专利名称：甲状腺激素类似物及其使用方法
技术领域：
本发明涉及甲状腺激素，甲状腺激素类似物和衍生物，及其它的聚合物形式。同时还公开了这些化合物以及包含该化合物的药用组合物的使用方法。本发明还涉及所述化合物的制备方法。
背景技术：
甲状腺激素，L-甲状腺素(T4)和L-三碘甲状腺原氨酸(T3)，在脊椎动物体内不同的组织当中调节不同的生理过程。甲状腺激素大多数的作用是通过它的受体(“TR”)介导的，该受体是活性配体转录调节剂的核受体总科的组成之一。这个总科还包括类固醇激素，类维生素A和1，25-二羟维生素D3的受体。这些受体是调节特殊基因在不同组织中的表达的转录因子，也是应用广泛药物的靶点，例如，他莫昔芬，一种部分雌激素受体拮抗剂。两种不同的基因编码有两种不同的受体，受体α和受体β。这两种受体经常在不同组织中在不同程度上共同作用。但是许多甲状腺激素并没有区分这两种受体，同时两者具有类似的结合性。
基因替换的小鼠试验表明受体β在听觉系统的发展和脑下垂体中通过T3对甲状腺激素刺激的负反馈中起到了一定作用，而受体α则调节心血管系统并产生热量。受体拮抗剂的辨别将在未来的甲状腺功能减退的治疗方面起到重要作用。这些原子将会在甲状腺激素受体水平上通过直接的拮抗迅速起效，使得患有甲状腺功能减退需要手术的患者，心脏病患者，或者患有威胁生命的甲状腺危象的患者都将有名显的好转。
因此，需要改进对药物治疗有用的化合物，这些化合物通过作为甲状腺激素受体的对碘氧基苯甲醚激动剂或拮抗剂起到选择性地调节甲状腺激素的作用。近期的研究集中在甲状腺激素(T3/T4)拮抗剂作为具有潜力的治疗剂和化学探针的设计和合成方面。同时，对拟甲状腺化合物也需要进一步改进，这类化合物比自然存在的激素更容易获得并且具有潜在的有用受体结合及活性。
估计美国有五百万人倍受慢性顽症心绞痛的折磨，每年有二十万65岁以下的人死于“早发性缺血性心脏病”。尽管采用了药物治疗，许多人还是持续受到心肌梗塞和冠状血管衰弱的折磨，这进一步使透血管壁冠状血管形成术或者冠状动脉分流术成为需要。如果有一种方式能够缓解心肌缺血就将加强冠状侧支的循环。
目前已经建立了在心肌梗塞的急性阶段冠状支脉的可见冠状动脉内凝血质治疗的解剖学显示和肌酸激酶活性曲线，梗塞的大小和动脉瘤的形成之间的联系。这些研究体现出了与侧支不可见的病人相比，对于冠状梗阻的心脏侧支保护的地位，表示出更小的梗塞，更少的动脉瘤的形成，以及改善的心室的作用。当心脏肌细胞局部缺血，侧支就会通过内皮和光滑肌肉细胞的基因复制和分裂积极地生长。一旦局部缺血的情况发生，这些因素就会变得有活性并使受体有效的占据，在与外生的肝素接触后就会刺激血管的形成。不幸的是，这样的血管形成的“自然”过程对于所有患者的冠状动脉疾病的局部缺血的治疗是不利的。
在局部缺血的情况下，腺苷通过三磷酸腺苷的分解而被释放。腺苷参与许多心脏防护的生物性为。腺苷在诸如心动过缓和血管舒张的血液动力的变化中起到一定的作用，并且腺苷还对于诸如预先调节和再灌注损伤的减少等无关联的现象起到一定作用(Ely and Beme，Circulation，85893(1992))。
血管的形成是新的血管从已存在的血管中的进一步发展(Mousa，S.A.，In Angiogenesis Inhibitors and StimulatorsPotentialTherapeutic Implications，Landes Bioscience，Georgetown，Texas；Chapter 1，(2000))。从生理学方面讲，血管的形成确保了成熟器官的正常生长，为子宫对卵细胞的培育做好准备，并且在伤口的愈合方面也起到重要作用。在胚胎形成时或者正常的和病理的血管网状结构的形成依赖于生长因子以及细胞和细胞外部基质的相互作用(Breier et al.，Trends in Cell Biology 6454-456(1996)；Folkman，Nature Medicine 127-31(1995)；Risau，Nature 386671-674(1997).血管在胚胎形成时的出现是通过两个过程血管的发生和血管的形成(Blood et al.，Bioch.Biopys.Acta 103289-118(1990).血管的形成是一个通过促/抗血管形成因素平衡作用控制下的多步骤过程。后一过程涉及内皮细胞(EC)的增殖和组织与管状结构。生长因子，诸如纤维生长因子-2和血管内皮细胞生长因子是促内皮细胞生长和分化的关键因素。
血管的形成控制是一个复杂过程，涉及血管生长因素的局部释放(P Carmeliet，Ann NY Acad Sci 902249-260，2000)，外部细胞剂质，分子的接合以及代谢因子(RJ Tomanek，GC SchattemanAnat Rnat Rec 261126-135，2000)。血管中的代谢力也是作用因素之一(O Hudicka，Molec Cell Biochem 14757-68，1995)。涉及在新的血管生长中的内源性生长因子的主要物质是纤维生长因子(FGF)类和血管内皮细胞生长因子(VEGF)(G Page，Ann NY Acad Sci 902187-200，2000)。促分裂原活化蛋白激酶(MAPK；ERK1/2)信号转导串连与血管内皮细胞生长因子的基因表达和控制血管内皮细胞增殖有关。
内在腺苷可以促进冠状血流量来回应增加的心肌耗氧并且以此来调节冠状血流量的储存(Ethier et al.，Am.J.Physiol.，H131(1993))表明对人类脐静脉内皮细胞增加腺苷的生理的浓度很可能经过表面受体刺激了增殖。腺苷可能成为人类内皮细胞的生长和形成的因素。腺苷呈现出对于血流梗阻-诸如冠状血管疾病(“CAD”)-的病人的保护性，但是血管的然生长率对于疾病的治疗是不利的。因此，加强和加快身体自然的血管形成的潜力对患有冠状血管疾病的病人是有好处的。
同样地，随着增加的各种环氧化酶2(CoX2)抑止剂的使用，伤口的愈合在许多发展中国家成为一个重要的问题，糖尿病人的伤口愈合能力受损并产生了长期的紊乱性炎症。血管的形成对于伤口的愈合是必要的，因为新的组织要提供营养给活性细胞，促进肉芽组织的形成和对残屑的清理。大约60％的肉芽组织是由血管形成的，它同时提供所需要的养分以刺激修复和组织生长。已有文献记载，当抑止血管形成的因子抑止伤口愈合时，血管形成的因子出现在伤口的分泌液当中并促进伤口的愈合。伤口血管的形成是一个复杂的多步骤的过程。尽管已经有关于血管形成因子的详细的记载，但是对于这些因子的来源的解释并没有取得多少进展，这些调节活动涉及伤口的血管形成以及血管形成刺激对于促进愈合在诊断中的应用。关于伤口血管的形成和愈合更难以理解的是所涉及的愈合的机理和介质，这可能据伤口的深度，类型(烧伤，创伤，等)，以及伤口的部位(肌肉，皮肤，骨头，等)的不同而不同。伤者的状态和年龄(糖尿病患者，半身麻痹患者，用类固醇药物治疗的患者，老年人或者婴儿，等)同样可以决定愈合率和血管形成因子的反应。患者的性别和激素水平(绝经前后，等)也会影响愈合的机制和反应。对于受损伤口的治疗尤其影响老年人和美国14,000,00糖尿病患者当中的许多人。因为血管形成能力的下降经常是这些患病人群伤口愈合问题的成因，因此，对于血管形成因子在伤口愈合当中重要性的认识以及促进它在对阻止和/或采用适当的方式对受损伤口进行治疗的诊断中的应用是很重要的。
因此，就需要一种有效的治疗方式，它通过血管生成因子作为主要的或者辅助的因素促进伤口的治疗，冠状血管的形成，或者其他与血管形成有关的障碍，同时具有较小的副作用。这种治疗方式对于患有血管障碍，如心肌梗塞，中风或者动脉末梢血管疾病的患者尤其有效，并且可以预防性的用于冠状循环较弱的患者，因为(冠状循环较弱)使者些患者置于局部缺血和心肌梗塞的高风险之中。
有趣的是血管的形成同样发生在其他的情况当中，但是这些情况都是不被希望的，包括固体肿瘤的生长和转移；类风湿性关节炎；牛皮癣；硬皮症；和三种通常会致盲的疾病——糖尿病性视网膜病，晶状体后纤维组织增生症和新生血管性青光眼。事实上，眼部疾病通常由于血管化的并发症引起。伤口血管和肿瘤血管的形成过程在许多特征上是共同的。因此，在诸如糖尿病性视网膜病或最初的发生或者肿瘤的转移的情况下，血管的形成就是不被希望的。所以，这些情况下就需要采取方式抑止血管形成因子的影响。
发明简述本发明部分基于甲状腺激素，甲状腺激素类似物，和它的聚合物形式的发现，它们具有作用于细胞膜而不受核的影响并且促血管形成特性。同时，这些甲状腺激素类似物和聚合物形式(即血管形成因子)能够用于治疗多种障碍。同样地，本发明还基于对于甲状腺激素类似物具有抑止促血管形成作用的发现，这种作用也能够用于治疗各种障碍。
由此，一方面本发明的特征在于通过促进血管形成治疗可接受状况的方法，通过给予病患一定量的对于促进血管形成有效的甲状腺激素的聚合物形式，或者它的类似物。这种通过促血管形成来治疗的可接受状况的例子包括血管闭塞疾病，冠状动脉疾病，勃起机能障碍，心肌梗塞，局部缺血，中风，外周动脉末梢血管障碍以及创伤。
甲状腺激素类似物的例子包括L-三碘甲状腺原氨酸(T3)，L-甲状腺素(T4)，3，5-二甲基-4-(4’-羟基-3’-异丙基苯甲基)-苯氧基乙酸(GC-1)，或者二碘甲状腺丙酸(DITPA)，四碘甲腺乙酸(TETRAC)，以及三碘甲状腺乙酸(TRIAC)。另外的类似物见图20，表A-D。这些类似物可以与聚乙烯醇，丙烯酸乙烯共聚物，聚乳酸，或者琼脂糖结合。这种结合是通过共价键或者非共价键实现的。
在一种具体实施中，甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或者它的聚合物形式可以通过注射，口服，肠道给药，或者局部方式，或者联合方式给药。注射给药包括例如，皮下注射，腹膜内注射，肌肉注射，或者通过导管静脉注射的方式。局部的给药方式可以包括如，绷带。
在另一种具体实施中，甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或者它的聚合物形式可以被包裹或者混合在微粒，脂质体，或者聚合物当中。聚合物包括例如，聚乙醇酸交酯，多乳酸化合物，或者它的共聚物。微粒或者脂质体的尺寸小于200纳米，并且可以通过一种或多种注射途径给药，或者其他的给药方式。在另一种具体实施当中，这种微粒或脂质体可以被置于周围局部缺血的毛细血管床中，或者通过导管运用于血管内部。
