t;0. 05 ;
[0024] 图5是香茹菌多糖对DSS诱导的结肠炎慢性期结直肠长度、大体及组织病变的影 响的示意图；
[0025] 图5A是香茹菌多糖对DSS诱导的结肠炎慢性期结直肠长度影响的示意图；
[00%] 图5B是香茹菌多糖对DSS诱导的结肠炎慢性期结直肠大体病变影响的示意图；
[0027] 图5C是香茹菌多糖对DSS诱导的结肠炎慢性期结直肠组织显微镜下病变影响的 不意图；
[0028] 图6是香茹菌多糖对DSS诱导的结肠炎慢性期结直肠长度的影响，#，与空白对照 组相比，P<〇. 05 ;*，与DSS模型对照组相比，P<0. 05 ;
[0029] 图7是香茹菌多糖对DSS诱导的结肠炎慢性期结直肠大体病变的影响，#，与空白 对照组相比，P<〇. 05 ;*，与DSS模型对照组相比，P<0. 05 ;
[0030] 图8是香茹菌多糖对DSS诱导的结肠炎慢性期结直肠组织病变的影响，#，与空白 对照组相比，P<〇. 05 ;*，与DSS模型对照组相比，P<0. 05 ;
[0031] 图9是香茹菌多糖对TNBS诱导的克罗恩病血便影响的示意图； 阳03引图10是香茹菌多糖对TNBS诱导的克罗恩病模型小鼠体重的影响，*，与TNBS模型 组和阳性对照药SASP组相比，P<0. 05 ;
[0033] 图11是香茹菌多糖对TNBS诱导的克罗恩病结直肠长度影响的示意图；
[0034] 图12是香茹菌多糖对TNBS诱导的克罗恩病结直肠长度的影响，#，与未造模的 50%乙醇组相比，P<0. 05, *，与TNBS模型组和阳性对照药SASP组相比，P<0. 05 ;
[0035] 图13是香茹菌多糖对TNBS诱导的克罗恩病结直肠大体病变的影响；W及
[0036] 图14是香茹菌多糖对TNBS诱导的克罗恩病结直肠组织病变的影响。
【具体实施方式】
[0037] 下面将结合本发明实施例中的附图，对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完 整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于 本发明中的实施例，本领域普通技术人员所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的 范围。
[0038] 实施例1香茹菌多糖对5% DSS诱导的慢性溃瘍性结肠炎急性期的治疗作用
[0039] 实验材料；
[0040] SPF 级 C57 小鼠 18 ~22g ; 阳OW 硫酸葡聚糖值城购自AMRESCO公司；
[0042] 香茹菌多糖购自开封制药（集团）有限公司，为灰黄色粉末，由开封制药（集团） 有限公司提供，批号：20130914,总糖含量为64. 3%，多糖含量为60. 0%，符合中国药典 2010年版二部。 柳43] 实验方法：
[0044] 1.实验鼠在标准化动物房环境中适应7天，给予标准动物饲料，饮用高压灭菌水， 并及时更换垫料（每周2-3次）。
[0045] 2.配置5% DSS溶液：使用生理盐水按照重量体积比配制5% DSS溶液，配制好的 DSS溶液在4 °C冰箱中存放。
[0046] 3.实验开始后，按每只小鼠每天的饮水量6ml计算，每次在小鼠水瓶中倒入每日 饮水量的DSS溶液给予小鼠自由饮用（空白对照组小鼠饮用正常蒸馈水），次日补充DSS溶 液至日饮水量。DSS溶液共给予7天。
[0047] 4.末次给予DSS24小时后，对小鼠进行分组灌胃给药，分为3组谊白对照组， 模型组和香茹菌多糖组，每组10只。空白对照组小鼠和模型组小鼠每天给予生理盐水 (NS)O. ImL/只/天，香茹菌多糖组小鼠给予香茹菌多糖（20mg/kg)，给药周期7天。
[0048] 5.开始造模同时记录小鼠的每日饮食量，并称量体重，观察小鼠一般生活状态及 有无血便。
[0049] 6.给药7天后对每只小鼠摘眼球取血，待测血清中各炎症因子的变化。取小鼠的 直结肠并测量长度，眼肠系膜方向降结肠纵向剪开，清洗粪便，固定于10%中性福尔马林 中。
