抗肿瘤小分子干扰rna及其用途的制作方法

专利名称：抗肿瘤小分子干扰rna及其用途的制作方法
技术领域：
本发明涉及高效的抗肿瘤小分子干扰RNA (siRM)的结构及其用途。具体地说涉及凋亡 抑制基因survivin的高效的抗肿瘤小分子干扰RNA (siRNA)的结构及其用途。
背景技术：
肿瘤的治疗是长期困扰医学界的世界性难题，尽管各种的治疗方法不断出现，但目前还 没有找到真正有效的根治方法，因此这也迫使科研工作者不断寻找新的技术和方法，试图从 根本上攻克癌症。RNA干扰技术是近几年兴起的生物技术，用小分子干扰RNA干扰特定基因 的表达是基因治疗的重要组成部分。
凋亡抑制基因survivin是1997年发现的一种重要的肿瘤相关基因，该基因是Ambrosini 等(.NatureMed, 1997， 3 (8): 917-921 )在人类基因组文库中筛选克隆到的，它定位于17q25, 该基因具有两个突出的特点①几乎在所有种类的肿瘤组织中特异性地表达，而正常组织几乎 没有表达；②具有抗肿瘤细胞凋亡、促进有丝分裂、调节细胞周期、参与血管形成和放化疗 耐受多种功能于一体，而引起了国内外学者的广泛关注，成为IAP家族中最令人瞩目的一员。 有研究者(.Lab Invest, 1999， 79 (11): 1327-1333; Am J Pathol, 1998， 152 (1): 43—49 )对 正常增殖细胞中survivin基因的潜在分布进行研究发现包括皮肤表面的角化细胞、肠道的 上皮细胞和正常的骨髓细胞在内，在各种有丝分裂细胞系中均没有检测到survivin基因的表 达；成人体内只有胸腺、生殖腺中有微量表达，但在14-21 wk的胎儿不同部位组织中均可以 明显检测到survivin表达。当这些组织发育成熟后，就很难检测到survivin的表达。这表 明survivin参与了正常胚胎组织的发育过程，具体的机制目前尚不明确。同时也充分证实， 在绝大多数正常成人组织中survivin基因并不表达。因此，针对survivin基因的靶向性治
疗的毒副作用也可能降到最低。
有研究证实(.Ub Invest, 1999, 79 (11): 1327-1333 ; Cancer Res， 1998, 58 (23): 5315-5320 ), survivin基因是肿瘤组织中表达上调最为普遍的基因之一。在大多数肿瘤组织 中，如肺癌、肝癌、白血病、结直肠癌、胰腺癌、前列腺癌、乳腺癌、胃癌和50%以上的高 分化淋巴瘤中survivin基因的表达水平异常升高，且与个体发育和组织分化平衡有关(Cel 1 Death Differ, 2002, 9 (12): 1334—1342; Arch Pathol Lab Med， 2004, 128 (1): 39—43; Acta Neuro pathol (Berl), 2002, 104 ( 1 ): 105—109; J Cancer Res CI in Oncol， 2002, 128
(6): 302-306 )。这些现象显示survivin基因在癌症中可能处于失控的表达状态。
survivin基因主要有以下功能抑制细胞凋亡、参与细胞周期调节、参与血管形成、参 与肿瘤对放化疗的耐受。
体外实验表明，(1) survivin可以通过其唯一的BIR结构域与细胞凋亡效应蛋白酶 caspase-3和caspase-7结合，抑制他们的活性，并抑制由Fas, Bax、抗癌药物诱导的细胞 凋亡(Cancer Res, 1998, 58 (23): 5315-5320 )。 survivin抑制细胞凋亡的另 一作用机制 可能是survivin在细胞核内与Cdk4形成复合物，使p21在Rb蛋白磷酸化过程中释放出来， 释放出来的p21易位到线粒体内，并以N—末端的氨基酸序列与caspase-3前体形成复合物， 使caspase-3前体不能活化，从而抑制由Fas介导的细胞凋亡(Oncogene, 2000， 19 (10): 1346-1353 )。 ( 2 ) BIR结构可以直接同线粒体活化因子Smac/DIABLO相作用间接抑制 Caspases的级联反应，阻断线粒体依赖的凋亡途径(Cel 1, 2000,102 (1): 33-42 )。 ( 3 ) Cdc2 可以使survivin磷酸化后再同微管与纺锤体结合，抑制Caspase-9的活化和Caspase-3对微 管结构蛋白的水解，维持了微管与纺锤体结构的稳定性(Cell, 2000,102 (1): 33-42; Nature, 1998, 396 (6711): 580-584 )。 (4)由线粒体释放出来的凋亡诱导 因子AIF可以直接进入细胞核中，导致染色体浓缩、断裂，其作用不依赖caspase。 survivin 可以抑制AIF的核转位，从而抑制AIF的促凋亡作用(Oncogene, 2004, 23 (1): 39-48)。 (5) survivin可以通过抑制Caspase对Mdm2的剪切在翻译后水平调节Mdm2，使其降解减少，从 而使Mdm2对p53的降解相对增加(Oncogene, 2004,23 (49): 8146-8153)。因此，survivin可 以负向调节P53的表达，也是其抗凋亡的机理之一。
survivin在G2/M期通过细胞周期调控的方式表达并可能抑制有丝分裂期细胞的凋亡。 免疫荧光显示survivin在Y-tubulin周围形成短放射状的"壳"，着色于中心体旁，与Y -tubulin共定位于纺锤体中心(Nat Struct Biol， 2000,7 (7): 602-608)。在体外分别将HeLa 细胞阻断在G1期、S期、G2/M期，检测细胞内源性survivin mRNA的表达，发现在Gl期检 测不到survivin的表达，在S期增加6—7倍，在G2/M期，其表达上调40倍(Nature, 1998, 396 (6711): 580—584)。 Skoufias等(Cell Biol, 2000, 10 (7): 1575-1582)在质粒转染的HeLa 细胞系中发现，survivin参与了有丝分裂，调控微管组织中心及纺锤体的形成，是调控细胞 增殖与死亡之间平衡的重要分子。有丝分裂初期，在微管动力作用下，survivin与纺锤体中 的微管相结合而抑制凋亡，与微管分离可使其抗凋亡作用丧失，并增强caspase-3的活性， 这是有丝分裂时细胞死亡的机制。survivin在癌细胞中的过表达可以克服这些凋亡关卡，使
细胞加快向S期转换，抑制G1期静止，从而促进细胞增殖。研究表明，无survivin表达的 细胞可形成卵裂沟和收缩环，但不能完成正常的细胞质流动过程，因此导致多核细胞的形成。 survivin和INCEN (inner centromere protein在微管组装、卵裂沟的形成、细胞质流动等 协同事件中有重要作用；并可通过与CDK4/p 16(IM4a)和CDK2/cycline E复合体活化的竟 争性作用，导致Rb蛋白磷酸化，以启动细胞有丝分裂(Oncogene, 2000， 19 (29): 3225-3234)。
血管形成过程取决于血管内皮细胞生存和凋亡的平衡。正常情况下，血管内皮细胞中很 难检测到survivin。在血管内皮生长因子(Vascular endothelial growth factor, VEGF)的 刺激下，静止的血管内皮表达survivin的能力约可增强4倍，VEGF的许多抗凋亡活性都是 通过诱导内皮细胞表达survivin来实现的(Am J Pathol， 2001, 158 (5): 1757-1765)。血管 生成素一 l(angiopoietin-l， Ang-l)是胚胎血管形成过程中维持血管稳定性和管腔形成的关 键因子。它没有促进内皮细胞生长，而只促进了血管网的稳定和分枝血管的形成。