水稻转录因子Os11g31340.1基因CDS序列的应用的制作方法

文档序号:514999阅读:432来源:国知局
水稻转录因子Os11g31340.1基因CDS序列的应用的制作方法
【专利摘要】本发明涉及水稻转录因子Os11g31340.1基因CDS序列的应用,其是利用转录因子激活基序VP64与水稻转录因子Os11g31340.1基因CDS序列融合构建得到组成型转录因子,并转化到农作物如水稻中,从而改良水稻籽粒性状,如增加水稻籽粒长度。对于详细阐明调控种子发育机理具有重要的理论价值,并且可以通过转基因手段,改良水稻的粒型,因此在生产实践中也具有重要意义。
【专利说明】水稻转录因子0s11g31340. 1基因CDS序列的应用

【技术领域】
[0001] 本发明涉及基因工程领域,具体地说,涉及水稻转录因子0sllg31340. 1基因⑶S 序列的应用。

【背景技术】
[0002] 水稻(OryzasativaL.)是我国和全世界最重要的三大粮食作物之一,是世界一 半以上人口的主食,也是一个重要的功能基因研究的模式植物。与其相关的遗传学和分子 生物学研究一直倍受研究者的重视,转录水平的调控是基因表达调控的重要方式。当前水 稻增产的研究较依赖于有限的水稻种质资源,传统的杂交育种优势正在逐渐减弱,而水稻 转基因技术有可能发掘水稻进一步增产的潜力。
[0003] 在植物界中,能形成种子的植物约占植物总数的三分之二以上,作为重要的繁殖 器官,种子同时也为人们提供食物来源,水稻就是其中的重要代表,种子来源于受精后的胚 珠。从分子生物学的角度来说,种子的发育和萌发是一个有次序的、选择性的基因表达过 程。而转录因子在基因表达的精确调控中起到了关键性的作用。
[0004] 近些年,有关籽粒大小性状的分子遗传调控机制研究,已取得了一定进展,如:研 究者们利用QTL定位了一些籽粒大小相关基因,其中GS3编码一个膜蛋白,是籽粒大小和 器官大小的负调控因子;张启发等(YiboLi,ChuchuanFan,QIfaZhang,etal. (2011) NaturalvariationinGS5playsanimportantroleinregulatinggrainsizeand yieldinrice.NatureGennetics)研究发现GS5编码一个调节籽粒大小的丝氨酸羧肽酶, 是控制籽粒大小的正调节因子,过表达GS5可使水稻籽粒明显变大;转录因子在调控籽粒 大小方面起着非常重要的作用,0sWRKY78可以调节水稻茎的伸长和种子的发育,0sWRKY78 突变体可以使茎杆变矮化影响籽粒发育;螺旋-环-螺旋蛋白(bHLH)类转录因子能通过调 控外稃和内稃细胞的长度影响谷粒的大小;PGLl碱性螺旋-环-螺旋蛋白(bHLH)异源二 聚体作为结合DNA的bHLH的抑制子过表达后可增加籽粒长度和重量。
[0005] VP64是4个VP16功能域基序融合在一起组成的,是一类增强子。VP16最早在动 物病毒基因中发现,现已被广泛应用到植物中,主要用于植物基因的转录调控的研究中。转 录因子在体内的作用大体上可以分成两种:一种为转录增强子,另一种为转录抑制子。当转 录因子和VP16功能域基序融合之后,它就会增强转录因子的功能,从而在转基因植株中出 现更明显的表型变化。
[0006] 基因的转录调控影响许多生理活动,如细胞周期、代谢平衡以及环境应答等 (Riechmannetal.,2000)。转录因子调控下游基因的表达,从而成为调节各种生理活动的 关键环节。植物特有的NAC转录因子数量众多,广泛分布于陆生植物中,构成了最大的转录 因子家族之一(Duvaletal.,2002 ;0okaetal.,2003)。NAC转录因子在多个生长发育和 胁迫应答过程中发挥着重要作用,已成为当前植物基因功能及表达网络调控研究中的热点 (Olsenetal·,2005a;Zhengetal·,2009)。目前NAC家族转录因子 0sllg31340.1 对种 子大小形状调控机制的研究及认识很少,因此该转录因子的研究在理论上为进一步理解植 物种子和器官发育调控的分子机理提供了新的线索;在实践上也将为作物高产育种提供理 论基础。