本发明的甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或者它的聚合物形式还可以与一种或多种具有生物活性的成分联合给药，包括例如，生长因子，血管扩张剂，抗凝剂，抗病毒剂，抗菌剂，抗炎剂，免疫抑制剂，镇痛药，血管化因子，或者细胞黏附分子，或者它的混合物。在一种具体的实施中，甲状腺激素类似物，或者它的聚合物形式以先于或者后于一种或多种具有生物活性成分的弹丸注射的方式给药。
生长因子可以包括，例如，转化生长因子α(TGFα)，转化生长因子β(TGFβ)，基本成纤维细胞生长因子，血管内皮生长因子，上皮细胞生长因子，神经生长因子，血小板衍生的生长因子，以及血管渗透因子。血管扩张剂包括，例如，腺苷，腺苷衍生物，或者它们的混合物。抗凝剂包括但不限于，肝素，肝素衍生物，抑止因子Xa，抗凝血酶，阿斯匹林，氯吡格雷，或者它们的混合物。
本发明的另一个方面，提供了促血管形成的方式，这种方式沿着一种药物装置或者在该装置周围用甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或者它的聚合物形式对装置包衣，然后将装置插入病人体内。包衣的过程可进一步包括用一种或多种具有生物活性的成分对装置的包衣，例如，但不限于，一种生长因子，一种血管舒张剂，一种抗凝剂，或者它们的混合物。能够用甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或者它的聚合物形式包衣的药物装置的例子包括支架，导管，插管或者电极。
本发明进一步提供了通过给予病患一定量的对于抑止血管形成有效的抑止血管形成因子来治疗可接受状况的方法。
通过抑止血管形成来治疗的可接受状况包括，但并不限于，初期的或者转移的肿瘤，糖尿病性视网膜病，以及与此有关的状况。本发明还提供了用血管形成抑止剂来抑止血管形成的例子，包括，但不限于，四碘甲腺乙酸(TETRAC)，三碘甲状腺乙酸(TRIAC)，单克隆抗体LM609，XT199或者它们的混合物。这种血管形成抑止剂能够作用于细胞表面来抑止促血管形成因子。
在一个具体的实施中，血管形成抑止剂通过注射，口服，肠道，或者局部的方式，或者联合的方式给药。在另一个具体的实施当中，血管形成抑止剂能与一种或多种血管形成抑止剂或者化学治疗药物联合给药。
本发明还提供了包括甲状腺激素，甲状腺激素类似物的连接体组成的混合物(即血管形成因子)。根据聚合物的不同，可以通过共价键或非共价键形成连接。例如，共价键可以是酯键或者酐键。本发明提供的甲状腺激素类似物的例子包括L-甲状腺素(T4)，L-三碘甲状腺原氨酸(T3)，，3，5-二甲基-4-(4’-羟基-3’-异丙基苯甲基)-苯氧基乙酸(GC-1)，或者二碘甲状腺丙酸(DITPA)。在一个具体的实施中，聚合物可以包括，但并不受此限制，聚乙烯醇，丙烯酸乙烯共聚物，聚乳酸，或者琼脂糖。
另一方面，根据在药学可接受的载体方面的当前发明，本发明提供了包括血管形成因子在内的药物制剂。在一个具体实施当中，药物制剂还包括一种或多种药学可接受的辅料。
根据现有发明，本发明的药物制剂可以被包囊在脂质体，微囊或者聚合物当中。脂质体或者微囊的尺寸小于200纳米。根据本发明的任何药物制剂都可以通过注射，口服，肠道，局部的或者联合的方式给药。在另一个具体的实施当中，可以采用一种或多种生物活性成分联合给药，活性成分包括但不限于，生长因子，血管扩张剂，抗凝剂，或者它们的混合物。
关于本发明具体实施的内容将在下面详细描述。通过任何相似或相同描述的方法和物质均可以被本发明实施或使用，优选的方法和物质也会被描述。其他的特征，客体，和本发明的益处将在权利要求和具体的描述当中体现。在说明书和权利要求当中，除非上下文明确指明，否则单数形式也包括复数含义。除非另有限定，所有的技术和科学名词具有与作为通常的理解相同的含义。说明书中引用的全部的专利和出版物均在整体作为参考。
附图简述
图1，L-T4和L-T3在鸡细胞粘着分子试验中血管生成的结果。
A，对照样品加入PBS同时附加的样品加入1nMT3或0.1μmol/L三天。两种激素在3个试验的典型的影像中都引起血液分支的增加。B，列表显示标准误的新的分支在3个试验期间从现有血液中的形成，每一单位包括9个CAM测定。集中显示T3和T4引起了相似的效果(在分支的形成中1.9-折层和2.5-折层分别增加)。**P＜0.001通过方差分析激素治疗与采用PBS治疗的CAM样本比较。
图2，通过T4和琼脂糖-T4(T4-ag)的血管形成的四碘甲腺乙酸抑止刺激。A，具有代表性的0.1μmol/LT4三天的CAM样本中显示A2.5折层在血液分支结构中增加。在3个类似的试验中显示2.3折层增加。激素的作用被四碘甲腺乙酸(0.1μmol/L)抑止，一种T4的类似物显示出了抑止T4细胞膜的作用。13四碘甲腺乙酸的单独使用不能够刺激血管的形成(C)。B，T4-ag(0.1μmol/L)刺激血管形成的2.3-折层(在试验3中的2.9-折层)的作用同样被四碘甲腺乙酸阻断。C，简述试验3trtrac，T4-ag和T4在CAM试验结果中的作用测定。数据(标准误)来源于10个对映于3个试验的试验条件的影像。**P＜0.001通过方差分析T4治疗和琼脂糖-T4治疗样本与采用PBS对照组样本的比较。
图3，比较FGF2和T4的促血管形成作用。A，前后排列的次于最大浓度的T4(0.05μmol/L)和FGF2(0.5μmol/L)的CAM分析，以及相等水平血管形成的FGF2(1μmol/L不含T4)。B，3个试验，同A，测定FGF2和T4在CAM分析(标准误)中作用的结果简述。*P＜0.05；**P＜0.001，治疗样本结果与3个试验中PBS对照组样本的结果比较。
图4，抗-FGF2在由T4或外生性FGF2引起的血管形成中的作用。A，FGF2引起了一个在试验3的CAM模型中血管形成的2-折层的增加，一种通过FGF2(8μg)抗体(ab)的抑止作用。T4同样刺激血管形成的1.5-折层，这一作用同样通过FGF2抗体被阻断，显示出在CAM模型中甲状腺激素的作用是通过FGF2的一个自分泌/旁分泌作用作为介导，因为T4和T3引起了在CAM模型(表1)中FGF2从细胞中的释放。之前已显示非特异性的免疫球蛋白G抗体在CAM分析当中并无血管形成的作用。B，CAM试验3的结果简述，其研究FGF2-抗体在FGF2或者T4的出现中的作用。*P＜0.01；**P＜0.001，在3个试验的甲状腺激素和FGF2在血管形成中的作用以及FGF2在抗体出现作用中的消耗的研究当中显示出的显著影响。
图5，PD 98059，一种促分裂原活化蛋白激酶(细胞外信号调节激酶1/2)信号传导串连抑止剂，关于血管形成包括T4，T3，和FGF2。A，T4(0.1μmol/L)和T3(1nmol/L)共同的血管形成刺激被PD 98059(3μmol/L)完全抑止。B，通过FGF2(0.1μmol/L)诱导的血管形成也被PD 98059抑止，结果表明生长因子的作用也是依靠ERK1/2途径的激活作用。上下文的试验涉及T4-琼脂糖(T4-ag)和四碘甲腺乙酸(图2)显示T4的促血管形成作用始于细胞膜，显示于A和B中的MARK在甲状腺激素的促血管形成作用结果有两种ERK1/2传导激素的早期信号，其导致FGF2的产生并且传导FGF2随后的血管形成方面的作用。C，简述3个试验的结果，以A和B为代表，显示了PD 98059对于T4的作用以及FGF2在CAM模型中的的影响。
*P＜0.01；**P＜0.001，表明3个试验的方差分析结果数据。
图6，在细胞体外培养内皮细胞中，T4和FGF2激活促分裂原活化蛋白激酶。细胞于M199的0.25％激素-衰竭的血清制备，同时给予T4(0.1μmol/L)15分钟到6个小时。细胞被采集同时核的部分按照前述方法制备。核蛋白质，通过凝胶电泳(法)分离，被磷酸化作用的MAPK(分别为pERK1和pERK2，44和42kDa)抗体免疫印迹，随后通过第二抗体连接到一个发光探测系统。核部分的Aβ-肌纤蛋白免疫印迹在本图的各个部分作为一种凝胶填充物对照。每个免疫印迹代表3个试验。A，T4引起增加的磷酸化以及ERK1/2在ECV304细胞中的易位。这一作用在30分钟内发生，虽然该作用可以维持≥6小时。B，ECV304细胞经ERK1/2活性抑止剂PD 98059(PD；30μmol/L)或者给予PCK抑止剂CGP41251(CGP；30μmol/L)30分钟，之后在细胞样本中加入10-7M T4到15分钟。细胞核被收集，这一典型的试验显示增加的ERK1/2通过T4(电泳泳道4)的磷酸化(活化的)，它被两种抑止剂(电泳泳道5和6)阻塞，该结果表明PKC的活性是一种通过内皮细胞对MAPK活性的必需品。C，ECV304细胞经T4(10-7mol/L)，FGF2(10ng/mL)，或者共同给予此两种试剂15分钟。图表显示pERK1/2在核中与甲状腺激素或者生长因子累积，该两种试剂作用并加强了核pERK1/2的累积。
图7，T4在ECV304表皮细胞中增加FGF2互补DNA的累积。对细胞给予细胞隔离的T4(10-7mol/L)和FGF2和GAPDHcDNAs6到48小时。顶点显示FGF2cDNA的水平对于GAPDHcDNA的含量变化是适当的，最低点所示的，以及合适的FGF2水平在曲线图(平均标准误；n＝2试验)的下面被说明。在所有时间点上，由细胞提取给予T4的RNA FGF2转录物都有较大增加。*P＜0.05；**P＜0.01，显示在每个时间点的值与对照组值的方差分析比较。
图8，7日鸡胚胎肿瘤生长模型。说明肿瘤移植的鸡绒(毛)膜尿囊膜模型。
图9，T4刺激3D创伤愈合。根据3D创伤愈合分析的描述，人类皮肤成纤维细胞的T4和对照组的图片。
图10，T4剂量依存性增加创伤愈合，三天。图表显示，T4在剂量依存性方法中增加创伤的愈合(通过迁出细胞测量)，其浓度在0.1μM和1.0μM之间。相同的增加在T4浓度在1.0μM和3.0μM之间时并没有出现。