研究发现， Ang-l可以促进内皮细胞中survivin表达，通过Akt (或蛋白激酶B)途径激活survivin的抗 凋亡活性，从而阻止内皮细胞凋亡，在体内血管形成过程中稳定血管结构(J Biol Chem， 2000,275 (3): 9102-9105)。新血管生成是肿瘤生长和转移的必要因素，因此抑制survivin的 表达可能对防止肿瘤细胞的浸润、迁移起重要作用。己有多项动物实验证明，反义survivin RNA或survivin突变体可以有效抑制实体瘤的血管形成和肿瘤的侵袭增殖。
肿瘤的难治还在于肿瘤的天然耐药以及后期治疗时产生的耐受。肿瘤本身高表达 survivin能保护化疗药和放射线对肿瘤的杀伤相反，不足量的化疗药或放射线也能诱导 survivin的表达，产生对治疗的继发耐受。研究表明，survivin能抑制某些化疗药物、IL-3 ， TNF-a, X射线诱导的Fas, Caspase, Bax等参与的凋亡信号通路(Cancer Res, 1998, 58 (23): 5315-5320; J Cancer Res, 2000， 91 (11): 1204-1209)。但假如其唯一的BIR区发生C84A的 突变，survivin也就丧失对抗化疗药物Taxol诱导的凋亡的抵抗作用。
因此以survivin基因为靶点的抗肿瘤治疗可以同时从以上四个方面提高肿瘤治疗的效 果。正因为如此，survivin基因可以作为肿瘤治疗的新靶点和肿瘤研究中的明星分子。
RNA干扰技术(RNAi)是近几年发展起来的被认为是研究功能基因组最有力工具之一。这 种新兴的生物技术为肿瘤分子水平的基因治疗提供了新的技术和方法。RNA干扰(RM interference, RNAi)是由双链RNA( double stranded RNA , dsRNA) dsRNA)介导的转录后 的基因沉默(post-transcriptional gene silencing, PTGS)现象。通过在多种生物细胞内 导入外源或内源的dsRNA可以使内源性mRNA发生特异性降解，从而引起相应基因转录的阻抑。
RNAi已作为一种简单有效的基因敲除的技术，广泛地应用于功能基因组学研究以及抗病毒、 抗肿瘤治疗的研究中。最早的针对survivin的RNAi研究报导于2003年，Carvalho等用小 分子干扰RNA (small interfering腿,siRNA)转染HeLa细胞，60h后蛋白印迹结果显示治 疗组中己检测不到survivin的表达，细胞增殖明显受抑，部分细胞有丝分裂受到阻滞，出现 凋亡(J Cell Sci,2003, 1 16 (14): 2987-2998)。随着RNAi技术的不断完善，由原来直接导 入外源的siRNA，发展到真核表达载体转录产生siRNA,以及用于RNAi的病毒载体的出现， 大大提高了转染效率和干扰效率。Cheng等用靶向survivin基因的RNAi真核载体转染肝细 胞癌HepG2细胞，发现转染细胞中几乎没有survivin基因的表达，转染细胞自发的凋亡增加， G2/M期细胞比例减少，细胞增殖减慢(World J Gastroenterol 2005,11 (5): 756-759)。目 前针对survivin的RNAi研究进展迅速，体外实验显示了良好的效果，相信不远的将来会有 更为丰富和完善的研究结果出现。
应用RNA干扰技术，以小分子RNA作为靶向药物，有针对性地对survivin基因的转录后 表达进行干扰，从而诱导肿瘤细胞凋亡，抑制肿瘤细胞的有丝分裂，抑制肿瘤转移时的血管 形成和降低肿瘤细胞放化疗的耐受性，多层次，多途径对肿瘤进行抑制，这可能成为了一种 新的肿瘤治疗策略。而且survivin基因选择性地表达在几乎所有种类的肿瘤组织中，而正常 组织几乎不表达，则可使这种基因治疗对正常组织和细胞的毒副作用降到最低，应用RNAi特 异地抑制survivin等肿瘤相关基因的表达有望成为 一种新的肿瘤基因治疗方式。