【发明内容】

[0007] 本发明的目的是提供水稻转录因子0sllg31340. 1基因⑶S序列的应用。
[0008] 本发明首先提供了一种组成型水稻转录因子,即融合蛋白(VP16) 4-Linker-〇sllg31340. 1〇
[0009] 其中,VP16为来自单纯疱疹病毒的VP16蛋白,将4个VP16功能域基序融合在一 起可构成一类增强子,增强转录因子的功能,从而在转基因植株中出现更明显的表型变化。 上述融合蛋白中涉及的(VP16)4,即VP64是由4个VP16蛋白的氨基酸序列以Gly-Ser为间 隔形成的融合蛋白,其氨基酸序列和核苷酸序列分别如SEQIDNo. 10和4所示。
[0010] 上述融合蛋白中涉及的Linker由39个柔性氨基酸串联而成,其序列如SEQID No. 9所示,其核苷酸序列如SEQIDNo. 3所示
[0011] 上述融合蛋白中涉及的水稻转录因子Osllg31340. 1基因⑶S序列的氨基酸序列 如SEQIDNo. 2所示,或该序列经替换、缺失或添加一个或几个氨基酸形成的具有同等功能 的氨基酸序列。
[0012] 本发明还提供编码所述融合蛋白的基因,以及在严格条件下,可与该基因的核苷 酸序列杂交的核苷酸序列。
[0013] 本发明还提供含有编码所述融合蛋白的基因的载体工程菌及细胞系。
[0014] 所述载体的构建方法如下:
[0015] (1)在植物转录因子数据库(http://rice,plantbiology.msu.edu/analyses_ search_locus.shtml)中找到0sllg31340. 1基因,根据CDS序列设计PCR扩增引物对,其为 正向引物F:5' -CAAAAAAGCAGGCTTCATGGCCAGCCCTGGAGT-3' 和反向引物R:5'-CAAGAMGCTGG GTCGTTCATGCCATGGCCATAAC-3' ;
[0016] (2)以野生日本晴水稻总cDNA为模板,进行PCR获得0sllg31340. 1全序列;
[0017] (3)将PCR产物克隆到连接pDONER克隆载体上,经测序鉴定得到与目的基因完全 相同的序列;
[0018] (4)以植物双元表达载体pCambial301_UbiN(图6)左右边界包含的序列为骨架 序列,通过体外重组,将ubipromoter-VP64-Gateway表达单兀、35Spromoter-asRED表达 单元和35Spromoter-hyg表达单元与之融合构建,得到载体nVP64-hyg-asRED的全序列如 SEQIDNo. 5 所示;
[0019] (5)通过LR反应将0sllg31340. 1基因的⑶S序列构建到其目的基因的5'端连有 VP64编码基因的植物表达载体nVP64-hyg-asRED上,获得载体ubi:VP64-0s11g31340. 1,载 体全序列如SEQIDNo. 6所示。
[0020] 上述表达载体可通过使用Ti质粒、植物病毒载体、直接DNA转化、微注射、电穿 孔等常规生物技术方法导入植物细胞中(Weissbach,1998,MethodforPlantMolecular BiologyVIII,AcademyPress,NewYork,第 411-463 页;Geiserson和Corey,1998,Plant MolecularBiology,2ndEdition)。
[0021]本发明还提供一种转基因水稻植株的构建方法,具体为,采用农杆菌介导的方法, 将前述载体转入水稻愈伤组织中,用含诱导剂和农杆菌的AAM培养液进行转化,转化后的 材料经过共培养-筛选-分化-生根-转基因苗的锻炼和移栽,筛选转基因水稻植株。
[0022] 本发明还提供编码所述融合蛋白的基因在改良水稻籽粒性状(如增加水稻粒长) 中的应用。
[0023] 本发明还提供了用于扩增水稻转录因子0sllg31340. 1基因的引物对,其为正向引 GTTCATGCCATGGCCATAAC-3' 。