图11，未标记的T4和T3I-125-T4结合对纯化的抗抑郁药的影响。未标记的T4(10-4M至10-11M)或者T3(10-4M至10-18M)被加入纯化的αVβ3抗抑郁药当中(2μg/样本)并在室温下培育30分钟。2微居里I-125标记的T4被加入每一个样本当中。该样本在室温下培育20分钟，与干填充物混合，在4℃，45Ma，5％天然凝胶中混合24小时。下列的电泳，凝胶被包裹在塑料包装当中并且包薄膜。未标记的T4在10-11M至10-7M范围内，I-125-T4结合对纯化的αVβ3无影响，但是未标记的T4在浓度为10-6M在一种剂量依赖性的方法中产生竞合。与integrin结合的热的T4几乎完全被10-4M未标记的T4替换。T3对于与T4竞合结合αVβ3的作用较小，T3在10-6M，10-5M，10-4M浓度下本别减少11％，16％和28％。
图12，含肽四碘甲腺乙酸和RGD，但非含肽RGE与T4竞合结合纯化的αVβ3。A)加入到纯化的αVβ3中的TETRAC在剂量依赖性方法中减小了与integrin结合的I-125-标记的T4。10-8M四碘甲腺乙酸对于与热的T4竞合结合intergrin是无效的。T4和αVβ3的联合由于10-7M四碘甲腺乙酸的出现减小38％，由于10-5M四碘甲腺乙酸的出现减小90％。加入10-5MRGD肽与T4竞合结合αVβ3。采用10-5M和10-4M RGE肽，作为RGD肽的对照组，不能较小热的T4与纯化的αVβ3的结合。B)代表四碘甲腺乙酸和RGD的数据的图形表示来自于组A。数据点代表3个分离试验的标准误。
图13，单克隆抗体LM609在T4与αVβ3结合方面的作用。A)LM609在指示浓度下加入αVβ3。每个样本1μg LM609减小52％的与integrin结合的I-125-标记的T4。与integrin结合的T4的最大抑止作用是当每个样本2μg浓度LM609时达到的，并且抗体浓度达到8μg时这种作用将被维持。作为抗体特异性的对照组，8μg/样本Cox-2mAB和10μg/样本IgG先于T4被加入αVβ3。B)数据的图形表示来自于组A。数据点代表3个分离试验的标准误。
图14，RGD，RGE，TETRAC和mAB LM609在T4减小MAPK活性方面的作用。A)对CV-1细胞(50-70％融合)给予10-7M T4(10-7M总浓度，10-10M游离浓度)30分钟。被选取的样本在加入T4之前给予指示浓度的含肽RGD，含肽RGE，tetrac，或LM609。核蛋白质被SDS-PAGE分离出来并且通过抗磷酸基-MAPK(pERK1/2)a抗体免疫印记。pERK1/2的核累积在给予10-6M或更高RGD肽的样本中减小，但是在给予10-4M RGD的样本中并没有明显改变。pERK1/2的累积在给予10-6Mtetrac的CV1细胞中减小76％，但是10-5M或更高浓度的tetrac减少的pERK1/2的核累积与未处理的对照样品相似。αVβ3的单克隆抗体减小了具有活性的MAPK在核中的累积，当它被用于1μg/ml浓度的CV1培养时。B)RGD，RGE和tetrac的数据的图形表示在组A中显示。数据点代表3个分离试验的标准误。
图15，siRNA在αV和β3在T4减小MAPK活性方面的作用。CV1细胞同siRNA(终浓度100nM)被转染到αV，β3或αV和β3。转染两天后，对细胞给予10-7MT4。A)RT-PCR来自于用于证明每一个siRNA特异性和官能团的转染组分离出来的RNA。B)来自于每一个转染的核蛋白质被分离并且属于SDS-PAGE。
图16，在CAM模型中，αVβ3mAB(LM609)在T4-刺激血管形成方面的抑止作用。A)在样本中加入PBS，T4(0.1μM)，或T4与10mg/mlLM609三天。T4的血管形成刺激实际上通过αVβ3单克隆抗体LM609的加入受到抑止。B)列表显示在试验阶段形成于现有血液的新的分支形式的平均标准误。数据来源于3个分离的试验，每一个包含9个样本。C，D)通过T4或FGF2的血管形成刺激同样通过αVβ3单克隆抗体LM609或XT199的加入受到抑止。
图17，甲状腺激素类似物的聚合物连接-通过使用聚乙烯醇酯键连接。在这一制备当中商业可获得的乙烯醇(或相关的共聚物)能够通过给予甲状腺激素类似物的酰基氯被酯化，即酰基氯形式。盐酸盐通过加入的三乙胺被中和，其中在甲状腺激素酯聚合物的不同类似物形式的沉淀物上的三乙胺盐酸化物可以被水冲掉。酯键与聚合物的连接可以经活体内的水解释放具有活性的促血管形成的甲状腺激素类似物。
图18，甲状腺激素类似物的聚合组分-通过使用丙烯酸乙烯共聚物酐键的连接体。与之前的聚合物的共价连接相似，但是此时是通过一个衍生于乳酸共聚物作用的酐键连接。这一酐的连接同样易于在活体中水解从而释放出甲状腺激素类似物。水解的酸的中和作用通过三乙胺的作用完成，之后用水对沉淀的聚酐聚合物的冲洗去除了三乙胺盐酸化物的副产品。这一作用将导致甲状腺激素类似物乳酸共聚物+三乙胺的形成。在活体的水解作用下，甲状腺激素类似物将被随时间释放，使得乳酸乙烯共聚物能够被控制。
图19，甲状腺激素类似物的聚合组分-形成于聚乳酸聚合体中。多聚乳酸经过活体中的水解作用成为乳酸单体同时作为药物在人体递送体系中的工具被利用。与前两种共价方式-甲状腺激素类似物通过化学键与聚合物连接-不同的是，它是通过非共价的方式连接甲状腺激素类似物与PLA聚合物串。这种作用将致使包含PLA串的甲状腺激素类似物在水中的形式。过滤和水冲将使包含PLA串的甲状腺激素类似物在活体中的水解作用下产生甲状腺激素正型乳酸的受控的水平。
图20，甲状腺激素类似物能够与不同的聚合物连接。A-D显示替换需要获得不同的甲状腺激素类似物，这些类似物可以连接以形成本发明的甲状腺激素类似物的聚合形式。
发明详述本发明的特征和其他详情将通过参考附图和被权利要求指出的部分被进一步描述。方便起见，在这里列出说明书、实施例和权利要求书所使用的术语。如无其他定义，在此使用的技术和科技术语具有与所属领域技术人员通常的理解相同的含义。
术语“血管形成因子”包括任何单独或者与其他物质结合加速或促进血管形成的化合物或物质。包括但不限于，T3，T4，或者T4-琼脂糖，聚合形式的T3，T4的类似物，3，5-二甲基-4-(4’-羟基-3’-异丙基苯甲基)-苯氧基乙酸(GC-1)，或者二碘甲状腺丙酸(DITPA)。与此相对，术语“血管形成抑止剂”或“抗血管形成的抑止剂”包括任何单独或者与其他物质结合抑止或阻碍血管形成的化合物或物质。包括但不限于，四碘甲腺乙酸(TETRAC)，三碘甲状腺乙酸(TRIAC)，XT199和单克隆抗体LM609。
术语“心肌缺血”是指由于心脏血管能力减弱引起的对心脏肌肉的供血不足。术语“冠状疾病”是指由于心肌功能和冠状血管供血能力之间失衡引起的心脏疾病或障碍。患有特殊的冠状疾病/障碍，包括心肌缺血，心绞痛，冠状动脉瘤，冠状血栓症，冠状血管痉挛，冠状动脉疾病，冠状心脏病，冠状闭塞和冠状狭窄的病人可以用本发明所述的组合物和方法来治疗。
术语“外周血管闭塞症”(也称作外周动脉闭塞症)是一种动脉疾病-涉及颈动脉或者股动脉的阻塞，包括髂动脉。股动脉的阻塞引起疼痛和行动受限。一种特殊的外周血管闭塞症是糖尿病足，它影响了糖尿病患者，经常会导致足部截肢。
术语“血管再生”，“血管形成”，“血管形成术”和“增加的侧支循环”(或者能达此效果的用语)被认为具有相同含义。术语“药学可接受的”当指一个自然的或者合成的成分，考虑到它具有更大的有益效果的同时具有可接受的毒性效应，与此相关的术语“生理可接受的”，是指成分具有相对较低的毒性。术语“联合给药”是指将两种或更多的药物在同一时间或者连续地给予患者，使药物同时起效或者实质上作用重叠。该术语包括连续以及同时给药。
“药学可接受的盐”是指甲状腺激素类似物，聚合形式和衍生物的可接受的盐，这些盐衍生自各种有机和无机平衡离子，如钠，钾，钙，镁，铵，四烷基铵等，当该分子包含一个基础的功能团，有机或者无机酸盐，如盐酸化物，氢溴化物，酒石酸盐，去铁胺，醋酸盐，马来酸盐，草酸盐之类可用作药学可接受的盐。
“受试者”包括来自活体，如人，猴子，牛，绵羊，马，猪，山羊，狗，猫，鼠的培养细胞，以及它们的转基因物种。优选的受试者是人。将本发明的药物组合物用于治疗受试者可以采用已知的步骤，剂量和有效的疗程。达到疗效所需的组合物的有效量据受试者的年龄，体重，以及组合物的性能的不同而变化。给药方案可以根据最佳治疗效果而调整。例如，数个分开的剂量可以每日给药或者根据治疗情况中的突发情况而相应地减少。
“给药方式”包括能使本发明的组分起到它的预期作用-如促进血管形成-的途径。各种给药方式都可能被包括，不限于注射(例如，静脉注射，内部动脉注射，肌肉注射，皮下注射)，口服的(例如，饮食)，局部的，鼻的，直肠的方式，或者根据疾病或者治疗状况通过微囊缓释的方式给药。优选口服，注射和静脉注射的给药方式。给药组合物的制剂形式根据选择的给药方式而变化(例如，溶解剂，乳剂，凝胶剂，气溶剂，胶囊)。药物组合物连同辅剂和防腐剂可以在生理可接受的赋形剂或者载体当中。对溶解剂或者乳剂来讲，适合的载体包括，水或者醇/水溶液，乳剂或者悬浮液，包括盐和缓冲介质，无菌水，乳膏，软膏，洗液，油脂，糊和固体载体。注射液可以包括氯化钠溶液，林格氏葡萄糖(注射液)，葡萄糖和氯化钠，乳酸林格(氏)(注射液)或者不挥发性油。静脉注射液可以包括各种添加剂，防腐剂，或者液体，营养素或电解质补充剂(See，generally，Remington’sPharmaceutical Science，16thEdition，Mack，Ed.(1980))。
“有效量”包括使那些促血管形成或者抗血管形成组合物起到它的预期作用的用量，例如，在前所述的与血管形成有关的疾病中促进或者抑止血管形成的作用。有效量依据一定的因素，包括生物的活性，年龄，体重，性别，健康状况，被治疗的严重状况，与此相当的药代动力学特征。例如，活性成分的剂量可以从每日约0.01mg/kg到约每日约500mg/kg，优选从每日约0.1mg/kg到约每日约100mg/kg。活性成分的有效治疗剂量可以通过一种合适的单剂量或者多剂量方式给药。此外，活性成分的剂量可以由紧急治疗或者预防状况所显示的适当增加或减少。
“药学可接受的载体”包括任何和所有的溶剂，分散介质，包衣，抗菌剂，渗透剂和缓释剂以及类似的适合于化合物活性和受试者生理可接受的物质。一个药学可接受的载体的例子使缓冲生理盐水(0.15M NaCL)。适合于药学活性成分使用的介质和剂量是本领域公知的。任何不适合治疗的介质和剂量除外，对于它们的使用要慎重。增加的活性成分也可以掺合到组合物当中。
