获得高活性Cry1Ai蛋白突变体的方法及其突变体的制作方法_2

文档序号:9591626阅读:来源:国知局
Tris27. 23g
[0081]SDS0. 4g
[0082] 超纯水定容至150mL,用盐酸调pH8. 8,4°C保存
[0083] (8)浓缩胶缓冲液
[0084] Tris 6g
[0085]SDS0. 4g
[0086] 超纯水定容至100mL,用盐酸调pH6. 8,4°C保存
[0087] (9) 50XTAE:
[0088]冰乙酸 57. lmL
[0089] 0. 5mol/L EDTA(pH 8. 0) lOOmL
[0090] Tris 242g
[0091] 纯水定容至1000mL,4°C保存
[0092] (10)考马斯亮蓝R250染色法
[0093] 溶液一:50%乙醇、10%乙酸
[0094] 溶液二:5%乙醇、7. 5%乙酸
[0095] 溶液三:0· 25 %R250的95 %乙醇溶液
[0096] 注:50mL溶液二加入200μL溶液三
[0097]1. 7主要仪器设备
[0098] 摇床D250,美国NBS公司产品;
[0099] 恒温培养箱DHP120,上海实验仪器总厂;
[0100]Beckman高速离心机AvantiJ_26xp;
[0101]德国台式Eppenddorf离心机 5415C;
[0102] PCR仪:Thermocycler,Biometra公司
[0103] 核酸电泳仪:DYY-5型,北京六一厂;
[0104]凝胶成像系统UniversalHoodII,BI0-RAD公司;
[0105]蛋白电泳仪:MiniproteinIII,BI0-RAD公司;
[0106] 转膜仪:eBlot快速转膜仪,南京金斯瑞公司
[0107] 高效液相色谱系统:AKTAavant,GE公司
[0108] 荧光信号监测系统:Typhoon扫描仪,GE公司
[0109] 2.实验方法
[0110] 2.lCrylAh蛋白的提取及活化
[0111] (1)挑取单菌落于5mLLB培养基中(加5yL红霉素),30°C230rpm12h;
[0112] (2)按1 %的接菌量转接到1L三角瓶中(每瓶盛有400mL1/2LB液体培养基,并 加入400μL红霉素),30°C,230rpm,培养至90%以上的晶体释放,停止培养;
[0113] (3)将发酵液 4°C8000rpm离心 10min,沉淀用预冷的 1. 0mol/LNaCl(50mL/l升菌 液)洗涤,重复一次;
[0114] (4)4°C8000rpm离心lOmin后,用预冷的无菌水洗涤一次(50mL/l升菌液);
[0115] (5)收集沉淀,悬于50mMNa2C03溶液中并加入胰蛋白酶,37°C,230rpm处理2h,溶 解与活化同时进行;
[0116] (6)4°C14000rpm离心 20min,取上清,加入1/7体积的4.Omol/LNaAc-HAc (pH 4·5),调pH 4·5-5.0 ;
[0117] (7) 4°C静止4h(或冰上沉淀l_4h);
[0118] (8) 4°C14000rpm离心 15min,沉淀用无菌水洗悬浮后,4°C14000rpm离心 15min, 重复一次,最后收集沉淀,并溶于50mMNa2C03中,搅拌至完全溶解。
[0119] (9)SDS-PAGE检测Cry蛋白的提取结果,并BSA标准品进行定量。
[0120] 2. 2生物标记CrylAh蛋白
[0121] 称取lmgBiotinN-hydroxysuccinimideester溶于lmL二甲基亚楓(DMS0)中, 配制成lmg/mL母液于-20°C保存,向待标记蛋白溶液中加入30倍摩尔量的生物素溶液,室 温静置lh,置于脱盐柱中离心除去过量的生物素。Westernblot杂交检测标记效果。
[0122] 2.3Ligandblot鉴定ΑΡΝΙ受体结合区
[0123] (1)蛋白样品先进行SDS-PAGE分析,再转至PVDF膜上;
[0124] (2)PVDF膜在PBS缓冲液中漂洗3次,每次lOmin ;
[0125] (3)卩¥0卩膜在4〇11^?85+2%了¥6611中封闭2〇11^11,再以?85-1'(0.1%了¥6611)漂洗 3次,每次lOmin;
[0126] (4)在4mLPBS-T中加入8μg生物素标记的CrylAh蛋白,PVDF膜室温孵育lh,
[0127] (5)再以PBS-T漂洗 3 次,每次lOmin;
[0128] (6)以1:10000的比例在PBS-T中加入带有荧光标签的链霉亲和素,室温孵育lh,
[0129] (7)以PBS-T漂洗lOmin,再以PBS漂洗 2 次,每次lOmin;
[0130](8) PVDF膜瞭干,以Typhoon扫描仪分析结果。
[0131] (9)竞争结合:在结合时,以1:1000的摩尔比加入合成的多肽。
[0132] 2. 4序列分析软件
[0133]DNAMAN用来分析比较核苷酸或蛋白序列;
[0134]PyMOL软件用来分析预测的Cry蛋白的三维结构。
[0135] 2. 5 反向PCR
[0136] 反向PCR原理示意图如下(图1),根据原基因序列在受体结合区以外分别设计正 向和反向引物,然后将拟插入的连续多点突变序列一分为二,分别加在正向引物和反向引 物的5'端,从基因内部反向扩增,扩增得到的片段含有完整的载体,以及断开的插入序列, 因此用磷酸化酶处理后,可以进行自连,形成闭合完整的质粒。
