转染sv40lt基因构建18-三体综合征细胞模型及其细胞库的制作方法
【专利摘要】本发明涉及用于医学研究领域的SV40LT基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库的构建，其主要特征是按常规以T4DNA连接酶、BamHI、pcDNA3.1(-)DNA及SV40LTag DNA构建SV40LTag-pcDNA3.1(-)重组子、以感受态大肠杆菌纯化重组子、以脂质体转染法将其导入经胶原酶II消化的离体传代或呈对数生长的18-三体综合征组织细胞，使重组子与细胞的DNA整合，并扩大培养经G418筛选含阳性重组子的细胞克隆，筛选细胞形态、生长曲线、染色体核型、软琼脂集落生长、裸鼠致瘤试验、转染细胞DNA中SV40大T基因检测、mRNA表达产物测定及DNA序列测定结果符合永生化细胞特性并与原代细胞相同或相近者作为SV40LT转染18-三体综合征体外研究细胞模型冻存于液氮中，为在体外从细胞水平长期研究18-三体综合征的发病机制奠定基础。
【专利说明】 转染3^40[了基因构建18-三体综合征细胞模型及其细胞库
【技术领域】
[0001]本发明涉及猴肾病毒40大I抗原基因(^4011基因)转染(介导)18-三体综合征细胞模型及其细胞库的构建，主要用于生殖健康研究领域，为18-三体综合征的研究提供细胞模型并保存其科研资源。
【背景技术】
[0002]18-三体综合征属于重大出生缺陷之一，亦名爱德华氏综合征，即患者多了一条18号染色体，该综合征主要症状表现为患者头有后凸的枕部、眼裂狭小、耳朵畸形、耳位低下、小颌、胸骨短小等。由于患儿存在严重的智力低下伴多发畸形，50%在出生后2个月内死亡，可活至1年的不到10%，极个别可活到15岁。因缺乏有效的治疗手段，一旦患儿出生将会给家庭和社会带来极大的精神和经济负担，已严重影响我国的人口质量，已成为社会发展的沉重负担和可持续发展的严重障碍。
[0003]近年来，国内外将18-三体综合征列为重大出生缺陷之一，作为重点干预对象，并建立了相应的产前筛查和产前诊断方法。在《国民经济和社会发展的第十一个五年规划纲要》中强调，要加大18-三体综合征等出生缺陷的干预力度，以改善出生人口素质；在《国家中长期科学和技术发展规划纲要(2006-2020年〉》中将18-三体综合征等出生缺陷的研究列为优先主题。
[0004]目前对18-三体综合征等出生缺陷的研究主要是针对遗传、生物、物理、化学因素与发病(率)的关系以及其早期筛查和诊断方面，如国外有大量的文献报道，18-三体等出生缺陷的发生与地区性、受孕时间、有害物接触史等环境因素呈显著相关；有国外文献报道，近亲婚配时所存在的两个相同隐性基因与生育18-三体综合征等出生缺陷患儿有关；
等报道孕妇的体重、吸烟习惯、孕产次与18-三体综合征筛查指标有关；另有国内学者报道孕妇吸烟、微量元素、心理因素、饮食、10--感染等与18-三体综合征等出生缺陷相关。
[0005]但是，由于没有可在体外长期培养的、可用于18-三体综合征发病机制研究的永生细胞模型及其细胞库，就难以从细胞水平在体外研究18-三体综合征细胞受物理、化学、生物、遗传等影响的基因突变、基因表达、功能改变、生理特性、生物传导等机制，从而严重限制了 18-三体综合征的进一步研究。
[0006]国外文献报道，猴肾病毒40 (^40)可以使某些人类细胞发生永生化。01.1(11118从和311111%！！⑶等研究表明，37401抗原基因的导入能加快转化细胞的生长速率，永生化细胞在体外多次传代后，仍具有相对稳定的增殖特性和功能状态，同时也能保留其原始细胞的许多分化表型，可以用于转基因动物模型及人类和动物某些种类的细胞模型的建立，据此可以借助于研究转基因永生化细胞及动物模型而在体外研究原始细胞的特性，从而研究其发病机制。
[0007]根据文献报道，用猿猴病毒奶仙)大I'抗原基因转化来建立血管平滑肌细胞株，构建细胞模型以研究肝素对血管平滑肌的抑制作用机制。811等利用经^40转化的角化上皮细胞株，构建细胞模型来分析上皮细胞内蛋白质合成的调控作用。11(11161等用^40转化的角化上皮细胞株，作为细胞模型研究层粘连蛋白5介导的细胞粘附作用。161*61'等用经^40转化的前列腺上皮细胞株作为细胞模型来研究前列腺上皮细胞的生理功能和分泌功能。办10118611等用经八(112-^40转化肾小管上皮细胞模型来研究近曲小管的损伤和疾病。11011的011等用^40转化建立骨髓基质细胞株作为细胞模型以研究在一定培养条件下，细胞具有向脂肪细胞和成骨细胞的双向分化的潜能，进一步研究骨质疏松的机制。
