； 6)重组病毒的鉴定 (1)RT-PCR鉴定 收集感染重组病毒的细胞，以目的基因上下游引物进行RT-PCR，1％琼脂糖凝胶电泳鉴定，结果显示电泳条带为1740bp，与目的基因大小一致，说明目的基因已经随病毒基因组整合入细胞中。
(2)表达产物的鉴定 间接免疫荧光实验(IFA) 将重组病毒接种对数生长期的细胞，培养至发生病变时用间接免疫荧光法(IFA)检测重组蛋白的表达，结果显示，重组感染的细胞具有很强的特异性荧光，而对照组细胞无特异的荧光，说明VP60蛋白得到表达，且表达产物存在于细胞内。
血凝试验(HA)和血凝抑制试验 重组病毒感染细胞裂解上清和细胞培养上清均能凝集1％人“O”型红细胞悬液。同时表达的VP60蛋白的血凝特性可被RHDV高免血清所抑制，表明表达的VP60蛋白具有与RHDV相似的血凝活性。重组病毒真核表达的病毒性出血症病毒衣壳蛋白可用作兔病毒性出血症的诊断抗原方面。
二、表达重组兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白的动物免疫保护效果 测定重组兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白的HA效价，用灭菌生理盐水稀释至HA效价在26-28之间，按比例加入氢氧化铝胶佐剂，按不同剂量分组免疫非免疫家兔，并设对照组，于免疫后第22天以HA效价大于10的RHDV强毒肝脏悬液1mL攻击，观察14天，并记录结果，结果显示，免疫HA效价26重组蛋白1毫升的家兔就能抵抗兔病毒性出血症强毒的攻击。
三、疫苗制备培养Sf9细胞至对数生长期，接种相应重组病毒，等细胞有病变后5天收毒，测血凝HA效价，用灭菌磷酸盐缓冲溶液PBS PH 7.2调整抗原溶液，以2‰甲醛溶液灭活后，按抗原铝胶佐剂为9∶1比例加入佐剂，混匀，即为获得的兔病毒性出血症基因工程疫苗。
有益效果本发明的特点和优点如下本发明选取兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白VP60全基因作为目的基因进行表达，原因是此蛋白能诱导抗病毒性出血症病毒感染免疫反应，而且此蛋白是病毒性出血症病毒的唯一结构蛋白，具有良好的免疫原性；真核表达系统具有类似于哺乳动物细胞的翻译后修饰功能，使重组衣壳蛋白在结构和功能上更接近天然蛋白，试验的结果显示，表达的蛋白具有与病毒性出血症病毒相同的生物活性，同时真核表达载体系统是一种表达、递呈外源抗原的有效系统，重组病毒可激发人和多种动物特异性体液和细胞免疫；杆状病毒表达系统只能感染非脊椎动物，且其感染的宿主昆虫细胞也不能寄生于兔体内。因此，利用此系统表达的VP60蛋白制备成基因工程疫苗具有很好的生物安全性；表达的重组蛋白无需特殊处理纯化就可用于疫苗配制，操作简便。
事实证明，本发明表达的重组蛋白具有良好的抗原性和与兔病毒性出血症病毒相似的血凝活性，因此是很好的兔病毒性出血症疫苗抗原。动物免疫试验结果显示，用重组兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白制成的疫苗免疫非免疫家兔，免疫后以RHD强毒攻击，免疫家兔获得100％的保护作用，说明本发明在实际应用中具有良好的免疫效力，在兔病毒性出血症预防控制方面具有重要的应用价值，同时具备良好的生物安全性。



图1杆状病毒表达系统RHDV VP60基因RT-PCR结果 1.RT-PCR产物；2.DNA分子量标准(DL-2000) 图2杆状病毒表达系统重组转移载体的酶切鉴定 1.限制性内切酶消化重组转移载体(Xho I/Sal I)；2.DNA分子量标准(DL-2000)；3.DNA分子量标准(DL-15000) 图3杆状病毒表达系统重组Bacmid的PCR鉴定 1.DNA分子量标准(DL-15000)；2.DNA分子量标准(DL-2000)；3，4.重组Bacmid PCR鉴定；5.Bacmid PCR鉴定 图4杆状病毒表达系统中感染Bacmid-VP60的Sf9细胞间接免疫荧光结果
具体实施例方式 一、兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白VP60基因的扩增和T/A克隆 1、兔病毒性出血症病毒(RHDV)总RNA的提取 用DEPC(diethypyrocarbonate焦碳酸二乙酯)处理过的水按体积比1∶10加入发生兔病毒性出血症的兔肝脏组织中，研磨成悬液，装入用DEPC处理过的1.5mL EP管中，于-20℃反复冻融3次，在高速冷冻离心机上，以7200r/min，离心20min，取上清200μL，加入Trizol(TaKaRa公司)800μL，振荡混匀后，室温放置10min，加入氯仿210μL，剧烈振荡后，室温放置1min，4℃，10000r/min离心15min，取上层水相750μL，加入0.5mL异丙醇，混匀，-20℃放置15min，4℃10000r/min离心10min，去上清，缓缓加入75％乙醇1mL洗涤，4℃8000r/min离心5min，去上清，室温干燥20min，加入DEPC水10μL，使充分溶解。