发明内容
本发明公开了一种高效的针对survivin基因的广谱的小分子干扰RNA (siRNA)抗肿瘤 药物，由具有下述核苷酸序列的正义链和反义链组成 正义链 5' -AGCAUUCGUCCGGUUGCGCX-3', 反义链5'- GCGCAACCGGACGAAUGCUX -3' 其中X代表tt、 TT或UU。 t代表脱氧胸腺嘧啶dT。 X优选代表tt。
本发明的小分子干扰RNA是主要针对survivin基因开放阅读框(0RF )的功能保守区设 计的双链siRNA,药理试验证明本发明的小分子干扰RNA具有广谱的抗肿瘤作用，对肺癌、 肝癌、白血病、胃癌、宫颈癌、口腔上皮癌等在体外均有抑制作用，该序列的正义链与survivin 基因的mRM结合，干扰survivin基因mRNA的翻译，从而诱导肿瘤细胞凋亡、抑制肿瘤细胞
分裂、降低肿瘤的细胞的耐药性、抑制肿瘤血管的生成，达到治疗肿瘤的目的。本发明是一 种全新作用机制的抗肿瘤新型药物，可能为肿瘤的治疗带来了新的希望。
本发明所述的肿瘤疾病包括肺癌、肝癌、白血病、胃癌、宫颈癌、口腔上皮癌、结直肠 癌、胰腺癌、前列腺癌、乳腺癌等，其中优选肺癌、肝癌和白血病。
本发明也可制作药用组合物，其含有至少一种上述双链RM作为活性剂和一种药用载体, 该组合物人体医学上用诊断必治疗用途，为用于诊断或治疗，该组合物可以是溶液，形式如 可注射溶液，乳膏、软膏、片剂、悬液等，可用适当方法施用，例注射、口服、局部、鼻、 直肠给药等，载体可以是任何合适的药用载体，优选施用方法是注射。
在临床使用中，可以将本发明小分子干扰RNA (简称CPUsiRNA3)溶于不含RNA酶的无 菌水中，轻轻混匀，建议CPUsiRNA3为10微克/微升。取适量CPUsiRNA3与小分子干扰RNA 转染试剂RNAi-Mate混合，在室温温育30分钟，以形成CPUsiRNA3-RNAi-Mate复合物。将制 备好的CPUsiRNA3-RNAi-Mate复合物按5-500nmol/kg静脉给药， 一天一次，20天左右一个 疗程。


图l是本发明小分子干扰RNA作用后的癌细胞A549，HepG2和HL60图
图2是MTT法测得本发明小分子干扰RNA对肺癌细胞株A549、肝癌细胞株HepG2和白血
病细胞株HL60的抑制率
图3是MTT法测得顺销对肺癌细胞株A549、肝癌细胞株H印G2和白血病细胞株HL60的
抑制率
图4是PCR检测本发明小分子干扰RNA对肺癌细胞株A549、肝癌细胞株HepG2和白血病 细胞株HL60survivin基因的mRNA水平的抑制
图5是Western blot检测本发明小分子干扰RNA对肺癌细胞株A549、肝癌细胞株HepG2 和白血病细胞株HL60的Survivin蛋白质的抑制
图6是流式细胞仪检测本发明小分子干扰RNA对肺癌细胞株AM9、肝癌细胞株HepG2和 白血病细胞株HL60的诱导细胞凋亡
具体实施例方式
实施例1
siRM的设计与合成
仪器 OligoPilot II DNA/RNA Synthesizer (瑞典Pharmacia公司)，HP-1100型高效 液相色谱仪(美国惠普公司)，DU 2640紫外分光光度计(美国Backman公司)。
材料和试剂合成柱(6. 3mL),分子筛(3A Sigma), 30HL载体(批号256723), RNA Pac PA 100分析柱(美国Dionex公司)，5种核苷酸单体(A，U,C,G, dT)，乙腈，二氯乙酸，四 唑，N 2甲基咪唑，除注明厂家外，其余为瑞典Pharmacia公司产品。