[0008]因研究工作的需要，几乎每种疾病都建立了各自的细胞模型。如糖尿病细胞模型、癌细胞细胞模型、转基因细胞模型、绝经期综合症细胞模型、子宫内膜细胞模型、癫痫细胞模型、电子细胞模型、酒精性痴呆细胞模型、脑水肿细胞模型。等等。
[0009]但是，至今尚未见有关构建可用于在体外从细胞水平研究18-三体综合征发病机制的永生细胞模型及其细胞库的文献报道，也无法开展相关的研究项目。
【发明内容】
[0010]为了解决至今尚未见有关构建可用于在体外从细胞水平研究18-三体综合征发病机制的永生细胞模型及其细胞库的问题，本发明人提出了本发明。
[0011]本发明的目的是要提供以^40口基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库的构建方法，另一目的是为在体外从细胞水平研究18-三体综合征的发病机制提供37401丁基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库。
[0012]本发明的目的是这样实现的:以了40嫩连接酶连接同时经8孤肌酶切的1 (-)0嫩和扩增、琼脂糖凝胶电泳分离的^4011叫0嫩，构建
1 (-)重组质粒，转化0册3大肠杆菌感受态细胞以扩增、纯化并挑取耐氨苄青霉素的菌落抽提质粒，以脂质体转染法导入经胶原酶II消化的离体传代18-三体综合征悬液组织细胞或在含20%胎牛血清、5?10:^01 / [胰岛素的培养液中处于将进入或刚进入对数生长期、梭形细胞占90%以上、汇合率达55%?65%的贴壁生长18-三体综合征细胞，使重组子与细胞的0嫩整合，以6418筛选含阳性重组子的细胞，作传代、扩大培养，筛选细胞形态、细胞生长曲线、染色体核型、软琼脂集落生长试验、裸鼠致瘤试验、转染细胞0嫩中^40大I基因检测、1^嫩表达产物测定及0嫩序列测定结果符合永生化细胞特性并与原代细胞相同或相近者作为细胞模型冻存于液氮中，以此构建^4011基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库。
[0013]本发明以？⑶扩增、琼脂糖凝胶电泳提纯的^40大I'抗原基因经基因载体1)00^3.1和脂质体转染法导入18-三体综合征细胞而构建其细胞模型，其组织细胞用0.01%胶原酶II消化而不用常规的胰蛋白酶消化，以仅使引起细胞粘连的胶原被消化或使细胞悬浮，减少了细胞壁的蛋白质被消化而伤及细胞，使细胞培养的成功率由一般的约85%提高到95%以上；选用了含20此/ [胎牛血清、5?10咖01 / [胰岛素的特定培养基，使细胞不会生长过快而影响3740大I抗原基因的整合，也不会因缺少营养或细胞生长刺激因子而使细胞在未达到要求的汇合率、未进入对数生长期前就过早死亡，或对数生长期缩短；制备的细胞系在-1961液氮中冻存1个月后复苏培养，均能生长出贴壁细胞；在作细胞系染色体鉴定时，秋水仙素的用量及作用时间是常规的5?10倍，使染色体分裂相增力口，足以计数和分析；由此建成的18-三体综合征细胞模型及其细胞库，为从细胞水平在体外研究18-三体综合征的发病机制奠定基础。
【专利附图】
【附图说明】
[0014]图1是本发明制备的18三体综合症细胞模型(贴壁生长)图。
[0015]如图1，细胞传代至第55代、培养至第7天时，呈圆形、梭形、铺满瓶底，其细胞生长汇合率达95%以上，此后随着传代次数的增加，细胞生长变慢、变稀疏。
【具体实施方式】