“添加的成分”包括但不限于，辅料；表面活性剂；分散剂；稀释剂；粒化和分裂剂；粘合剂；润滑剂；甜味剂；调味剂；着色剂；防腐剂；生物可降解的成分如明胶；水载体和溶液；油载体和溶液，悬浮剂；分散剂；乳化剂；湿润剂；缓冲剂；盐；增稠剂；充填剂；抗氧化剂；抗生素；抗真菌剂；稳定剂；以及药学可接受的聚合物或者疏水物质。其他的“添加的成分”可以包括本发明所述的以及本领域所使用的物质，例如Remington’sPharmaceutical Sciences所记载的。
组合物本发明所述的血管形成因子由甲状腺激素，它的类似物，以及该激素和它的类似物连接成的聚合物组成。本发明的组分可以通过促进血管形成来治疗疾病。此外，这些甲状腺激素，类似物和聚合物的抑止剂可被用于治疗不利的血管形成的疾病。本申请使用的术语“血管形成因子”包括任何无论单独或与其他成分联合能够促进血管形成的化合物或成分。包括但不限于，T3，T4，T3或T4的琼脂糖，聚合形式的T3，T4的类似物，3，5-二甲基-4-(4’-羟基-3’-异丙基苯甲基)-苯氧基乙酸(GC-1)，或者二碘甲状腺丙酸(DITPA)连接体用于改善药物的活性。由于许多新旧疗法产生了耐受，许多化合物需要先进的药物发现技术来减小毒性，增加循环时间，或者改变生物分布。一种改善药物活性的策略就是利用水溶性的聚合物。各种水溶性聚合物已经显示出了改变的生物分布，促进细胞吸收的方式，改变通过生物载体的渗透性，改变通过身体的清除率。为了获得靶向性或者缓释的效果，水溶性聚合物已经被合成，它包含药物部分作为末端基团，作为部分主链，或者作为聚合链上的结构集团。
本发明代表性的组合物包括甲状腺激素或者它的类似物连接的聚合物。聚合物的连接可以通过共价键或非共价键。在优选的实施当中，聚合物的连接通过酯键或酐键。聚合物通过使用聚乙烯醇酯键连接的例子见图17。在这个制备过程当中商业可获得的聚乙烯醇(或者相关的共聚物)可以被甲状腺激素类似物酯化。盐酸盐被加入的三乙胺中和成为三乙胺盐酸化物，它在甲状腺激素不同的类似物的酯的聚合物沉淀的时候可以被水冲走。与聚合物连接的酯键在活体中经水解释放出促血管形成甲状腺激素类似物。
聚合物通过使用丙烯酸乙烯共聚物酐键连接的例子见图18。它与前述的聚合物共价连接相似，但是它是通过衍生自丙烯酸共聚物反应的酐来连接。酐键在活体中同样易于水解而释放甲状腺激素类似物。盐酸被三乙胺中和，随后用水冲沉淀的聚酐就可以冲掉三乙胺盐酸化物副产品。这一反应致使甲状腺激素类似物丙烯酸共聚物+三乙胺的形成。在活体中的水解作用下，加入丙烯酸乙烯共聚物的甲状腺激素类似物将随时间可控地释放。
另一个具有代表性的连接体包括甲状腺激素或者它的类似物与聚乙二醇(PEG)的连接。在各种药物中加入聚乙二醇，蛋白质和脂质体能够改善停留时间和减小毒性。聚乙二醇可以与活性剂通过在链末端的羟基配对，也可以通过其他方式。但是每分子的聚乙二醇仅限两分子活性剂。通过一各不同的途径，聚乙二醇和氨基酸共聚物经研究是具有新颖性的生物材料，它保留了聚乙二醇生物相溶性的特征，但同时它还具有增加的优点，即每分子具有多个附着点同时能被设计合成为适合多种应用。
另一个具有代表性的连接体包括甲状腺激素或者它的类似物以非共价键连接成的聚合物。具体见图19。优选的非共价连接为甲状腺激素或它的类似物在聚乳酸聚合物当中所形成的。多聚乳酸在体内经水解成为乳酸单体同时这已经作为药物在人体内的递送系统被应用。与前两种共价方式不同的是甲状腺激素类似物是通过化学键与聚合物连接，这是一种非共价的连接方式，它使得甲状腺激素类似物成为多聚乳酸聚合物串。这一反应致使在水中甲状腺激素类似物包含聚乳酸串的形成。过滤和水洗将导致包含聚乳酸串的甲状腺激素类似物的形成，在体内水解时致使甲状腺激素和乳酸被控制在一定水平。
此外，毫微技术的应用可以使得有用的物质和成分达到纳米尺寸。生物活性成分主要缺点是它的脆性。纳米尺寸的物质与具有生物活性的成分结合能够显著改善成分的耐久性，产生局部高浓度并通过较小的损失来降低成本。因此，添加的聚合的连接包括甲状腺激素和它的类似物的纳米颗粒形式。在这个具体实施当中，纳米聚合物和纳米颗粒可以被用作甲状腺激素和它的类似物的局部递送基质。它有助于及时可控地递送到细胞和靶细胞当中。
本发明的组合物包括甲状腺激素，类似物，和衍生物单独或者经共价键或非共价键与聚合物连接。代表性的类似物和衍生物的例子见图20，表A-D，表A显示了T2，T3，T4和溴代衍生物。表B显示内氨酰侧链的修饰体。表C显示羟基，联苯酯链，和D-配体。表D显示酪氨酸类似物。
术语“血管形成抑止剂”或者血管形成抑止剂是指任何化合物和成分单独或与其他成分结合抑止或者阻碍血管的形成。包括但不限于，四碘甲腺乙酸(TETRAC)，三碘甲状腺乙酸(TRIAC)，XT199和单克隆抗体LM609。
甲状腺激素，类似物和聚合的连接在血管形成中的作用甲状腺激素类似物或聚合形式对促血管形成的影响在于一个非基因的始端，经试验激素容易通过促分裂原活化蛋白激酶信号转导途径药理学的禁制因素而减少。这一结果显示通过甲状腺激素促分裂原活化蛋白激酶激活作用的另一结果是新的血液的生成。后者起源于非基因的开始，但是需要一个复合体基因转录程序结果。甲状腺激素的环境浓度相对稳定。在我们试验时，绒毛膜尿囊膜模型是甲状腺缺乏的，因此被认为是一个无法再生完整机体的系统。
对于血管形成的鸡胚绒膜尿囊膜的有效性分析提供了一个量化血管形成和研究通过甲状腺激素在新血液生成诱导作用中的可能机制模型。本发明公开了T4的促血管形成的效果，近似于它在纤维生长因子-2的绒毛膜尿囊膜模型中的效果，它可以增强纤维生长因子-2在适度剂量以下的作用。它进一步公开了激素的促血管形成的作用始于细胞膜，并且依赖于促分裂原活化蛋白激酶信号转导途径的甲状腺素活性。如上所述，治疗外周血管闭合疾病和冠状疾病，尤其是外周冠状血管疾病，以及伴随外周脉管系统闭合和/或冠状血管疾病所发生的疾病的方式也被公开。还公开了在病人体内促血管形成和/或恢复侧支血管的组合物和方法。组合物包括有效量的甲状腺激素类似物，聚合物和衍生物。方法涉及联合给予有效量的甲状腺激素类似物，聚合物和衍生物，与其他促血管形成因子，血管舒张剂，抗凝血剂，血栓溶解剂或者其他与血管有关的治疗，以低剂量，每日给药持续一周或更久。
绒毛膜尿囊膜测定法已经被用于确定各种被认为能够促血管形成的生长因子和化合物的活性。例如，T4在生理学的浓度下在体外试验中显示出了促血管形成性质并且具有FGF2的活性。PTU(甲状腺抑制剂)的存在并未降低T4的作用，结果显示T4经脱碘(作用)产生T3在此模型中并不是必要条件。各种甲状腺激素类似物的促血管形成效果在表1中列出。
表1，各种甲状腺激素类似物在绒毛膜尿囊膜模型中的促血管形成效果
在这个模型中新血管生长的出现需要七天，说明甲状腺激素的作用完全依赖于甲状腺激素原子核的受体和激素(TR)的相互作用。碘化甲(状)腺氨酸需要细胞核内的TR和它的自然配位体T3的络合，经定义，这一作用是基因组和基因表达的终点。另一方面，这个模型系统对于T4的选择性反应优于T3，TR的自然配体提高了一种可能性，那就是血管形成的开始有可能是通过T4在细胞膜上的非基因作用，而事实上它的结束才需要基因的转录。T4的非基因作用已经被全面的描述，通常是开始于细胞膜并且有可能通过信号转导途径来介导。它们不需要碘化甲(状)腺氨酸和Tr的细胞核内配体，但是可以对接或者调整基因的转录。类固醇的非基因作用已经被清楚地描述，并且已经被获知它能够与类固醇或其他化合物的基因作用对接。甲状腺素和四碘甲腺乙酸或者琼脂糖-甲状腺激素的试验显示甲状腺素促血管形成的效果事实上非常有可能开始于细胞膜。四碘甲腺乙酸阻断了甲状腺素的膜的开始作用。但是并非他本身使信号的转录活化。因此它是甲状腺激素非基因作用的探针。琼脂糖-甲状腺激素被认为不是完全获得于细胞内部，同时它已经被用于激素可能的细胞表面发生作用的检验模型。
本发明提供了促血管形成的组合物和方式。通过促血管形成治疗可接受条件的疾病包括，例如，外周血管闭塞和冠状疾病，尤其是，冠状血管闭塞，以及伴随冠状血管和/或冠状血管闭塞发生的疾病，勃起机能障碍，中风和创伤。同时还公开了促患者的血管形成和/或修复患者的侧支血管的组合物和方法。组合物包括有效量的甲状腺激素类似物和衍生物的聚合物以及有效量的腺苷和/或氧化亚氮。组合物可以是无菌注射剂，以及包含血管形成有效量的甲状腺类激素成分和腺苷衍生物的药学形式——它们在生理学和药学可接受的载体当中，同时还具有一种或多种赋形剂。
心肌梗塞伴随急性心肌梗塞而来的心脏衰竭的主要原因是新的血管形式，如血管形成的反应缺乏。甲状腺激素和它的类似物有利于心脏衰竭的治疗和刺激冠状血管的形成。本发明的方法包括，一种在梗塞发生时甲状腺激素类似物的单纯治疗方法，它或者通过直接注射到心肌部位，或者通过间断的主动脉结扎的冠状动脉注射刺激来产生暂时的等容收缩，以获得血管形成和/或心室的重塑。
因此，本发明的特征的一个方面在于通过给予患者所需量的甲状腺激素聚合形式，或它的类似物，通过有效地促进血管形成治疗血管闭塞，冠状疾病，心肌梗塞，局部缺血，中风和/或外周动脉血管疾病的治疗的方法。
甲状腺激素类似物的聚和物包括T3，T4，GC-1或者DITPA与聚乙烯醇，丙烯酸乙烯共聚物，聚乳酸，或者琼脂糖的连接体。
该方法还涉及有效量的甲状腺类激素成分和有效量的腺苷和/或氧化亚氮的联合给药，以低剂量每天给药持续一周或更长。一种或两种组分可以通过导管局部递送。甲状腺激素类似物和衍生物在体内通过将组合掺和到适当大小的脂质体或微粒当中的方式被递送到局部缺血的毛细血管床。甲状腺激素类似物，聚合物和衍生物可以通过共价键与合适的抗体连接被送到局部缺血的组织。
该方法可以被用于在心肌梗塞后的心脏功能恢复的治疗。该方法还可以被用于促进患有冠状动脉疾病病人的血液流动，这些病人由于心肌梗塞或血流不足进而产生了其他的疾病，如，外周血管闭塞症(外周动脉闭塞症)，或者勃起机能障碍。
伤口愈合另一方面，本发明也提供，抑制血管形成的组合物和方法给需要者甲状腺激素、其类似物和聚合物在抑制血管形成中的作用另一方面，本发明也提供，抑制血管形成的组合物和方法给需要者。需要通过抑制血管形成来治疗的情况包括，例如，原发性或者肾上腺转移瘤和基底性糖尿病视网病变。该组合物包括有效剂量的四碘甲腺乙酸，三碘甲状腺乙酸或mAb LM609。该组合物可以为无菌可注射的药剂形式，包括包含在生理上或药学上可接受的载体中的有效量的可抗血管形成的物质，还可包括一种或多种赋形剂。