[0024] 本发明还进一步提供水稻转录因子0sllg31340. 1基因在调控水稻籽粒性状中的 应用。
[0025] 前述的应用,是将水稻转录因子Osllg31340. 1基因的⑶S序列通过Gateway系统 构建到4个转录因子激活基序VP16的下游,转化水稻,从而改良转基因水稻籽粒的性状。
[0026] 本发明首次利用转录因子激活基序VP64 (即4个转录因子激活基序VP16)与水稻 转录因子0sllg31340. 1基因融合构建得到组成型转录因子,并转化到水稻中,从而改良水 稻籽粒性状,如水稻籽粒长度增加。对于详细阐明调控种子发育机理具有重要的理论价值, 并且可以通过转基因手段,改良水稻的粒型,因此在生产实践中也具有重要意义。

【专利附图】

【附图说明】
[0027] 图1为本发明实施例1中nVP64-hyg_asRED载体图谱。
[0028] 图2为本发明实施例1中ubi:VP64-0sllg31340. 1载体图谱。
[0029] 图3为本发明PCR检测VP64-0sllg31340. 1转基因阳性株系,其中WT为野生型水 稻 'kitaake',V2401-12、VV2401-28 为VP64-0sllg31340. 1 转基因水稻株系。
[0030] 图4为本发明转基因材料籽粒性状的表型长度的比较,其中WT为野生型水稻 'kitaake',V2401-12、VV2401-28 为转基因水稻株系。
[0031] 图5为本发明转基因材料籽粒性状数据统计分析,其中WT为野生型水稻 'kitaake',V2401-12、VV2401-28 为转基因水稻株系。
[0032] 图6为本发明实施例1中植物双元表达载体pCambial301_UbiN的图谱。

【具体实施方式】
[0033] 以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。
[0034] 实施例IOsllg31340. 1基因⑶S序列的分离和植物表达载体构建
[0035] 在植物转录因子数据库(http://rice.plantbiology.msu.edu/analyses_ search_locus.shtml)中找到0sllg31340. 1基因,根据其⑶S序列设计PCR扩增引物,根 据其序列设计PCR扩增引物(F:5'-CAAAAAAGCAGGCTTCATGGCCAGCCCTGGAGT-3'和反向引物 R:5'-CAAGAAAGCTGGGTCGTTCATGCCATGGCCATAAC-3')。
[0036] 以野生型日本晴水稻总cDNA为模板,进行PCR获得Osllg31340. 1基因的CDS序 列,其核苷酸序列如SEQIDNo. 1所示。
[0037] 2、植物表达载体的构建
[0038] 将水稻转录因子0sllg31340. 1基因的⑶S序列通过Gateway系统构建到4个转 录因子激活基序VP16编码基因(SEQIDN0.4)的下游。
[0039] 2. 1将上述PCR产物克隆到pDONER克隆载体上
[0040] 按照PrimeSTAR聚合酶扩增体系和反应程序进行PCR。此过程中包含两轮 PCR,第一轮PCR的引物用加部分adaptorattB接头的基因引物(F和R),而第二轮的 模板用第一轮的PCR产物,并且引物用完整的adaptorattB引物(attB5'adaptor: 5'-GTGGGGACAAGTTTGTACAAAAAAGCAGGCTTC-3',attB3'adaptor:5'-GTGGGGACCAC TTTGTACAAGAAAGCTGGGTC-3')。将PCR产物克隆到连接pDONER克隆载体(购自Invitrogen) 上,经测序鉴定得到与目的基因完全相同的序列。
[0041] 2. 2植物表达载体的构建
[0042] 以植物双元表达载体pCambial301_UbiN(图6)左右边界包含的序列为骨架序列, 通过体外重组,将ubipromoter-VP64-Gateway表达单兀、35Spromoter-asRED表达单兀和 35Spromoter-hyg表达单元与之融合构建,得到载体nVP64_hyg_asRED的全序列如SEQID No. 5所示,载体图谱见图1。