siRNA的设计根据survivin基因开放阅读框(ORF)的序列，设计小分子干扰RNA CPUsiRNA3和1对负对照siRNA,将他们的序列在人类EST数据库中比对，确定没有与他们相 同的其它基因序列。CPUsi隨3正义链5， -AGCA而CGUCCGGUUGCGCdTdT-3，，反义链5， -GCGCAACCGGACGAAUGCUdTdT-3，。负对照siRNA的正义链5， -UUCUCCGAAC GUGUCACGUdTdT-3', 反义链5， -ACGUGACACGU UCGGAGAAdTdT-3， 。 siRNA的设计后送上海吉马公司合成。
siRNA的化学合成用乙腈将5种单体(A,U，C,G， dT )配制成0. 2 mol/L溶液，分别将 5种单体、乙腈、二氯乙酸、四唑安装到合成仪相应位置，其中单体、乙腈、四唑应加入适 当分子筛。合成步骤(1)利用二氯乙酸处理结合于固相载体的核苷酸或寡核苷酸，脱去其 5'羟基官能团上的二甲氧基三苯甲基(DMT )保护基团，露出反应性的5'端；(2)偶联 反应由四唑催化完成，形成3， —5'磷酸酯链；(3)封闭反应将未反应5'羟基在N2甲基 咪唑催化下由乙酸酐来完成。RNA合成仪按照设计好的程序合成出CPUsiRNA3和负对照siRNA 的单链RNA。应用紫外分光光度计检测D 260 nm值，并计算产量。
合成粗产品的HPLC色谱分析色谱柱DNA 2Pac PA 2100 (4mm x 250mm );样品20 OD/m L ,进样的量20uL;流动相A: 25画1/L Tris， 1 mmol/LEDTA , 10%乙腈,pH 8;流 动相B: 25 mmol/L Tris, 1 mmol/L EDTA , 3 mol/L NH4C1, pH 8;洗脱梯度流动相B在 40 min内从10%到70%;流速1 mL/min;检测波长260 nm;柱温50 。C。
合成的单链RNA的正义链和反义链后，退火成双链的CPUsiRNA3和负对照siRNA，之后 进行HPLC纯化的纯度大于97%的双链CPUsiRNA3和负对照siRNA。
实施例2
抗肿瘤药效学试验 材料和方法
肿瘤细胞株A549、 HepG2和HL60由本实验室保存，转染试剂Lipofectamin TM 2000购自
Invitrogen公司，Taq DNA聚合酶，dNTP 、 DNA Marker和蛋白质Marker购于Takara公司。
Survivin蛋白的兔抗人抗体，HRP-羊抗兔IgG抗体、DAB显色试剂盒购于武汉博士德公司。
细胞培养肿瘤细胞株A549、 HepG2和HL60在含10。/。胎牛血清的RPMI1640培养液中，37°C, 5%0)2的培养箱中培养。
MTT法将2.5 xl(T/L细胞接种于96孔板，每孔180ul，每组平行3孔，并设立空白， 阴性药对照.44 h后，弃去上清，每孔加20pL新配制的5 g/L MTT,孵育4 h,弃去上清液， 加150pL DMSO溶解，混勾后用Bio-Rad型号的酶标仪490nm波长测定。
RT-PCR:按Trizol说明书进行培养细胞总RNA抽提RT采用说明书M-MLV逆转录酶体系， PCR扩增采用20juL反应体系。PCR扩增条件为94'C变性5min, 94。C变性30s, 58。C退火30s, 72'C延伸lmin， 25个循环。
Western blot检测干扰效应转染后48h取出六孔板，吸干RPMI-1640培养液，加入500 yL胰酶的溶液，待细胞消化后加入l mL PBS溶液，反复吹打将细胞冲下来，把细胞悬液转 入1.5mLEP管中，1000 r/min离心5min收集细胞沉淀,加入60)jL预冷的细胞裂解液，反 复吹打将细胞充分混匀，冰浴中放置40min, 10000 r/min4。C离心10min，取上清置于-70 。C 保存。蛋白的分离釆用SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE), 12%的分离胶和5%的浓缩胶， 细胞蛋白釆用稀释的5x蛋白质的上样缓冲溶液，经10(TC 4min变性后加样，上样量均为20 pL,恒压120V至溴酸蓝迁移至凝胶底部，取下凝胶，置转膜缓冲液中平衡10min,覆盖经处 理的PVDF膜，釆用半干转移系统，按l亳安/每平方厘米恒流转移3 h将蛋白转移至膜上，将 PVDF膜置于含1(W小牛血清的1 xPBS溶液中4 。