此外，本发明还提供对需要通过抑制血管形成来治疗的情况的治疗方法，该方法是通过给需要的患者以足以抑制血管形成的有效量的抑制血管形成的药剂，以抑制血管形成。
本发明同样也提供用于抑制血管形成的抗血管形成药剂的例子，包括，但不局限于，四碘甲腺乙酸(TETRAC)，三碘甲状腺乙酸(TRIAC)，单克隆抗体LM609，或它们的组合物。这样的抗血管形成剂可以在细胞表面作为抑制血管形成前期的制剂。
与癌症相关的新血管生长需要用抑制血管来治疗的这种情况的例子包括，但不限于原发性或者肾上腺转移瘤。在此种治疗方法中，用能抑制甲状腺激素诱导的血管增生的化合物来抑制血管形成。实施例12阐明了这种方法的细节。
基底性糖尿病视网病变需要用抑制血管来治疗的这种情况的例子包括，但不限于基底性糖尿病视网病变，和相关的情况。在此种治疗方法中，用能抑制甲状腺激素诱导的血管增生的化合物来抑制血管形成。实施例8A和8B阐明了这种方法的细节。
已经公知的是，由组织缺氧引起的增殖性视网膜病变(相对于糖尿病引起的)依赖于阿尔发V(αV)整联蛋白表达(EChavakis et al.Diabetologia 45262-267，2002)。此处引用的是，甲状腺激素在一个具体的整联蛋白αVβ3上所起的作用是允许糖尿病视网膜病变的发展。整联蛋白αVβ3已确定在此处的作用是作为甲状腺激素的细胞表面受体。甲状腺激素，其类似物，和聚合物，通过该受体诱导血管形成。
治疗的方法甲状腺激素的类似物，聚合形式，和衍生物，可以用于刺激血管形成的治疗方法中，该方法用于需要这种治疗的患者。这种方法包括，有效量的甲状腺激素的类似物、聚合形式和衍生物的组合给药，按每日剂量持续一周或更长时间。这种方法可作为心肌梗塞后的心脏功能恢复的治疗方法。该方法同样可用于提高冠状动脉栓塞患者的血液流动，这些患者受着心肌缺血或者除心脏外的其他部分供血不足的折磨，比如末梢血管疾病，例如下肢周边血管阻，这种疾病的问题在于过低的血流。
该化合物可以任何医药上可接受的并适合该化合物方式给药，包括，口腔、直肠、局部或者注射(包括皮下、肌肉和静脉)给药。比如，腺苷的半衰期非常短。因此，最好以静脉注射的方式给药。然而，2取代的腺嘌呤核苷拮抗剂被开发出来后，由于其具有较长的半衰期，因此可以其他方式给药。甲状腺激素的类似物和聚合形式，以及衍生物，可通过例如静脉注射、口服、局部、鼻内方式的给药。
在不同的情况下，甲状腺激素的类似物和聚合形式及其衍生物以不同的方式给药。
所需甲状腺激素类似物和其聚合形式及衍生物的有效量，根据接受治疗者的情况确定并最终取决于医师。需要考虑的因素包括接受治疗的患者的情况，具体被使用的2取代的腺嘌呤核苷受体拮抗剂的效力，制剂的性质，以及患者的体重。用来治疗阻塞的甲状腺激素类似物或其聚合形式及衍生物的剂量可以是任何能提供预期效果的剂量。
制剂上述化合物，可以以药剂形式给药，该药剂包含甲状腺激素类似物或聚合形式或衍生物和与特定给药方式相适应的载体。任何本领域技术人员公知的，适合所希望用途活性成分的给药和施药系统，都可以被采用。针对口腔、直肠、局部或者注射(包括皮下、肌肉和静脉)方式给药的，适合的药学上可接受的载体为本领域技术人员所公知。该载体是药学上可接受的，意味着与制剂中的其他成分可配伍并且对受体没有毒副作用。
适合注射给药的制剂包括以无菌水溶液制备活性组合物，最好配制成与受体血液等张浓度。因此，该制剂可包含蒸馏水，5％的葡萄糖和盐的蒸馏水溶液。有用的制剂还要包含含有式(I)化合物的固体或者浓缩液，该固体或浓缩液被合适的溶剂稀释形成上述便于注射使用的溶液。
为肠道给药，该化合物可被混入惰性载体中置于单独单元中，比如胶囊、扁胶囊、片状或块状，每个单元包含预先设定好的一定量的该活性化合物；也可作为粉末或小颗粒；或，溶剂为水或非水的悬浊液或溶液，例如糖浆剂，甘香洒剂，乳剂或饮剂。适宜的载体可为淀粉或糖，包括润滑剂，调味剂，粘合剂，和其他同类性质的物质。
片剂可通过挤压或者铸型制得，可包含其他一种或多种可接受的组分。压制成的片剂，可通过在一个合适的机器中压缩可自由流动形态的该化合物来制备，该种形态的例子有，粉末或小颗粒，并可包含其他可接受的成分，例如粘合剂，润滑剂，惰性稀释剂，表面活性剂或分散剂。铸型制得的片剂可通过在一个合适的机器中，将粉末状的该活性化合物和其他合适的载体进行铸型，来制备。
可以通过将该活性化合物加入糖，例如，蔗糖，的浓缩的水溶液中，来制备糖浆剂或者悬浊液，其中也可加入任何可接受的其他组分。所述的可接受的其他组分包括调味剂，延迟糖结晶的试剂或者提高其他组分溶解度的试剂，例如，多元醇类，比如丙三醇或山梨醇。
作为肠道给药的制剂，可和常规载体一起做成栓剂，例如，可可油或者Witepsol S55(德国Dynamite Nobel化学公司的商标)，可以作为栓剂的基质。
此外，本化合物还可做成脂质体和微球体(微粒)给药。可用来向患者给药的脂质体和微球体(微粒)的制备方法对于本领域技术人员来说是公知常识，通过在此引述，将美国专利4,789,734的内容都合并于本文，该专利中描述了将脂质体中的生物材料制成胶囊的方法。主要是，将材料溶解在水溶液中，加入合适的磷脂和脂质，如果需要的话同时加入表面活性剂，如果有必要，可将该材料透析或声波降解。G.Gregoriadis撰写了已知的此类方法的综述，Chapter 14，“Liposomes，”Drug Carriers inBiology and Medicine，pp287-341(Academic Press，1979)。
由聚合体或蛋白质形成微球体为本领域技术人员所公知，并且可被制作以经过胃肠道直接进入血液系统。或者，本化合物可以加入微球体，或这些微球体的合成物中，并被做成在几天到几个月的时间段内缓慢释放。参见，例如，美国专利4,096,474，4,925,673和3,625,214，和Jein，TIPS 19155-157(1998)，此处引入该内容作为参考。
在一个实施方案中，这种甲状腺激素类似物或聚合形式及其腺苷衍生物可被制成脂质体或微粒体的制剂形式，在静脉给药后其大小适合置于在毛细血管床内。当该脂质体或微粒体置于萎缩的组织附近的毛细血管床内之后，该制剂就可在该位置直接给药，在这个位置上该制剂更能有效发挥作用。针对作为目标的萎缩组织，合适的脂质体通常要小于200毫微米，并且通常为单层微脂粒，就像，比如，美国专利5,593,688，以及Baldeschweiler，题目为“Liposomal targeting of ischemic tissue”中所公开的，这些文献的全部内容都通过在此引述而合并于本文。
优选的微粒体是那些由可生物降解的聚合物，例如，聚乙醇酸，聚乳酸和它们的共聚物，制备的。本领域技术人员能够容易地依照不同的因素，包括所希望的药物的释放速率以及所希望的剂量，来确定合适的载体体系。
在一个实施方案中，该制剂可通过导管直接给药至血管内部。这种给药方式，比如，可以通过导管的中空实现。在上述情况中的活性化合物具有相对较长的半衰期(从一天到一周或者更长)。该制剂可被包含在可生物降解的聚合物水凝胶之中，例如美国专利5,410,016中公开的那些。这些聚合物水凝胶可被送入一个组织的内腔之中，该活性化合物可随着聚合物的降解而释放。如果希望的话，这种聚合物水凝胶中可包含其中分散着活性化合物的微粒体或脂质体，这种方式提供了另一种控制活性化合物释放的机理。
该制剂可采用制药领域公知的方法来制备成单元剂量的形式。所有的这些方法都包含了将该活性化合物放入载体之中的步骤，该载体包含了一种或更多的可接受的组分。通常，该制剂的制备是通过统一且密闭的过程将活性化合物混入液体载体或者粉碎的固体载体中，如果需要的话，把这样的产品按所需剂量的分成一个个单元形式。
该制剂还可包括其他辅助成分，比如多种生物活性物质，例如生长因子(包括TGF-β，碱性成纤维生长因子(FGF2)，表皮生长因子(EGF)，转化生长因子α/β(TGFα/β)，血小板源生长因子(PDGF)，和血管内皮生长因子/血管渗透因子(VEGF/VPF))，抗病毒，抗病菌，抗炎，免疫抑制，止痛，血管化试剂，和细胞粘附分子。
除了上述提到的组分外，该制剂还可进一步包含在药剂领域中常用的一种或多种其他可接受的组分，例如，稀释剂，缓冲剂，调味剂，粘合剂，表面活性剂，稠化剂，润滑剂，牢度增进剂，防腐剂(包括抗氧化剂)和类似物质。
材料和方法试剂所有的试剂均为化学纯，购买自Sigma Chemical Co.(St.Louis，MO)或VWR Scientific(Bridgeport，NJ)。醋酸可的松，小牛血清白蛋白(BSA)和凝胶溶液(2％来自B型bovine skin)购买自Sigma Chemical Co.受精的鸡卵细胞购买自Charles RiverLaboratories，SPAFAS Avian Products&Services(North Franklin，CT).T4，3，5，3，’-三碘代-L-甲状腺素(T3)四碘甲腺乙酸，T4-琼脂糖，和6-N-丙基-2-硫脲嘧啶(PTU)来自Sigma；PD98059来自Calbiochem；CGP41251来自Novartis Pharma(Basel，Switzerland)。多克隆抗体-FGF2和单克隆抗体-β-肌纤蛋白来自Santa Cruz Biotechnology，人重组FGF2来自Invitrogen。磷酸化的ERK1/2DE多克隆抗体来自New England Biolabs，羊抗兔IgG(goat anti-rabbit IgG)来自DAKO。