2、设计合成引物 根据GenBank数据库中的RHDV基因组序列VP60序列(AY523410)，利用Primer 5.0软件自行设计，由大连宝生物工程有限公司(TaKaRa)合成引物 P15’-ATAGTCGACATGGAGGGCAAAG-3’ (Sal I) P25’-GCCTCGAGTCAGACATAAGAAAAGCCA-3’(Xho I) 下划线部分为酶切位点 3、扩增衣壳蛋白VP60基因 反转录体系为10×Buffer 2μl、10mM dNTPs 2μl、下游引物1μl、RNA酶抑制剂0.5μl、RNA模板12μl，AMV反转录酶0.5μl，H2O(DEPC处理)2μl，总体积为20μl，瞬间离心混匀，65℃反应15min，42℃孵育1h，95℃5min，-20℃保存备用。
PCR反应体系为10×Reaction buffer 2.5μl、25mM MgCl2 1.5μl、2.5mM dNTPS0.5μl、50mM P1 0.5μl、50mM P2 0.5μl、模板RNA 4.0μl、ddH2O 15μl、EX TaqTMpolymerase 0.5μl，总体积25μl，瞬间离心混匀，采用热盖进行PCR扩增反应94℃变性3min，94℃变性1min，57℃退火1min，72℃延伸2min，30个循环后，72℃延伸10min，结束反应。对PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳鉴定，获得的衣壳蛋白VP60基因扩增片断大小为1740bp； 4、T/A克隆与鉴定 电泳后将目的片段切下，采用核酸凝胶回收试剂盒Gel Extraction Kit(TaKaRa公司)进行纯化PCR产物，然后按照pMD-19T-Vector试剂盒说明，将目的片段克隆入pMD-19T-Vector(TaKaRa公司)，转化大肠杆菌(Escherichia coli)DH5α感受态细胞。挑选单菌落培养并提取质粒，经相应限制性酶切及电泳鉴定，获得重组质粒pMD-19T-VP60，阳性克隆送至TaKaRa(大连市)进行测序。
5、扩增的VP60基因的序列比较与分析利用DNAstar 5.0序列分析软件对VP60的测序结果与GenBank上发表的VP60基因进行核苷酸序列的同源性分析。
二、重组杆状病毒质粒Bacmid-VP60的构建 用限制性内切酶Sal I和Xho I分别消化供体质粒pFastBacTM1(购自Invitrogen公司)和pMD-19T-VP60，回收目的片段，用T4DNA Ligase 4℃连接12h后，转化大肠杆菌DH5α感受态细胞。筛选阳性克隆，得到重组转移载体pFastBacTM1-VP60，将pFastBacTM1-VP60质粒转化含有穿梭载体Bacmid的E.coli DH10Bac感受态细胞(购自Invitrogen公司)和，在LB液体培养基37℃培养4h后，取100μl转化产物涂于含有50μg/ml卡那霉素、7μg/ml庆大霉素、10μg/ml四环素以及100μg/ml X-gal和20μg/mL IPTG的LB平板，37℃培养48h后，挑选白色菌落，在同样的含三种抗生素的LB平板上继续接种传代一次，获得纯培养，接种含有三种抗生素的LB培养基中，37℃振摇(180r/min)培养24h，然后用提取高分子量的重组穿梭质粒DNA的专用溶液I、II、III按下列步骤提取Bacmid质粒(见杆状病毒表达系统手册，C版，附录章，提取重组BacmidDNA节，第51-52页，2002，tech_service@invitrogen.com)。以重组Bacmid DNA为模板，以通用pUCM13上游引物与特异性VP60下游引物进行PCR鉴定。同时设立未插入外源基因片段的DHl0Bacmid质粒对照组，以pUCM13上下游引物进行PCR鉴定。PCR反应体系及PCR扩增反应条件见杆状病毒表达系统手册。0.8％琼脂糖凝胶电泳，鉴定为阳性的重组质粒命名为Bacmid-VP60。
三、转染细胞，获得重组病毒 1转染细胞和纯化 以LipofectaminTM2000为共转染试剂，按照说明，将Bacmid-VP60转染Sf9单层细胞。转染后每12h观察一次，直到细胞病变明显时，收集细胞及上清液，作为重组杆状病毒原液-20℃保存。将含目的基因VP60的重组杆状病毒命名为Bac-VP60。将第一代病毒液冻融两次后以1％体积比接种Sf9细胞(购自Invitrogen公司)传代，得到第2代重组病毒。以第2代重组病毒为毒种进行蚀斑纯化。