C封闭l小时，取出PVDF膜后在适当位置剪开 (根据目的蛋白和对照蛋白大致的电泳位置)，分别加入用含O. 1%小牛血清白蛋白l xPBST溶 液作l : 1000稀释Survivin蛋白的一抗室温振荡孵育10h,用大量的PBST溶液洗涤三次，每 次IO min,再加入用含10。/。小牛血清的1 xPBST溶液作l : 1000稀释的Survivin蛋白的二抗， 室温振荡孵育l h，用大量的PBST洗涤三次，每次IO min。吸干膜上的溶液，加入DAB显色 液，显色5 min。
流式细胞术检测细胞凋亡转染方法同前，转染干扰载体化h后，细胞用胰蛋白酶消化 后linin， PBS洗两遍，加入lmL乙醇固定过夜，去乙醇，PBS洗两遍，加入100yL浓度为 10|ug/mL的P I,混匀后室温避光孵育30 min,在反应管中加400 pL PBS,上机检测细胞凋 亡。
统计学处理统计结果以.x ±s表示，用SPSS13. 0统计学软件进行分析，数据两两比 较釆用配对资料t检验，多组之间比较用ANOVA进行。
结果
细胞形态
本发明的siRNA作用后的肿瘤细胞株A549、 HepG2和HL60形态发生明显变化，表现为 细胞体积变小、形态不规则、细胞皱缩、核固缩，而在各对照组中细胞形态基本正常，贴壁 生长良好，见图1，图1中1是正常的肺癌A549细胞的图；2是加了 200nM负对照siRNA的 肺癌细胞A549的图；3， 4, 5, 6是分别加了 50nM, 100nM, 150nM， 200nM的本发明小分子干 扰RNA (以下简称CPUsiRNA3)的肺癌细胞A549的图；7是正常的肝癌细胞HepG2的图；8 是加了 200nM负对照siRNA的肝癌细胞HepG2图；9,10， 11， 12是分别加了 50nM, 100nM, 150nM 200nM的CPUsiRNA3的肝癌细胞HepG2的图；13是正常的白血病细胞HL60的图；14是加了 200nM负对照siRNA的白血病细胞HL60的图;15， 16,17， 18是分别加了 50nM, 100nM， 150nM, 200nM的CPUsiRNA3的白血病细胞HL60的图。
细胞的增殖
本发明的小分子干扰RNA作用后的肿瘤细胞株A549、 HepG2和HL60的分裂明显减少、细胞 的生长也受到明显抑制，小分子干扰RNA CPUsiRNA3在12. 5nM至400nM对肿瘤细胞株A549 、 HepG2和HL60的抑制作用逐渐增强,CPUsiRNA3作用48小时后，MTT法检测的对肿瘤细胞的抑 制率结果，见图2。用临床上常用的抗肿瘤的顺铂作为CPUsiRM3的药效对照药物，顺铂在5 luM至80pM对肿瘤细胞株A549、 HepG2和HL60的抑制作用逐渐增强,作用48小时后，MTT法检 测的对肿瘤细胞的抑制率结果，见图3。
RT-PCR检测survivin基因的mRNA的转录
见图4,图中第1， 3， 5泳道分别是没加药的肿瘤A549、 HepG2和HL60细胞的RT-PCR检 测结果，第2,4，6泳道是分别是加了有效的本发明的小分干扰RNA siRNAl 100nM "小时的 月中瘤A549、HepG2和HL60细胞的RT-PCR检测结果。虽然它们都能扩增出450 bp survivin基 因的带，但2,4，6泳道的条带明显更淡，这表明survivin基因在mRNA的转录受到了一定 的抑制。