血管形成的绒毛尿囊膜(CAM)模型活的有机体内的血管新生通过前文描述的方法检测。9-12个10天的小鸡晶胚购买自SPAFAS(Preston，CT)，在温度37℃和相对湿度55％的条件下孵化。用一个皮下注射针头在隐藏于蛋壳下的气囊处戳一个小孔，在鸡蛋的宽的一侧戳第二个小孔，通过对光检查以确定该孔位于胚膜上无血管的部分。通过给第一个孔施以内压的方式在所述的第二个的下面制造一个假的气囊，使得绒毛尿囊膜(CAM)与蛋壳相分离。在绒毛尿囊膜的上方的蛋壳上用手工研磨轮(Dremel，division of Emerson Electric Co.)开一个大约1.0cm的窗口，从而使得可以直接接触到绒毛尿囊膜的底部。使用FGF2(1μg/ml)作为标准前血管生成试剂来诱导10天大的晶胚的绒毛尿囊膜上面的血管部分。消毒的1号圆形滤纸(Whatmaninternational)预先用3mg/ml醋酸可的松以及1mmol/L的PTU处理，并在无菌条件下烘干。然后将甲状腺激素，激素类似物，FGF2或控制溶剂，和抑制剂施加至该滤纸上，并将滤纸干燥。然后将该滤纸悬浮在PBS中并置于尚在生长中的绒毛尿囊膜上。在这个持续3天的孵化过程中，第一天以T4或FGF2处理的滤纸置于其上，30分钟后在选定的样品上施加FGF2抗体。在第24小时，MAPK级联抑制剂PD98059也通过用滤纸的方式局部施加在绒毛尿囊膜上。
显微镜下分析绒毛尿囊膜部分在温度37℃和相对湿度55％的条件下孵化3天后，直接位于每个圆形滤纸下的绒毛尿囊膜组织从被控制和处理过的绒毛尿囊膜样品上切除下来。切下来的组织用PBS润洗3次，置于35-mm的皮氏培养皿(Nalge Nunc)中，在SV6立体显微镜(Zeiss)的50倍率下进行观测。用带3电荷耦合组件的彩色数码相机(Toshiba)获得暴露于滤纸的绒毛尿囊膜部分的数码相片，用Image-Pro图像处理分析软件(MediaCybernetics)进行分析。每一个圆形区域中的血管分支点的数目等于每一个相应圆形滤纸上数出的数目。每一个绒毛尿囊膜计算一次，相同的试验条件(甲状腺激素或类似物，FGF2，FGF2抗体，PD98059)分析8到10个绒毛尿囊膜样品。此外，每个试验重复3次。每个样品的新增的支脉点数经过标准误差分析后就是结果的血管形成指数。
FGF2分析在M199培养基上培育ECV304内皮细胞并用10％的牛胚胎血清辅助处理。这些ECV304内皮细胞(106个)被置于24层的凝胶盘上在培养基中放置整夜，然后在血清中清洗，并按前面所述的方式用T4或T3处理。72小时之后，收集上层清液并分析未经商品ELISA系统(R&D Systems)稀释的FGF。
MAPK活化在含有0.25％的去荷尔蒙血清13的培养基中培育ECV304内皮细胞2天。然后将该细胞用T4(10-7mol/L)处理15分钟至6小时。在进一步的试验中，用T4或FGF2或存在于PD98059或CGP41251中的T4处理这些细胞。以本文前述的方法预先处理所有样品的原子核部分，这些蛋白质被聚丙烯酰胺凝胶电泳分离，迁移至与磷酸化ERK1/2的抗体免疫杂交的膜的一侧。磷酸化ERK1/2的原子核的存在标示出了被T4活化的那些MAPK变体。
逆反转录-聚合酶链反应将至于10cm凝胶盘上的EVC304细胞汇合用T4(10-7mol/L)处理6至48小时。用异硫氰酸胍(Biotecx Laboratories)提取整个RNA。RNA(1μg)为逆反转录-聚合酶链反应的受试对象，该反应使用Access RT-PCR系统(Promega)。在45℃下反应45分钟，整条RNA全部逆反转录为cDNA，在94℃下2分钟就会变性。第二链合成和PCR扩增循环40次并在94℃下变性30秒，在60℃下退火60秒，在68℃延伸120秒，在整个循环完成后最后在68℃延伸7分钟。FGF2的PCR起始物如下FGF2义链5’-TGGTATGTGGCACTGAAACG-3’(序列ID编号1)，反义链5’-CTCAATGACCTGGCGAAGAC-3’(序列ID编号2)；PCR产物的长度为734bp。GAPDH的起始物包括，义链5’-AAGGTCATCCCTGAGCTGAACG-3’(序列ID编号3)，和反义链5’-GGGTGTCGCTGTTGAAGTCAGA-3’(序列ID编号4)；PCR产物的长度为218bp。RT-PCR的产物用1.5％的琼脂糖凝胶电泳分离并用溴化乙锭纯化。该凝胶的目标区域用LabImage软件(Kaoelan)，对[FGF2/GAPDH]X10每个取样时间计算一次。
统计分析采用单向方差分析比较试验值和对照试样。
植入老鼠体内的基底膜基质FGF2和癌细胞系中的活的有机体内的血管形成活的老鼠血管形成模型按照前文所描述的方法试验老鼠基底膜基质模型(Grant et al.1991；Okada et al 1995)，在我们的实验室中采用(Powel et al.，2000)。简要地说，生长因子自由基底膜基质(Becton Dickinson，Bedford MA)在4℃解冻整夜，并被至于冰块之上。基底膜基质的等量样本将被至于冷冻聚丙烯的试管中，并在其中加入FGF2，甲状腺激素类似物或癌细胞(1×106个细胞)。基底膜基质和盐水，FGF2，甲状腺激素类似物或癌细胞用皮下注射至小鼠腹侧中线。在第14天，该小鼠将被解剖，固体凝胶被割除出来对新生血管进行分析。不同剂量的化合物A-D经由皮下注射。等量和试验的植入凝胶样本被置于一个含有0.5ml的细胞裂解液(Sigma，St.Louis.MO)的微离心分离试管并用槌杵压碎。接下来，该试管允许在4℃的条件下经过整夜培育，然后在第二天在1,500xg的条件下离心分离15分钟。每个样本的200μl细胞液等量样本被加入1.3ml Drabkin’s试剂溶液中。该溶液以500nm的分光光度计进行分析。吸收光的比例相应于样本中血色素的含量。
肿瘤生长与转移-肿瘤移植的鸡胚尿囊膜模型步骤如前所述(Kim et al.，2001)。简要地说，1×107肿瘤细胞置于每一个CAM的表面(7天大的胚胎)并培育一周。肿瘤的结果被检测并切成50mg的碎片。这些碎片每组将被置于另外10个CAM上，并在第二天用25μl溶解于PBS的A-D化合物局部处理。7天后，来自于每一个鸡蛋的肿瘤将被检测每个CAM上的肿瘤的重量也被确定。图表8显示了CAM中的活有机体内的肿瘤生长模型的步骤。
四碘甲腺乙酸，三碘甲状腺乙酸，以及甲状腺激素拮抗体，对肿瘤生长率，肿瘤血管生成，和癌细胞系的肿瘤迁移，的作用，也可被确定。
肿瘤生长与迁移-小鼠中的肿瘤异种移植模型这个模型在我们2000已发表的作者为Kerr et al.的文章中已有描述，；Van Waeset al.，2000；Ali et al.2001；和Ali et al.2001，每一篇在此都全文引用)。不同剂量的四碘甲腺乙酸，三碘甲状腺乙酸，以及甲状腺激素拮抗体对对不同类型的肿瘤的抗癌效果可被确定和比较。
肿瘤生长与迁移-迁移的试验模型本模型在我们最近发表的文章中(Mousa，2002；Amirkhosravi et al.，2003a and 2003b，每一个都在此全文引用作为参考)。简要地说，B16小鼠恶性黑色素瘤细胞(ATCC，Rockville，MD)和其他癌细胞系在RPMI1640中(Invitrogen，Carlsbad，CA)培育，补充处理用10％牛血清，盘尼西林和链霉素(Sigma St.Louis MO).这些细胞被培育到70％克隆率并用胰岛素-EDTA切割下来，然后用磷酸盐缓冲盐液(PBS)冲洗两次。为迁移试验，这些细胞将再次浸在PBS中，该PBS的浓度为2.0×105细胞或毫升之一。动物C57/BL6小鼠(Harlan，Indianapolis，Indiana)重18-21克，用于本研究。所有的程序都在IACUC和实验室守则的指导下进行。不同剂量的四碘甲腺乙酸，三碘甲状腺乙酸，以及其他甲状腺激素拮抗体对对不同类型的肿瘤的抗癌效果可被确定和比较。
甲状腺激素类似物对血管形成的作用T4诱导的CAM模型中的血管形成指数(在基数之上增加了1倍)显著升高。0.001-1.0μM的T3或0.1-1.0μM的T4能获得最大的效果使血管形成指数增加2-2.5倍，比1μg的FGF2的血管形成指数高2-3倍(表格1和图表1a和1b)。T4在刺激血管形成中的作用是在PTU存在或不存在的情况下获得的，这种情况抑制了T4转变为T3。91-100nM的T3单独能有效的诱导CAM模型中的前血管形成效果。T4琼脂糖也有与T4相似的前血管形成作用。T4或T4琼脂糖的前血管形成效果可被四碘甲腺乙酸或三碘甲状腺乙酸100％阻滞。
FGF2的前血管形成活性被次最大浓度的T4加强T4和FGF2的组合物在次最大浓度导致了血管形成指数的升高达到T4和FGF2任一在最大浓度时的前血管形成效果的水平。(图2)MAPK级联因子对CAM模型中T4和FGF2在前血管形成作用中的影响T4或FGF2的前血管形成作用被0.8-8μg的PD98059完全阻滞(图3)。
特异整联蛋白ανβ3血管形成对CAM模型中T4和FGF2在前血管形成作用中的影响T4或FGF2的前血管形成作用被10μg的特异单克隆抗体LM609完全阻滞(图4a和4b)。
对大量的生长因子和其他促进因子或者血管生成抑制因子(2-9)进行了CAM评估。在目前的研究中，与FGF2相比，生理浓度的T4显示出了前血管形成的性质。PTU的存在没有减低T4的作用，说明T4的脱碘化转变到T3在这个模型中不是必不可少的。由于本模型中新血管生长的出现需要好几天的时间，我们推测甲状腺激素的作用完全依赖于甲状腺激素(TR)原子核受体之间的交互作用。依赖于TR和它的自然配体之间核内配位的，碘甲状腺原氨酸的作用，T3，通过表征基因组，在基因表达中达到顶峰。另一方面，这个模型系统对T4比T3优先反应，TR的自然配体提高了T4引起的细胞质膜上的血管形成的可能，并且使需要基因转录的这一作用达到顶峰。T4的非基因组作用已被广泛描述，这一作用通常在细胞质膜开始并可通过信号转导途径调停。这不需要碘甲状腺原氨酸和TR在核内的配体束缚，但是可以协调或调整基因转录。类固醇的非基因组作用也已经被广泛描述，已知可被用于协调类固醇或其他化合物的非基因组作用。已经对T4和四碘甲腺乙酸以及T4琼脂糖进行了试验，结果显示T4的前血管形成作用实际上很有可能开始于细胞质膜。我们已经证明，四碘甲腺乙酸阻滞T4的起始于细胞质膜作用，但是本身并不能激活信号转导。这样，它可以作为甲状腺激素非基因组作用的探针。琼脂糖T4被认为是不能进入细胞内部，被我们和其他人用作检测模型来激素可能具体有的细胞表面起始作用。
这些结果表明甲状腺激素活化MAPK的另一结果是新血管形成。后者是以非基因组的方式起始，但是当然需要随之而来的复杂的基因转录过程。
甲状腺激素的环境浓度相对稳定。在我们进行测试的时候，CAM模型是甲状腺激素缺乏的，并因此被看作一个不能产生完整生物体的系统。我们用大量的其他调节剂提供T4的循环水平，这样来调节血管对内生血管因子，比如VEGF和FGF2，的敏感性。