[0043] 表达载体nVP64-hyg_asRED含有Gateway重组系统,pDONR带有目的基因的质粒 作为入门载体(Enteryvector),通过LR反应可完成目的基因表达载体的构建。
[0044] 通过LR反应将0sllg31340. 1基因的CDS序列构建到其目的基因的5'端连有VP64 编码基因的植物表达载体nVP64-hyg-asRED上,获得携带有编码所述组成型水稻转录因子 VP64-Linker-0sllg31340. 1 基因的表达载体ubi:VP64-0sllg31340. 1,其全序列如SEQID No. 6所示,载体图谱见图2。
[0045] LR反应体系如下:
[0046] 表达载体 Ιμ?(30-50ng)
[0047] 入门载沐(pDONR-gene) 1μ?i. 30-50ng) LRClonaseEnzymeMixΙμ? CldH2O 2μ1 总体积 5μ1
[0048]于25°C反应过夜。用反应体系转化大肠杆菌DH5a,筛选阳性克隆。
[0049] 实施例2转基因水稻植株的获得
[0050] 取水稻'kitaake'成熟种子,人工或机械脱壳,挑选饱满光洁无菌斑的种子经消毒 之后接种到诱导培养基上进行诱导培养。选择外观良好,生长力好的水稻愈伤组织为受体 材料,采用农杆菌介导法将ubi:VP64-0sllg31340. 1转入水稻愈伤组织中,用含有100μΜ 的乙酰丁香酮和0.D.值为0. 7的农杆菌的AAM培养液。进行转化,将转化液浸泡过的愈伤 组织置于共培养基上进行共培养,25°C暗培养3d后置于筛选培养基上培养约30d,每IOd继 代一次。然后将筛出的抗性愈伤转移到分化培养基上分化约20d,每IOd继代一次。将分化 出绿色小苗的抗性愈伤转移到生根培养基上生根,待约7d长出发达根系后炼苗,并计算转 化所获转基因苗数30株。炼苗7d后转移至大田生长。
[0051] 本实施例中涉及的培养基配方如下:
[0052]诱导培养基配方为:N6大量+B5微量+NB有机+铁盐+铜钴母液+2. 5mg/ L2, 4D+0. 6g/L酸水解酪蛋白+2. 878g/L脯氨酸+0. 5g/L谷氨酰胺+30g/L蔗糖,以水配制, 调pH至5. 8?5. 9后加入植物凝胶4g/L。
[0053] 共培养基配方为:N6大量+B5微量+NB有机+铁盐+2. 5mg/L2, 4D+0. 5g/L谷氨酰 胺+0. 6g/L酸水解酪蛋白+10g/L葡萄糖+30g/L鹿糖,以水配制,调pH至5. 2后加入植物 凝胶4g/L。灭菌后,50°C左右加入AS(乙酰丁香酮)100?200μ8/ιΛ。
[0054] 筛选培养基配方为:Ν6大量+Β5微量+NB有机+铁盐+铜钴母液+2. 5mg/ L2, 4D+0. 6g/L酸水解酪蛋白+2. 878g/L脯氨酸+0. 5g/L谷氨酰胺+30g/L蔗糖,以水配制, 调pH至5. 8?5. 9后加入植物凝胶4g/L。灭菌后加入35mg/L潮霉素(购自上海纽津生物 技术有限公司)。
[0055] 分化培养基配方为:MS无机+MS-B5微量+MS有机+铁盐+MS-铜钴母液+0· 05mg/ LNAA+2.0mg/LKinetin(激动素)+30g/L山梨醇+2g/L水解酪蛋白+30g/L蔗糖,以水配 制,调pH至5. 8?5. 9后加入植物凝胶4g/L。
[0056] 实施例3转基因阳性株系的鉴定
[0057] 为检测ubi:VP64-0sllg31340. 1基因在T2代转基因水稻中的过表达情况,在载 体上设计引物(正向引物:5' -GTGGGGACAAGITTGTACAAAAAAGCAGGCTTC-3' 和反向引物:5'-G TGGGGACCACTTTGTACAAGAAAGCTGGGTC-3')进行PCR检测,得到了明显的特异性条带,其中WT 为野生型水稻 'kitaake',V2401H-12、V2401H-28 为VP64-0sllg31340. 1 转基因水稻株系 (图3)。上述引物是在载体与目的基因接头处设计的,图3显示扩增的片段大小与目的基因 (834bp)基本一致。