Western blot检测小分干扰RNA对survivin表达的抑制情况 见图5，图中第1, 3, 5泳道分别是没加药的肿瘤A549、H印G2和HL60细胞的Western blot 检测结果，第2， 4， 6泳道是分别是加了本发明小分干扰RNA siRNAl lOOnM 48小时的肿瘤A"9、 HepG2和HL60细胞的Western blot检测结果。虽然它们都能印出15 kD的Survivin蛋白 的带，但2，4，6泳道的条带明显更淡，这表明survivin基因在蛋白质的翻译受到了一定的抑 制。
流式细胞仪检测细胞凋亡的实验结果
图6中，1，3，5分别是没加药的肿瘤A549、 HepG2和HL60细胞的流式细胞仪检测细胞凋亡的 实验结果，2, 4， 6泳道是分别是加了本发明的小分干扰RNA siRNAl 1 OOnM 48小时的肿瘤A549、 HepG2和HL60细胞的流式细胞仪检测细胞凋亡的实验结果。转染的小分干扰RNA CPUs iRNA3 lOOnM 48小时后，用流式细胞仪检测细胞凋亡明显发生了凋亡。
序歹1」表
〈210〉 1 〈211〉 21 〈212〉 RNA 〈213〉人工序列 〈400〉
AGCAUUCGUCCGGUUGCGCtt
〈210〉 2 〈211> 21 〈212〉 RNA 〈213〉人工序列 〈400〉
GCGCAACCGGACGAAUGCUtt 〈210〉 3 〈211> 21 〈212〉 RNA 〈213〉人工序列 〈400 〉
AGCAUUCGUCCGGUUGCGCTT 〈210〉 4 〈211〉 21 〈212〉 RNA 〈213>人工序列
〈400〉
GCGCAACCGGACGAAUGCUTT 〈210〉 5 〈211〉 21 〈212〉隨 〈213〉人工序列 〈400 〉
AGCAimCGUCCGGUUGCGCUU 〈210〉 6 〈211〉 21 〈212〉 RNA 〈213〉人工序列 〈400〉
GCGCAACCGGACGAAUGCUUU
权利要求
1、抗肿瘤小分子干扰RNA为双链小分子干扰RNA，其特征是由具有下述核苷酸序列的正义链和反义链组成正义链 5′-AGCAUUCGUCCGGUUGCGCX-3′，反义链 5′-GCGCAACCGGACGAAUGCUX-3′，其中X代表tt、TT或UU，t代表脱氧胸腺嘧啶。
2、 如权利要求1所述的抗肿瘤小分子干扰RNA,其中X代表t t。
3、 如权利要求1所述的抗肿瘤小分子干扰RNA，其中X代表TT。
4、 如权利要求1所述的抗肿瘤小分子干扰RNA，其中X代表UU。
5、 如权利要求1-4之一所述的抗肿瘤小分子干扰RNA在制备抗肿瘤药物中的用途。
6、 如权利要求5所述的抗肿瘤小分子干扰RNA在制备抗肿瘤药物中的用途，其中肿瘤 是肺癌、肝癌、白血病、胃癌、宫颈癌、口腔上皮癌、结直肠癌、胰腺癌、前列腺癌或乳腺 癌。
7、 如权利要求6所述的抗肿瘤小分子干扰RNA在制备抗肿瘤药物中的用途，其中肿瘤 是肺癌、肝癌、白血病。
8、 如权利要求5所述的抗肿瘤小分子干扰RNA在制备抗肿瘤药物中的用途，其是将小 分子干扰RNA溶于不含RNA酶的无菌水中制成溶液作针剂应用。
全文摘要
本发明涉及抗肿瘤小分子干扰RNA及其用途，其是由具有下述核苷酸序列的正义链和反义链组成正义链5′-AGCAUUCGUCCGGUUGCGCX-3′，反义链5′-GCGCAACCGGACGAAUGCUX-3′，其中X代表tt、TT或UU，t代表脱氧胸腺嘧啶。一种靶向凋亡抑制基因survivin的小分子干扰RNA(siRNA)的结构及其抗肿瘤用途。具有高效广谱的siRNA抗肿瘤作用，对肺癌、肝癌、白血病、胃癌、宫颈癌、口腔上皮癌等在体外都有良好的抑制作用。CPUsiRNA3干扰它的转录后翻译，从而诱导肿瘤细胞凋亡、抑制肿瘤细胞分裂、降低肿瘤的细胞的耐药性、抑制肿瘤血管的生成，达到抑制肿瘤的目的。
文档编号A61K48/00GK101113447SQ20071013740
公开日2008年1月30日 申请日期2007年7月10日 优先权日2007年4月17日
发明者吕美云, 周秀玲, 涛 奚, 琼 姜, 新 张, 陆云华 申请人:宜春学院