本发明将进一步由以下实施例证明，但不限于以下实施例。
实施例实施例1.甲状腺激素对血管生成的作用如图1A所显示和图1B中总结的，在CAM评估中L-T4和L-T3都加强了血管形成。总浓度为生理条件0.1μmol/L的T4在培养基中，将血管分支形成提高了2.5倍(P＜0.001)。T3(1nmol/L)也能2倍地刺激血管形成。由于T4在细胞5’-单位膜的作用下转变为T3所以才使得T4表现出活性作用，这样的可能性被排除，因为发现脱碘酶抑制剂PTU对T4带来的血管形成作用没有抑制作用。PTU被应用于本CAM模型中的所有滤盘上这样，为评估生长因子，T4和T3在CAM模型中的刺激新血管形成的作用被预先标准化。
实施例2.T4琼脂糖和四碘甲腺乙酸的作用我们已在前面公开，T4琼脂糖，以与T4同样的方式，激发细胞内起始于细胞质膜的信号转导途径，并且，T4和T4琼脂糖的这种作用能被，脱氨基碘甲状腺原氨酸类似物，四碘甲腺乙酸，所阻滞，后两者都已知可抑制T4对细胞质膜的粘附。在CAM模型中，加入四碘甲腺乙酸(0.1μmol/L)能抑制T4的作用(图2A)，但是，四碘甲腺乙酸单独却对血管形成没有效果(图2C)。T4琼脂糖的作用，以0.1μmol/L的激素浓度加入，与T4在CAM模型中的作用类似(图2B)，并且，T4琼脂糖的作用同样被四碘甲腺乙酸的作用所抑制(图2B；图2C进行了总结)。
实施例3.次最大浓度的T4对FGF2前血管形成作用的加强血管形成事一个复杂的过程需要多种多肽生长因子的参与。CAM评估需要至少48小时使血管生长被显示出来；这样，这个模型中甲状腺激素的明显的细胞质膜作用，会带来对该激素的复杂的转录反应。因此，我们确定了FGF2是否参与了何在各激素反应，以及该激素是否加强了次生理水平的这一生长因子的作用。T4(0.05μmol/L)和FGF2(0.5μg/L)各自都能普通水平地刺激血管形成(图3)。次最大浓度的FGF2的血管形成作用可被次生理浓度的T4加强到FGF2单独时1.0μg/L的水平。由此，次最大浓度激素的作用和生长因子的浓度表现出协同作用。为了更精确地确定FGF2在甲状腺激素对血管形成的刺激过程中的作用，一个FGF2的多克隆抗体被加入以FGF2或T4处理过的滤纸上，然后72小时后测量血管形成。图4证明了FGF2抗体抑制了在外源FGF2不存在的情况下由FGF2或T4激发的血管形成，暗示了CAM评估中的T4作用可被加强的FGF2表达所调节。控制IgG抗体就对CAM评估中没有刺激或抑制的作用。
实施例4.甲状腺激素激发的内皮细胞释放FGF2检测用T4(0.1μmol/L)或T3(0.01μmol/L)处理3天的ECV304内皮细胞中膜上的FGF2水平。如表格2所示，T3使得培养基中的FGF2浓度升高了3.6倍，而T4使其升高了1.6倍。这一发现说明，甲状腺激素可以加强FGF2的血管形成作用，至少部分由于，是通过提高内皮细胞可用的生长因子的浓度。
表2.T4和T3对ECV304内皮细胞的FGF2释放的作用。
“*P＜0.001，比较T3处理的试样和ANVOA控制试样；*P＜0.05，比较T3处理的试样和ANVOA控制试样。”实施例5.ERK1/2信号转导途径在甲状腺激素和FGF2激发的血管形成中的作用T4对细胞施加非基因组作用的途径是MAPK信号转导层，特别是ERK1/2活化。我们知道T4通过表皮生长因子加强ERK1/2活化。MAPK途径在甲状腺激素FGF2表达引起的刺激中的作用用过使用PD98059(2至20μmol/L)来检测，PD98059是通过酪氨酸-苏氨酸激酶MAPK激酶-1(MEK1)和MEK2来作为ERK1/2活化的抑制剂。表格中的数据说明PD98059有效地阻滞了，用T4或T3处理过的ECV304内皮细胞释放的FGF2的升高。CAM评估中也进行了对ERK1/2抑制作用的平行研究，结果分别显示在图5中。T4和T3的组合，两者各自都在生理浓度，能使血管分支提高2.4倍，该作用可以被3μmol/L的PD98059完全阻滞(图5A)。FGF2对血管分支形成的刺激(2.2倍)同样也能被ERK1/2活化抑制子有效阻滞(图5B)。因此，甲状腺激素的前血管形成作用起始于细胞质膜的，并且牵涉了刺激释放自细胞膜内皮的FGF2的ERK1/2途径。转换FGF2信号需要ERK1/2活化并且带来心血管形成。
实施例6.甲状腺激素和FGF2对MAPK活化的作用ECV304细胞中磷酸化的激发和ERK1/2MAPKs的原子核易位被研究，该ECV304细胞被T4(10-7mol/L)处理15分钟到6个小时(图6A)。细胞原子核中在T4处理后15分钟内出现的磷酸化的ERK1/2，在处理30分钟后达到最大水平，在6小时后仍能很明显(图6A)。该激素的这种作用被PD98059抑制(图6B)，这种结果是预期希望的，因为这种化合物阻滞了由于MAPK激酶带来的ERK1/2的磷酸化。这传统蛋白质激酶C(PKC)-α，PKC-β，PKC-γ抑制子CGP41251也阻滞了这些细胞中该激素在MAPK活化中的作用，就像我们在其他细胞系中对T4的作用。甲状腺激素加强了这些细胞因子和生长因子的作用，比如干扰素-γ13和表皮生长因子。在ECV304细胞中，T4加强了由FGF2共同孵化15分钟而引起的MAPK活化。将在ECV304细胞中的观察应用到CAM模型，我们猜测，该基因诱导的血管生成的复杂机理包括ECV304内皮细胞释放FGF2和释放出来的FGF2在血管形成中的自分泌作用的加强。
实施例7.甲状腺激素处理的ECV304细胞中的RT-PCR在对T4的前血管形成作用的机理研究中提出的最后一个问题是，该基因是否可以诱导FGF2基因表达。内皮细胞以T4(10-7mol/L)处理6到48小时，然后进行以RT-PCR为基础的FGF2评估和GAPDH RNA(来自cDNA测序；图7)。FGF2cDNA丰度的提高和对GAPDH内容的校正，在用该激素处理6小时后明显可见，并且在处理48小时后加强。
实施例8.老鼠的视网膜新血管形成模型(糖尿病或非糖尿病引起的)为评估受试客体在视网膜新血管模型中的药理活性，幼鼠被暴露于高氧环境中7天，然后使其恢复，这样刺激视网膜上的新血管形成。评估受试客体是否抑制了视网膜上的新血管形成。这些视网膜用苏木素-伊红染色后检测，并且至少有一种染色，这样表明了新血管形成(通常是由选择素染色剂)。其他染色剂(比如，PCNA，PAS，GFA P，血管形成标记，等等)都可以使用。这个模型的总结如下动物模型·幼鼠(P7)和它们的dams被置于高氧环境中(含氧量70％-80％)7天。
·在P12，这些小鼠从这些氧化环境移出，并被转入正常的环境。
·这些小鼠被允许恢复5-7天。
·将这些小鼠杀死并收集眼器官·这些眼器官被冷冻或用其他合适的方式保持不变。
·这些眼器官被合适的组织化学染色剂染色。
·这些眼器官被合适的免疫组织化学染色剂染色。
·收集血液，血清，或其他组织。
·这些有微血管变化的眼器官，对其任何和所有的结果进行检测。新血管的生长用半定量方法记录。图象分析也可被使用。
实施例8.甲状腺激素和糖尿病视网膜病变在此使用J de la Cruz et al.，J Pharmacol Exp Ther280454-459，1997公开的一种方案，将四碘甲腺乙酸施药给老鼠，这些老鼠具有被链脲佐菌素诱导的实验性糖尿病和糖尿病视网膜病变。终结点是增生型视网膜病变(血管形成)被四碘甲腺乙酸抑制。
实施例9.试管中人类上皮和纤维原细胞的伤口愈合试管中2维伤口的愈合方法记载于Mohamed S，Nadijcka D，Hanson，V。试管中有伤口愈合物质甲氰咪胍。Drug Intell ClinPharm 20973-975；1986，在此处全文引用作为参考。此外，一个3维伤口的愈合方法也已在我们的实验室中开发并被应用于这个研究中(见下文)。数据显示了甲状腺激素对伤口愈合的有效刺激。
试管中人类真皮纤维原细胞的3D伤口愈合评估第一步制备收缩胶原蛋白凝胶1)用350μl 2％的BSA覆盖24孔培养板在RT条件下2小时，2)80％融合性NHDF(正常人类真皮纤维原细胞，Passage5-9)在生长培养基上被胰蛋白酶化和中和，离心分离并用PBS洗一次。
3)制备胶原蛋白凝胶混合物，在冰块上轻轻混和原液最终浓度5×DMEC 1×DMEC3mg/ml牛皮胶原(vitrogen)2mg/ml去离子水合适的NHDF2×10-5cells/mlFBS 1％
4)从24孔培养板加入2％BSA，加上胶原质细胞混合物350ul/孔，并且在CO2培养箱中37℃下培养该培养板。
5)1小时之后，按0.5ml/孔加入DMEM+5％FBS培养基，用一个10ul的探针分离每一个孔边缘的胶原质凝胶，然后将其培养2天。这些纤维原细胞将使胶原质凝胶收缩。
第二步制备3D血纤维蛋白伤口处凝块和嵌入伤口的胶原质培养1)制备纤维蛋白原溶液(1mg/ml)含有或不含待测试剂。对微量离心管中的每个孔施350ul纤维蛋白原溶液。
原液最终浓度5×DMEC 1×DMEC纤维原蛋白 1mg/ml去离子水合适的待测试剂合适浓度FBS 1％或5％2)将每一个收缩的胶原质凝胶用剪刀从中间切开。用PBS冲洗这些凝胶并将其移至24孔培养板的每个孔的中间。
3)将1.5ul人类凝血酶(0.25U/ul)加入每个试管中，混和均匀然后在胶原质凝胶四周加上该溶液，该溶液将在10分钟内聚合。
20分钟后，加入含有或不含待测试剂的DMEM+1％(或5％)FBS，450ul/孔，然后在CO2培养箱中37℃下培养该培养板5天。每天都对其照相。
糖尿病鼠内的活有机体的伤口愈合对糖尿病鼠使用尖锐切口创伤，测试了甲状腺激素类似物和它的二聚形式的作用。伤口的愈合率，断裂强度和组织学分析，在3-21天内周期性检测。
实施例10.心肌梗塞形成的啮齿动物模型心肌梗塞形成的冠状动脉的结扎模型被用于观察小鼠的心脏功能。该老鼠开始用甲苯噻嗪和克他命麻醉，在其失去知觉后，在气管插入导管并施加一定压力的气流。将该老鼠仰卧放置四肢松散地捆绑，对其沿中线施以胸骨起开术。将心脏轻轻取出，用6-O缝合牢固地固定左前下方的冠状动脉。该心脏迅速被重新放入胸腔，胸廓切开术的切口用3-O荷包缝合，随后用间断缝合或外科手术夹将皮肤闭合。该动物被置于一个温度可控制的垫子上并且在恢复期间密切观察。需要的时候补充氧气和进行心脏复苏。恢复之后，将该老鼠送回原来的动物养育装置。这样的冠状动脉结扎带来大量的前室壁心肌梗死。该程序后48小时的死亡率可能高达50％，并且由该程序后带来的梗塞面积是可变的。基于这些考虑，和以前的经验，为了得到16-20个具有大面积梗塞的老鼠，这样可以比较下面讨论的两种甲状腺激素给药模型，大约需要400只老鼠。
