一种转移因子的制备方法及其注射剂的制备方法

文档序号:8327637阅读:1575来源:国知局
一种转移因子的制备方法及其注射剂的制备方法
【技术领域】
[0001] 本发明涉及生物制药领域,具体地指一种转移因子的制备方法及其注射剂的制备 方法。
【背景技术】
[0002] 转移因子Transfer Factor (TF),又称传输因子,由具有细胞性免疫功能的淋巴细 胞产生,通过从冻融致敏的T细胞获得的一种可透析的因子。能加强动物的免疫力,可以将 延迟过敏反应能力从一个个体(包括人和动物)转移到另一个体,它们运送父淋巴细胞的 抗原特异细胞性免疫(迟发性过敏反应)到未暴露或原生的淋巴细胞。转移因子携带有致 敏淋巴细胞的特异性免疫信息,能够将特异性免疫信息递呈给受体淋巴细胞,使受体无活 性的淋巴细胞转变为特异性致敏淋巴细胞,从而激发受体细胞介导的免疫反应。转移因子 具有广泛的免疫学调节活性,一方面可诱导免疫细胞活化,增强机体非特异性免疫能力。另 一方面能够将特异性免疫能力传递到其他动物,激发动物产生特异性免疫。
[0003] 由于其特定的作用,转移因子临床用于治疗某些抗生素难以控制的病毒性或霉菌 性细胞内感染(如带状疱瘆,流行性乙型脑炎,白色念珠菌感染,病毒性心肌炎等);对恶 性肿瘤可作为辅助治疗剂(主要用于肺癌,鼻咽癌,乳腺癌,骨肉瘤等);免疫缺陷病(如湿 瘆,血小板减少,多次感染综合症及慢性皮肤粘膜真菌病有较好的疗效)。目前,已公开的 关于转移因子注射剂的制备工艺中,通常包括以下方法:(1)用绞肉机或匀浆器将猪脾(牛 脾)匀浆,冻融,或超声以破碎细胞;(2)离心;(3)离心液经10000分子量左右的超滤膜超 滤的转移因子;(4)根据转移因子的含量加注射用水配制注射制剂。
[0004] 中国专利申请"一种从牛脾脏中提取转移因子的方法"(专利【申请号】 200810154335. 3)公开生产方法:将冷冻牛脾脏破碎、絮凝、透析、过滤除菌,制成含有转移 因子的原液;"一种猪脾转移因子注射液的制备方法"(专利【申请号】201310136476. 3)公 开猪脾转移因子注射液的制备方法:将检验合格后的猪脾脏进行清洗、匀浆、甲醛灭活、冻 融破碎,经过滤、超滤后获得原液,加入注射用水得到注射液;"一种猪脾转移因子注射液 的生产方法"(专利【申请号】201110126248.9)中使用匀浆、低温超声破碎、离心、超滤工艺 提取转移因子;"一种转移因子溶液及其制备方法"(专利【申请号】201410306339.4)中将 猪脾进行清洗、匀浆、反复冻融、调节PH、过滤、超滤后得到转移因子溶液;"一种转移因子 的制备方法"(专利【申请号】201310640313.9)将新鲜鸡脾进行清洗、匀浆、冻融破碎,经 离心加压抽滤、超滤后获得转移因子溶液;"一种猪脾转移因子制备方法"(专利【申请号】 201310755932. 2)包括组织绞碎、均质破碎、微滤、超滤等步骤,采用高压均质机快速破碎细 胞。
[0005] 上述的工艺方法仅用冻融后离心,一方面不能充分有效的去除各类杂蛋白,这样 使得产品容易引起过敏反应,不能有效去除各类动物源性病毒,使制剂存在病毒污染和异 常毒性不合格的风险;另一方面就是现有的制备方法均使用微滤膜、超滤膜进行过滤,滤膜 负荷大,寿命短,成本高,限制了医学上的进一步使用。灭活过程中采用加入甲醛或进行升 温处理,甲醛为致癌物,残留的游离甲醛注入人体后产生制激性反应;升温则易使转移因子 的活性降低而影响使用效果。注射液中氨基酸、小肽类物质易发生聚合为大分子物质而析 出致使制剂不稳定,也易引起相关的副作用。