[0058] 实施例4转基因水稻表型分析和考种分析
[0059] 将实施例2获得的转基因水稻株系V2401H-12、V2401H-28和野生型水稻种子进行 比较,从表型上可以明显的看出,本发明的转基因材料V2401H-12、V2401H-28的籽粒较野 生型水稻'kitaake'明显变长(图4)。考种数据分析表明(图5),转基因水稻籽粒的长显著 大于野生型水稻籽粒。
[0060] 虽然,上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述,但在 本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因 此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。
【权利要求】
1. 一种组成型水稻转录因子,其特征在于,其为融合蛋白为(VP16)4-Linker-〇sllg31340. 1 ; 其中,VP16为来自单纯疱疹病毒的VP16蛋白,(VP16)4是由4个VP16蛋白的氨基酸 序列以Gly-Ser为间隔形成的融合蛋白,其氨基酸序列如SEQ ID No. 10所示;Linker由39 个柔性氨基酸串联而成;其氨基酸序列如SEQ ID No. 9所示;0sllg31340. 1为水稻转录因 子0sllg31340. 1基因⑶S序列,其氨基酸序列如SEQ ID No. 2所示,或该序列经替换、缺失 或添加一个或几个氨基酸形成的具有同等功能的氨基酸序列。
2. 编码权利要求1所述组成型水稻转录因子的基因。
3. 含有权利要求2所述基因的载体。
4. 含有权利要求2所述基因的工程菌。
5. -种转基因水稻植株的构建方法,其特征在于,采用农杆菌介导的方法,将权利要求 3所述的载体转入水稻愈伤组织中,用含诱导剂和农杆菌的AAM培养液进行转化,转化后的 材料经过共培养-筛选-分化-生根-转基因苗的锻炼和移栽,筛选转基因水稻植株。
6. 权利要求2所述的基因在改良水稻籽粒性状中的应用。
7. 用于扩增水稻转录因子Osllg31340. 1基因⑶S序列的引物对, 其为正向引物F :5' -CAAAAAAGCAGGCTTCATGGCCAGCCCTGGAGT-3' 和反向引物R :5' -CAAG AAAGCTGGGTCGITCATGCCATGGCCATAAC-3' ;其中,水稻转录因子 0sllg31340. 1 基因的 CDS 序 列为:Seq ID No. 1所示的核苷酸序列。
8. 水稻转录因子0sllg31340. 1基因在调控水稻籽粒性状中的应用,所述水稻转录因 子0sllg31340. 1基因的核苷酸序列为:SEQ ID No. 1所示。
9. 如权利要求8所述的应用,其特征在于,其是利用转录因子激活基序VP64与水稻转 录因子0sllg31340. 1基因⑶S序列融合构建得到组成型转录因子,并将编码所述组成型转 录因子的基因转化水稻,从而改良转基因水稻籽粒的性状; 其中,所述转录因子激活基序VP64的氨基酸序列如SEQ ID No. 10所示。
10. 根据权利要求8所述的应用,其特征在于,其是将水稻转录因子0sllg31340. 1基因 的⑶S序列通过Gateway系统构建到转录因子激活基序VP64编码基因的下游,转化水稻, 从而改良转基因水稻籽粒的性状; 其中,所述转录因子激活基序VP64编码基因的核苷酸序列如SEQ ID No. 4所示。
【文档编号】C12N1/21GK104341508SQ201310328819
【公开日】2015年2月11日 申请日期:2013年7月31日 优先权日:2013年7月31日
【发明者】刘斌, 赵涛, 李宏宇, 刘军, 林辰涛 申请人:中国农业科学院作物科学研究所
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