这些试验的设计是为了显示，在冠状动脉结扎之前或之后的甲状腺激素的系统给药，能给在完整的动物体内带来有益的效果，包括，用心回波描记术评估的血液动力方面的异常程度和血液动力测量，和降低梗塞面积。检测结果在梗塞发生3周后提出。尽管有些老鼠不会发生梗塞，或者梗塞面积小，这些老鼠可通过心回波描记术检测正常和血液动力正常来确定(LV舒张压＜8mm Hg)甲状腺激素给药有两种给药方式。第一种，甲状腺激素直接注射于梗塞周围的心肌。由于，在直接开胸梗塞的过程中，正常的和缺血的心肌很容易区分，所以，这种方式提供充足的激素给药以探测血管形成效果。
尽管第一种给药方式对于采用了冠状动脉替代管手术的患者有用，也有关于一次注射能诱导血管形成的规律的证据，使用第二种模型的应用更宽的方式也可被使用。在第二种模式中，一个导管逆行地通过颈外动脉置入麻醉的未经诱导心肌梗塞的小鼠的左心室中。此外，在主动脉瓣上用针将主动脉刺破一个小孔。甲状腺激素的体内注射被突然闭合几秒钟的位于冠状动脉上的动脉所刺激，这样就带来等容收缩。在动脉收缩之后，甲状腺激素立即被注射入左心室或动脉中。接下来的等容收缩推动血液沿着冠状动脉将甲状腺激素灌注整个心肌。为取得有效结果，整个过程可被重复多次。该注射次数取决于每次的剂量和新血管形成的情况。
超声波心动描记图取得未麻醉老鼠的二维和M型超声心动图的方法被研究出来。左心室收缩内径，功能，壁厚和局部室壁运动。这些测量是在无法看到的条件下进行的以防止甲状腺激素给药误差。
血液动力学血液动力学的测试用于确定左心室的损伤程度。用异氟烷麻醉老鼠。尽管切口是在右颈前部，右颈动脉和颈外静脉同样被隔开并插入压力转导管(Millar，SPR-612，1.2Fr)。接下来进行以下测量心率，心脏收缩和舒张BP，平均动脉压，左心室舒张压和舒张末期压，和+和-dp/dt。其中最有用的是左心室舒张末期压，其升高与心肌损伤程度相关连。
心梗面积为用TTC方法测量梗塞面积将老鼠麻醉。
形态分析测量，梗塞区域，梗塞区域附近，通常是后壁的梗塞区域相对的另一侧心肌，的微血管密度[微血管数/mm2]。对每只老鼠，7-10高倍率显微镜[×400]下以图象分析软件数字式存储肌细胞横截面。微血管数目可用盲性探测器来确定。微循环可被定义为第三层外的直径为150微米或更小的细动脉，将组织液提供给小动脉和细动脉。为了纠正左心室增生带来的差异，微血管的密度将根据体重校正用LV重量区分。来自假手术老鼠的心肌也如此操作。
实施例11.αγβ3拮抗剂对T4或FGF2的前血管形成效果的作用10微克的αγβ3抑制子LM609完全抑制了CAM模型中的FGF2和T4诱导的前血管形成作用(图16)。
实施例12与癌症相关的新血管生长抑制。
在此使用J.Bennett，Proc Natl Acad Sci USA992211-2215，2002所公开的一种方案，将四碘甲腺乙酸给药于SCID老鼠，该老鼠接受了从移植的人类乳癌细胞(MCF-7)。四碘甲腺乙酸置于饮水中将老鼠模型中的激素类似物的循环水平提高至10-6M。终点是四碘甲腺乙酸对该移植组织引起的血管形成起了抑制作用。
其他实施方案尽管本发明已经被上述细节所描述，上述描述只是证明本发明而非限制本发明的范围，本发明的范围将在下面的权利要求书中限定。其他方面，优点和修正，均包含在下述权利要求之内。
权利要求
1.一种治疗需要以促进血管形成来治疗的情况的方法，所述方法包括向受体施以需要量的甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或其聚合形式，所施的这些化合物足以在所述的受体中促进血管形成。
2.如权利要求1所述的方法，所述的需要以促进血管形成来治疗的情况选自以下血管闭塞病，冠状动脉病，冠状动脉疾病，勃起机能障碍，心肌梗塞，局部缺血，中风，外周动脉末梢血管障碍和创伤。
3.如权利要求1所述的方法，所述的甲状腺激素或类似物与选自下述的物质结合聚乙烯醇，丙烯酸乙烯共聚物，聚乳酸，或者琼脂糖。
4.如权利要求1所述的方法，所述的甲状腺类似物是甲状腺素(T4)，三碘甲状腺原氨酸(T3)，3，5-二甲基-4-(4’-羟基-3’-异丙基苯甲基)-苯氧基乙酸(GC-1)，或者3，5-三磷酸脱氧肌苷酸(DITPA)。
5.如权利要求1所述的方法，所述甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或其聚合形式的给药方式为注射，口服，肠道，或者局部，或者几种方式联合。
6.如权利要求5所述的方法，所述的注射给药方式为皮下注射，腹膜内注射，肌肉注射，或者静脉注射，或上述几种的联合。
7.如权利要求1所述的方法，所述甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或其聚合形式被包裹或者混合在微粒，脂质体，或者聚合物中。
8.如权利要求7所述的方法，所述聚合物为聚乙醇酸交酯，多乳酸化合物，或者它的共聚物。
9.如权利要求7所述的方法，所述脂质体或微粒的尺寸小于200纳米。
10.如权利要求7所述的方法，所述脂质体或微粒以静脉注射的方式给药。
11.如权利要求10所述的方法，所述脂质体或微粒被置于周围局部缺血的毛细血管床中。
12.如权利要求1所述的方法，所述甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或其聚合形式，通过导管给药。
13.如权利要求12所述的方法，所述甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或其聚合形式，在一个聚合体系中通过导管应用于血液组织内部。
14.如权利要求1所述的方法，所述甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或其聚合形式，与选自下述的一种或多种化合物联合给药生长因子，血管扩张剂，抗凝剂，或者它们的混合物。
15.如权利要求14所述的方法，所述的生长因子选自下述转化生长因子α(TGFα)，转化生长因子β(TGFβ)，基本成纤维细胞生长因子，血管内皮生长因子，上皮细胞生长因子，神经生长因子，血小板衍生的生长因子，以及血管渗透因子。
16.如权利要求14所述的方法，所述的血管扩张剂选自下述腺苷，腺苷衍生物，或它们的混合物。
17.如权利要求14所述的方法，所述的抗凝剂选自下述肝素，肝素衍生物，抑止因子Xa，抗凝血酶，阿斯匹林，氯吡格雷，或它们的混合物。
18.如权利要求14所述的方法，所述甲状腺激素，甲状腺激素类似物，或其聚合形式，以弹丸注射的方式给药，先于或者后于所述生长因子，血管扩张剂，抗凝剂，或者它们的混合物。
19.一种用一个药物装置促血管形成的方法，所述方法包括将装置插入病人体内之前，在用甲状腺激素类似物，或者它的聚合物形式对该装置或在该装置周围包衣。
20.如权利要求19所述的方法，所述的包衣步骤进一步包括用生长因子，血管舒张剂，抗凝剂，或者它们的混合物，对该装置的包衣。
21.如权利要求19所述的方法，所述的装置为支架，导管，插管或电极。
22.一种治疗可通过抑制血管形成来治疗的状况的方法，所述方法包括给予病患需要量的对抑止血管形成有效的血管形成抑制剂。
23.如权利要求22所述的方法，所述可通过抑制血管形成来治疗的状况选自，初期的或者转移的肿瘤，糖尿病性视网膜病。
24.如权利要求22所述的方法，所述的血管形成抑制剂为四碘甲腺乙酸(TETRAC)，三碘甲状腺乙酸(TRIAC)，单克隆抗体LM609，XT199或者它们的混合物。
25.如权利要求22所述的方法，所述的血管形成抑制剂给药方式为注射，口服，肠道，或者局部，或者这几种方式结合。
26.如权利要求22所述的方法，所述的血管形成抑制剂与一种或多种抑制血管形成药物或者化学治疗药物联合给药。
27.如权利要求22所述的方法，所述的血管形成抑制剂作用于细胞表面。
28.一种血管形成剂，包括一种甲状腺激素或其类似物。
29.一种血管形成剂，包括一种甲状腺激素或其类似物或它们结合于聚合物上。
30.如权利要求29所述的血管形成剂，所述的类似物选自附图20，表A-D，中的化合物。
31.如权利要求29所述的血管形成剂，所述的甲状腺激素类似物为甲状腺素(T4)，三碘甲状腺原氨酸(T3)，3，5-二甲基-4-(4’-羟基-3’-异丙基苯甲基)-苯氧基乙酸(GC-1)，或者三磷酸脱氧肌苷酸(DITPA)。
32.如权利要求29所述的血管形成剂，所述聚合物为聚乙烯醇，丙烯酸乙烯共聚物，聚乙二醇(PEG)聚乳酸，或琼脂糖。
33.如权利要求29所述的血管形成剂，所述结合是通过共价或非共价键。
34.如权利要求33所述的血管形成剂，所述共价键是一个酯键或一个酐键。
35.一个药物制剂，包括包含于药学上可接受的载体中的权利要求29所述的血管形成剂。
36.如权利要求35所述的药物制剂，进一步包括一种或多种药学上可接受的辅料。
37.如权利要求35所述的药物制剂，所述的制剂被被包囊或者包含于脂质体，微囊或者聚合物中。
38.如权利要求37所述的药物制剂，所述脂质体或微粒的尺寸小于200纳米。
39.如权利要求35所述的药物制剂，所述混合物可以通过注射，口服，肠道，局部的或上述几种联合的方式给药。
40.如权利要求35所述的药物制剂，所述混合物与选自下述的一种或多种化合物向需要的患者联合给药生长因子，血管扩张剂，抗凝剂，和它们的混合物。
全文摘要
本发明公开了与血管形成条件有关的患者的治疗方法，包括给予有效量的聚合形式的甲状腺激素，或者它的拮抗剂，用以促进或抑止患者的血管的形成。同时还公开了聚合形式的甲状腺激素或者它的类似物的组合物。
文档编号A61P9/10GK1878545SQ200480033184
公开日2006年12月13日 申请日期2004年9月15日 优先权日2003年9月15日
发明者莎克尔·A·莫萨, 费思·B·戴维斯, 保罗·J·戴维斯 申请人:奥德威研究院