[0050] 7.固定后流水冲洗，依次进行脱水、石蜡包埋、切片、肥染色，显微镜下观察病理 切片并进行评分。评分标准如下：
[0051]
[0052] 通过5%硫酸葡聚糖钢值S巧诱导急性期结肠炎小鼠模型，观察小鼠的一般状态、 排便情况等。结果表明，空白对照组小鼠十分活跃，皮毛光滑；模型对照组小鼠精神萎靡，懒 动，皮毛粗糖无光泽，而香茹菌多糖组小鼠一般状态良好，较为活跃，皮毛光滑，毛色发亮， 食欲好转。在给予DSS后的第3天发现，模型对照组小鼠有软便情况出现，第4天开始出现 腹泻，且可见肉眼血便。香茹菌多糖组小鼠脈血便和粘液便消失，大便成型。给药7天后剪 开剖取结直肠并测量结直肠长度，可见香茹多糖组结直肠长度明显长于对模型对照组（参 考图1A，图2)将结直肠沿肠系膜纵行剖开，肉眼观察各组小鼠肠道大体形态改变。DSS急 性结肠炎动物模型中，W结肠末端病变为主，可设及全结肠，表现为小鼠病变结肠连续性水 月中，肠道透壁性坏死。模型组小鼠粘膜充血、水肿、糜烂和溃瘍形成，溃瘍面大，界限清楚，炎 症明显，部分肠壁增厚，部分小鼠结肠与周围组织粘连（参考图1B、图3)。香茹菌多糖组小 鼠结肠炎症病变明显轻于模型组，轻度炎症充血、水肿，未见明显糜烂或溃瘍（参考图1B、 图4)，且组间差异具有显著性（P<0. 05)。取病变结肠部位，经10%中性福尔马林固定、脱 水、石蜡包埋、组织切片、肥染色，观察组织形态学变化，并进行评分。显微镜下观察小鼠结 肠粘膜组织，正常组小鼠结肠组织结构规则，腺体排列整齐，少量炎性细胞浸润。模型组小 鼠结肠粘膜遭严重破坏，部分有缺损，结肠组织内充血、水肿，粘膜上皮可见有大量中性粒 细胞、淋己细胞及浆细胞浸润，W中性粒细胞浸润为主；粘膜内腺体排列素乱、变形。香茹菌 多糖组小鼠病变减轻，粘膜完整，溃瘍均见愈合，溃瘍灶表面由新生的上皮细胞覆盖，炎性 细胞浸润较模型组明显减少（参考图1C)，评分值明显低于模型对照组，差异具有统计学意 义（P<0. 05,参考图4)。
[0053] W结直肠粘膜的组织评分巧视为治愈计算，香茹菌多糖对5% DSS诱导的慢性溃 瘍性结肠炎急性期的治疗作用中，治愈率为43. 8 %。
[0054] 实施例2香茹菌多糖对1 % DSS诱导的慢性溃瘍性结肠炎慢性期的治疗作用 阳〇5引 实验材料；
[0056] SPF 级 C57 小鼠 18 ~22g ;
[0057] 硫酸葡聚糖值城购自AMRESCO公司；
[005引香茹菌多糖购自开封制药（集团）有限公司，为灰黄色粉末，由开封制药（集团） 有限公司提供，批号：20130914,总糖含量为64. 3%，多糖含量为60. 0%，符合中国药典 2010年版二部。
[0059] 实验方法：
[0060] 1.实验鼠在标准化动物房环境中适应7天，给予标准动物饲料，饮用高压灭菌水， 并及时更换垫料（每周2-3次）。
[0061] 2.配置1 % DSS溶液：使用生理盐水按照重量体积比配制1 % DSS溶液，配制好的 DSS溶液在4 °C冰箱中存放。
[00创 3.实验开始后，按每只小鼠每天的饮水量6ml计算，每次在小鼠水瓶中倒入每日 饮水量的DSS溶液给予小鼠自由饮用（空白组小鼠正常饮用蒸馈水），次日补充DSS溶液至 日饮水量。DSS溶液共给予20天。 阳06引 4.末次给予DSS24小时后，对小鼠进行分组灌胃给药，分为3组谊白对照组、模 型对照组和香茹菌多糖组，每组10只小鼠。空白对照组小鼠给予生理盐水（N巧0. 1血/只 /天，香茹菌多糖组小鼠给予3mg/mL香茹菌多糖0.1 mL/只/天，给药周期20天。
[0064] 5.开始造模同时应记录小鼠的每日饮食量，并称量体重，观察小鼠一般生活状态 及有无血便。 阳0化]6.给药20天后对每只小鼠摘眼球取血，检测血清中各炎症因子的变化。取小鼠 的直结肠并测量长度，眼肠系膜方向降结肠纵向剪开，清洗粪便，固定于10%中性福尔马林 中。
[0066] 7.固定后流水冲洗，依次进行脱水、石蜡包埋、切片、肥染色，显微镜下观察病理 切片并进行评分。评分标准如下：
[0068] 通过1%硫酸葡聚糖钢值S巧诱