2鉴定 (1)RT-PCR鉴定 收集第2代感染重组病毒的Sf9细胞，按照前文兔病毒性出血症病毒(RHDV)总RNA提取方法提取细胞RNA，以目的基因上下游引物进行RT-PCR，1％琼脂糖凝胶电泳鉴定，结果显示电泳条带为1740bp，与目的基因大小一致，说明目的基因已经随杆状病毒基因组整合入Sf9细胞中。
(2)表达产物的鉴定 间接免疫荧光检测(IFA) 在24孔细胞培养板上，将纯化的重组病毒接种对数生长期的Sf9细胞，培养至发生病变时用间接免疫荧光法(IFA)检测重组蛋白的表达，结果显示，Bacmid-VP60感染的Sf9细胞具有很强的特异性荧光，而Bacmid感染Sf9对照细胞无特异的荧光，说明VP60蛋白得到表达，且表达产物存在于昆虫细胞内。
血凝试验(HA)和血凝抑制(HI)试验 分别取感染重组病毒的细胞裂解上清和细胞培养上清50μl于圆底大孔血凝板以生理盐水作2×倍比稀释后，加入等体积1％人“O”型红细胞悬液，振荡均匀后，置于4℃作用45分钟，观察结果(HA)，同时以其他重组杆状病毒作为阴性对照，以RHD病兔肝脏1∶5匀浆上清作为阳性对照。另外，于圆底大孔血凝板加入50μL RHDV血清，然后以生理盐水作2×倍比稀释后，加入4个血凝单位的表达蛋白于每孔，将血凝板置37℃作用30分钟，每孔加1％人“O”型红细胞悬液50μl，立即摇匀，置4℃作用45分钟，观察结果(HI)。结果显示，重组病毒感染细胞裂解上清和细胞培养上清均能凝集1％人“O”型红细胞悬液，而其他重组杆状病毒不能凝集1％人“O”型红细胞悬液，阳性对照成立，表明表达的VP60蛋白具有与RHDV一样的血凝特性。当接种重组病毒后120h收毒，发现感染细胞裂解上清和细胞培养上清血凝效价均可达212以上。同时表达的VP60蛋白的血凝特性可被RHDV高免血清所抑制。
四免疫保护试验 1免疫抗原的制备 将重组杆状病毒接种于Sf9细胞，120h后收毒，测表达蛋白的HA效价，用无菌灭菌生理盐水稀释至HA效价28。
2试验动物分组、接种及攻毒 将15只非免疫家兔于免疫前采血测HA效价，并分成3组，每组5只，第一组注射1mL上述抗原，第二组注射2mL上述抗原，第三组作为对照组，注射生理盐水，免疫期间每隔7天采一次血并测HI效价，于免疫后第22天以HA效价大于10的RHD强毒肝脏悬液(肝组织∶灭菌生理盐水＝1∶9)1mL攻击，观察14天，并记录结果。
3试验结果 15只非免疫家兔于免疫前采血测HI效价在20～23，第一组于攻毒后14天内全部健活，保护率为100％，第二组于攻毒后14天内全部健活，保护率为100％，这两组家兔在攻毒前血清HI效价在25～27之间，第三组攻毒后三天内全部死亡，症状为典型的兔病毒性出血症(表1)。
表1 不同剂量免疫后对RHDV的保护性 五疫苗制备培养Sf9细胞至对数生长期，接种相应重组病毒，等细胞有病变后5天收毒，测血凝HA效价，用灭菌磷酸盐缓冲溶液PBS PH 7.2调整抗原溶液，以2‰甲醛溶液灭活后，按抗原铝胶佐剂为9∶1比例加入佐剂，混匀，即为获得的兔病毒性出血症基因工程疫苗。
动物免疫试验结果显示，用重组兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白制成的疫苗免疫非免疫家兔，免疫后以RHD强毒攻击，免疫家兔获得100％的保护作用，说明本发明在实际应用中具有良好的免疫效力，在兔病毒性出血症预防控制方面具有重要的应用价值，同时具备良好的生物安全性。
序列表
<110>江苏省农业科学院
<120>兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白基因重组杆状病毒及疫苗
<130>说明书
<140>00
<141>2008-01-12
<160>2
<170>PatentIn version 3.1
<210>1
<211>22
<212>DNA
<213>人工合成
<220>
<221>引物
<222>(1)..(22)
<223>
<400>1
atagtcgaca tggagggcaa ag 22
<210>2
<211>27
<212>DNA
<213>人工合成
<220>
<221>引物
<222>(1)..(27)
<223>
<400>2
gcctcgagtc agacataaga aaagcca 2权利要求
1.兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白基因重组杆状病毒，其特征是，由以下步骤构建而成