【发明内容】

[0006] 本发明的目的就是要解决上述【背景技术】的不足,提供一种转移因子的制备方法及 其注射剂的制备方法,来减少转移因子中的杂蛋白过敏源,有效去除各类动物源性病毒及 延长超滤膜的使用寿命。
[0007] 本发明的技术方案为:一种转移因子的制备方法:
[0008] (1)预处理:将动物脾脏剥离其附着脂肪,用水洗净;
[0009] (2)匀浆:加入动物脾脏重量1. 5~2倍的注射用水混合后,置于胶体磨内反复绞 磨4~6次,制成匀浆,移入-16°C下存放3天以上;
[0010] (3)反复冻融:将匀浆反复冻融3~5次;
[0011] (4)离心:将匀浆化冻后离心,取匀浆上清液;
[0012] (5)乙醇沉淀:在不断搅拌下将匀浆上清液按1 : 2的体积比加入无水乙醇,在 〇~5°C静置12小时以上,离心取上清液减压真空浓缩至原体积的1/5~1/10,回收乙醇;
[0013] (6) -次超滤:调节浓缩液pH值至6.0~7.0,分别经50K分子量和IOk超滤膜超 滤后得转移因子一次溶液;
[0014] (7)病毒灭活:在转移因子一次溶液中加入白蛋白至每毫升溶液中白蛋白质量分 数为1~2%。,经60°C保温10小时后,迅速将温度降至20°C以下;
[0015] (8)二次超滤:经3K~5K分子量的超滤膜超滤后得转移因子溶液。
[0016] 优选的,所述反复冻融步骤中将已凝固的匀浆取出置于33~37°C水浴,不断搅拌 使其快速融化,待匀浆全部融为液态时,再放入低温冷冻,如此反复3~5次。
[0017] 优选的,所述离心步骤中,将匀浆化冻后在4°C、转速3000r/min下离心30分钟,取 匀浆上清液。
[0018] 优选的,所述乙醇沉淀步骤中无水乙醇与匀浆混合物在4°C、转速3000r/min下离 心30分钟。
[0019] 优选的,所述乙醇沉淀步骤中减压真空浓缩的真空度为-0. 03~-0. 08MPa。
[0020] 优选的,所述动物脾脏为猪脾或牛脾。
[0021] 本发明还提供一种转移因子注射剂的制备方法,步骤为:测定所述转移因子溶液 内多肽和核酸的含量,加入注射用水调节至每2ml溶液中含多肽3mg和核糖100 μ g,加入氯 化钠使溶液中氯化钠的浓度为〇. 9g/ml,加入稳定剂吐温-80至溶液中的吐温-80质量浓度 为1~2%。,除菌过滤后无菌分装即得转移因子注射剂。
[0022] 本发明的优点为:
[0023] 1.采用传统工艺中均未使用的乙醇沉淀法去除各类杂蛋白,能有效保证产品的安 全性,减少过敏源,提高安全性;同时经乙醇沉淀去除杂蛋白后可减少后续超滤膜超滤的负 荷,延长超滤膜的使用寿命,降低成本,使其在生物上有进一步的应用。
[0024] 2.采用乙醇沉淀法去除杂蛋白,以及先后通过50KD、10KD,3~5KD超滤膜多级超 滤,既能保证杂蛋白的彻底去除,又能有效地控制高分子量物质,制得产品高分子物质少于 I. 0%,远远低于国家标准规定的少于5. 0%,能更有效地保证产品质量,保证临床安全性。
[0025] 3.制备方法中加入白蛋白保护剂后采用60°C,10小时能有效灭活病毒,再加上后 续的超滤工艺,能充分保证动物源性病毒的灭活,保证制剂产品的安全性。同时白蛋白作为 保护剂,能保证在较高温条件下转移因子的活性不会降低。制得产品活力按T细胞活性测 定法一脱E受体法测定均不低于30 %,远远高于国家标准规定的不低于10 %。
[0026] 4.将牛脾(或猪脾)匀浆液采用低温反复冻融,能使细胞内外的有效物质充分释 放,保证有效成分的充分提取。
[0027] 5.注射剂配料过程中加入吐温-80作稳定剂,能有效得避免制剂在储存过程中有 机物类氨基酸、小肽、核苷酸、嘌呤等聚合为大分子物质析出,影响制剂的澄明度,保证产品 长时间储存过程的稳定,同时降低过敏反应发生率。
【具体实施方式】
[0028] 下面结合具体实施例对本发明作进一步的详细说明。
[0029] 实施例1
[0030] 转移因子的制备方法,包括如下步骤,
[0031] (1)预处理:将猪脾剥离其附着脂肪,用饮用水清洗2次,再用纯化水清洗3次;
[0032] (2)匀浆:加入猪脾重量1. 5倍的注射用水混合后,置于胶体磨内反复绞磨4次, 制成匀浆,移入-16°C下存放3天以上;
[0033] (3)反复冻融:将已凝固的匀浆取出放入33°C的水浴中,不断搅拌使其快速融化, 待匀浆全部融为液态时,再放入低温冷库内冷冻,如此反复3次;
[0034] (4)离心:将匀浆化冻后在4°C、转速3000r/min下离心30分钟,取匀浆上清液;
[0035] (5)乙醇沉淀:在不断搅拌下将匀浆上清液按1 : 2的体积比加入无水乙醇,在 5°C静置12小时以上,4°C、转速3000r/min下离心30分钟,取上清液在-0. 03MPa真空度下 减压真空浓缩至原体积的1/5,回收乙醇;
[0036] (6) -次超滤:调节浓缩液pH值至6. 0,分别经50K分子量和IOk超滤膜超滤后得 转移因子一次溶液;
[0037] (7)病毒灭活:在转移因子一次溶液中加入白蛋白至每毫升溶液中白蛋白质量分 数为1%。,经60°C保温10小时后,迅速将温度降至20°C以下;
[0038] (8)二次超滤:经3K分子量的超滤膜超滤后得转移因子溶液;
[0039] 将所得转移因子溶液制备成转移因子注射液。
[0040] 制备注射剂:测定转移因子溶液中多肽和核酸的含量,加入注射用水调节至每 2ml溶液中含多肽3mg和核糖100 μ g,加入氯化钠使溶液中氯化钠的浓度为0. 9g/ml,加入 稳定剂吐温-80至溶液中的吐温-80质量浓度为1%。,除菌过滤后无菌分装即得转移因子注 射剂。
[0041] 实施例2
[0042] 转移因子的制
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