[0137] (1)反向PCR反应体系如下:
[0138] 模板 :1pL
[0139]
[0140] (2)扩增条件如下:
[0141]
[0142] 2. 6磷酸化处理(BKL试剂盒):
[0143] (1)反应体系:
[0144]
[0145] (2)反应条件:
[0146] 37°C处理lOmin,70°C处理5min ;
[0147] 2. 7连接反应
[0148] 取5 μ L上述反应产物加5 μ L SI,16°C连接3h。
[0149] 2. 8TG1和Rosetta(DE3)感受态细胞制备及转化
[0150] (1)将甘油菌在固体LB培养基上进行活化,37°C培养10小时后,再进行划线培养, 37°C培养12小时后,挑取单菌落于5mL液体LB培养基中,37°C,220rpm震荡培养12小时, 再按1%接菌量转入lOOmL液体LB培养基中扩大培养(500mL三角瓶),37°C,220rpm培养, 培养至〇D6。。约为0. 5。
[0151] (2)将菌液转移至2个无菌预冷的50mL离心管中,冰上放置lOmin,使培养物冷却 到(TC;
[0152] (3)4。(:,4100印111离心1〇11^11;
[0153] (4)倒出培养液,将管倒置lmin,使最后痕量的培养液流尽;
[0154] (5)每 50mL初始培养液用 30mL预冷的 0·lmol/LCaC12-MgC12 (20mMCaC12-80mM MgC12)重悬每份细胞;
[0155](6)4°C,4100rpm离心lOmin ;
[0156] (7)每50mL初始培养物用2mL冰预冷的0·lmol/LCaC12重悬,再加入等体积甘 油,分装200μL/管,-70 °C保存。
[0157] 将200μL感受态细胞与10μL连接产物或2μL质粒混勾,冰浴30min,42°C热击 1. 5min,冰浴3min,加入600μLLB培养基37°C培养lh,涂布含含相应抗生素的LB的平板, 37 °C培养过夜。
[0158] 2. 9阳性克隆的PCR鉴定
[0159] 挑取单克隆于5mLLB液体培养基震荡培养,37°C,220rpm,震荡培养6h,取1yL作 为模版,进行PCR鉴定,PCR鉴定体系和反应条件如下:
[0160] (l)PCR体系:
[0161]
[0162] (2)反应条件:
[0163]
[0164]PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳检测。
[0165] 2. 10序列测定及分析
[0166] 每个截短片段选取TG1中两个阳性克隆送往农科院测序部进行全长测序,DNAMAN 软件分析测序结果正确后,提取TG1中质粒,并转入Rosetta(DE3)感受态细胞中进行表达。
[0167] 2. 11大肠杆菌中蛋白诱导表达
[0168] (1)LB平板(AC抗性)上活化过夜,挑单菌落转接于5mL液体LB培养基(AC抗性) 中,37°C,220rpm培养12h后,将5mL培养液全部转入300mL液体LB培养基(AC抗性)中, 培养约3h,0D6。。达到0· 5,加入IPTG终浓度为0· 5mM,18°C,150rpm,培养过夜12h。
[0169] (2)8000rpm离心lOmin收集菌体,沉淀溶于 30mL20mMTris-HClpH8. 0 的缓 冲液中,进行超声破碎(冰浴),功率65%,时间5min,超3s停5s。超声后lOOOOrpm离心 20min,收集上清,沉淀用少量20mMTris-HClpH8.0重悬。
[0170] (3)SDS-PAGE分析蛋白表达情况:
[0171] (4)制样:上清,20 μ L样品+5 μ L 5 X Loading Buffer
[0172] (5)沉淀,5yL样品+15yL 20mM Tris-HCl pH 8.0+5yL 5XLoading Buffer
[0173] (6)煮沸 10min,12000rpm离心 5min上样 5μ L。
[0174] (7)电泳条件:120V预电泳15min,80V浓缩胶,200V分离胶(冰浴)
[0175] (8)染色:50mLSI微波加热 30s,摇床上 70rpm5min,换 50mLSII+200yL考 马斯亮蓝染液SIII,微微波加热30s,摇床上70rpm30min,换蒸馏水,摇床70rpm。
[0176] 2. 12棉铃虫生物活性测定
[0177] (1)取30g人工饲料置一灭菌培养皿中,加入3. OmL待测样品溶液,用药匙充分搅 拌均匀,室温放置,使饲料多余水分蒸发;
[0178] (2)将全部饲料分装于3个已消毒的24孔细胞培养板中;
[0179] (3)先将幼虫轻轻抖落在一张白纸上,再将白纸倒置,此时幼虫将从白纸上开始拉 丝下滑,用毛笔轻轻挑丝将幼虫接于24孔板中,每孔一头;接完后,在24孔板上盖一层吹塑 纸,再盖盖子,并用橡皮筋固定,严格密封,防止幼虫逃逸;
[0180] (4)放置25°C光照培养箱中培养,光周期为12 :12。第一天时,培养箱中不需要额 外添加水盆,从第二天起,湿度〈30%时,需要额外添加水盆增加湿度。每天观察,检
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