1)兔病毒性出血症病毒总RNA的提取用焦碳酸二乙酯DEPC水按体积比1∶10加入发生兔病毒性出血症的兔肝脏组织中，研磨成悬液，装入用DEPC处理过的1.5mL EP管中，于-20℃反复冻融3次，在高速冷冻离心机上，以7200r/min，离心20min，取上清200μL，加入Trizol 800μL，振荡混匀后，室温放置10min，加入氯仿210μL，剧烈振荡后，室温放置1min，4℃，10000r/min离心15min，取上层水相750μL，加入0.5mL异丙醇，混匀，-20℃放置15min，4℃ 10000r/min离心10min，去上清，缓缓加入75％乙醇1mL洗涤，4℃ 8000r/min离心5min，去上清，室温干燥20min，加入DEPC水10μL，使充分溶解；
2)设计合成以下引物
P15’-ATAGTCGACATGGAGGGCAAAG-3’ Sal I
P25’-GCCTCGAGTCAGACATAAGAAAAGCCA-3’Xho I
3)扩增衣壳蛋白VP60基因
反转录体系为10×Buffer 2μl、10mM dNTPs 2μl、下游引物1μl、RNA酶抑制剂0.5μl、RNA模板12μl，AMV反转录酶0.5μl，DEPC水2μl，总体积为20μl，瞬间离心混匀，65℃反应15min，42℃孵育1h，95℃5min，-20℃保存备用；
PCR反应体系为10×Reaction buffer 2.5μl、25mM MgCl2 1.5μl、2.5mM dNTPS0.5μl、50mM P1 0.5μl、50mM P2 0.5μl、模板RNA 4.0μl、ddH2O 15μl、EX TaqTMpolymerase 0.5μl，总体积25μl，瞬间离心混匀，采用热盖进行PCR扩增反应94℃变性3min，94℃变性1min，57℃退火1min，72℃延伸2min，30个循环后，72℃延伸10min，结束反应；对PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳鉴定获得的衣壳蛋白VP60基因扩增片断大小为1740bp；
4)重组杆状病毒质粒Bacmid-VP60的构建
将扩增的VP60基因先克隆入转移载体pFastBacTM1中，得到重组转移载体pFastBacTM1-VP60，然后将pFastBacTM1-VP60质粒转化含有穿梭载体Bacmid的E.coliDH10Bac感受态细胞，转化产物涂于含有三种抗生素、X-gal和IPTG的LB平板，37℃培养48h后，挑选白色菌落培养并提取质粒，以此为模板，以通用pUCM13上游引物与特异性VP60下游引物进行PCR鉴定，阳性的重组质粒命名为Bacmid-VP60；
5)转染将重组杆状病毒质粒Bacmid-VP60转染Sf9细胞，经鉴定纯化获得重组病毒，并冻存于4℃、-20℃和液氮中。
2.权利要求1所述兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白基因重组杆状病毒制备的疫苗。
3.权利要求2所述疫苗的制备方法，包括培养Sf9细胞至对数生长期，接种相应重组病毒，等细胞有病变后5天收毒，测血凝HA效价，用灭菌磷酸盐缓冲溶液PBS PH7.2调整抗原溶液，以2‰甲醛溶液灭活后，按抗原铝胶佐剂为9∶1比例加入佐剂，混匀，即为获得的兔病毒性出血症基因工程疫苗。
4.权利要求1所述重兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白基因重组杆状病毒真核表达的病毒性出血症病毒衣壳蛋白在制备兔病毒性出血症诊断抗原方面的应用。
全文摘要
本发明涉及兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白重组杆状病毒及基因工程疫苗，属于生物制药领域。通过RT-PCR扩增兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白VP60全基因，通过分子生物学技术构建杆状病毒重组载体，转染Sf9细胞，使VP60基因获得表达，然后以重组杆状病毒表达的兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白VP60作为抗原，加上相应的佐剂制成兔病毒性出血症的基因工程疫苗。本发明可以提供一种免疫效果好、工艺简便的兔病毒性出血症病毒衣壳蛋白基因工程疫苗，用于预防控制兔病毒性出血症。
文档编号C12N15/866GK101215576SQ200810019269
公开日2008年7月9日 申请日期2008年1月18日 优先权日2008年1月18日
发明者芳 王, 薛家兵, 范志宇, 波 胡, 徐为中, 张则斌, 何孔旺 申请人:江苏省农业科学院