[0016]1、^40大I抗原0嫩的提取:①37400嫩酶切:从市售购买含有大I抗原基因的3乂40冰冻干粉或^40质粒，溶解于适量的40或12缓冲液中，加2此10\酶切缓冲液和18111 40，加限制性内切酶8肅！1 1(1-5。/呢0嫩)，371温育1卜，751加热比时!!，灭活酶，加入511[电泳加样缓冲液(也可通过加入0.5001 / I ￡01^)终止反应以备电泳。②^400嫩电泳:取电泳级琼脂糖以电泳缓冲液配成10%琼脂糖凝胶，倒入已封好的凝胶灌制平台上，插上样品梳，待胶凝固后从制胶平台上除去封带，拔出梳子，放入加有足够电泳缓冲液的电泳槽中，缓冲液高出凝胶表面约1臟，用适量的10乂加样缓冲液制备0嫩样品，然后用移液器将样品加入样品孔中，并同时做合适的0嫩分子量标准对照物，接通电极，使0嫩向阳极移动，在1-1(^ /挪凝胶的电压下电泳至足够分离0嫩片段的距离时，关闭电源。③从琼脂糖中分离约2600恥^40大I抗原0嫩:在300-360=111长波紫外光源下(使用长波紫外光源以防止0嫩损伤)将含目标0嫩片段的凝胶条带切下装入透析袋中，向透析袋内加入201电泳缓冲液，使之浸没凝胶，并排空汽泡，将透析袋水平放入电泳槽(长度方向与电泳平行)，加入适量缓冲液将透析袋浸没(约6-7皿)，接通电源，150伏电洗，在紫外灯下观察待0嫩全部移出凝胶，改变电场方向继续通电1分钟，从透析袋中吸出缓冲液于1-5“
管中，加入1.5倍体积正丁醇,混勻抽提去￡8，在台式离心机上最高速2分钟，吸去上层正丁醇溶液，如此重复二次，自下层言0嫩的溶液中加入等体积酚氯仿(2个)抽提2次，上清转入另一管中加入1 / 10倍体积31版1八。、2倍体积预冷无水乙醇，于
201过夜，120008，41下离心10分钟，得0嫩沉淀，弃上清，加入70%乙醇洗涤2次后弃干乙醇，加入509 1 12溶解0嫩。此外，还可用低熔点琼脂糖凝胶法、0嫩滤膜插片法等将目的0嫩片段从凝胶中分离、纯化出来。
[0017]2、^40大I'抗原0嫩与嫩3.1基因载体的连接:取9 ^ 1上述0嫩成份(0.1-5^ 12 X连接缓冲液、110臟0171八1？、140嫩连接酶(20?500粘性末端单位)或大肠杆菌0嫩连接酶、嫩3.1空载体混合，151温育2处，构建成37401 / 嫩3.1
重组子。
[0018]3、87401 /1重组子的扩增、分离与鉴定:①大肠杆菌感受态的制备:其基本方法是用冰预冷的或多种2价阳离子等处理细菌，使之进入感受态得以转化，用0^012制备新鲜或冷冻的大肠杆菌感受态细胞，常用于成批制备感受态细菌，本法适用于大多数大肠杆菌菌株，操作过程简述如下:从371培养16?20卜的新鲜平板中挑取一个单菌落(如大肠杆菌01152)，或101新鲜的16?20卜过夜培养物，转到一个含有100011^8培养基的或50001烧瓶中，于371剧烈振摇培养约2?3卜(旋转摇床200?3001~ / 111111)，每隔20?300111测量00600值?0.4，在无菌条件下将细菌转移到一个，用冰预冷的5001聚丙烯离心管中，在冰上放置10?20111111，于41用301^2111(^2转头(或与其离心管相配的转头)以40001 / 0111离心10-11，以回收细胞，倒数培养液，将管倒置加化以使最后残留的痕量培养液流尽，以1001用冰预冷的0.1111103012重悬每份沉淀，放于冰上，于41用301^41(^3转头(或与其相应的转头)以40001 / 111111离心10-11，以回收细胞，倒出培养液，将管倒置1111111以使最后残留的痕量培养液流尽，每501111初始培养物用21111冰预冷的0.1I 03012重悬每份沉定，此时，可以迅速将细胞分装成小份，液氮中冰冻，-701贮存备用，用冷却的无菌吸头从每种感受态细胞悬液中各取2009 1转移到无菌的微量离心管中，在每管中加0嫩或连接反应混合物(体积彡10 9 1，0嫩彡50=8)，轻轻旋转以混匀内容物，在冰中放置30111111，将离心管放到预加温到401的循环水浴中的试管架上，放置908?2111111，不要摇动试管，快速将管转移到冰浴中，使细胞冷却1?2111111，每离心管加800^ 130(:培养基，用水浴将培养基加温到371，然后将管转移到371摇床上，温育45111111使细菌复苏，并且表达质粒编码的抗生素抗性标记基因，将适当体积(每个洲臟平板可达2009 1)已转化的感受态细胞转移到含20011111101 / 0^304和相应抗生素的308培养基上，将平板置于室温至液体被吸收，倒置平皿，于371培养，12?16卜后可出现菌落。②重组子的筛选、扩增与提取:用无菌牙签或灭菌接种针挑选单个菌落接种于5此无菌的⑶培养基或丰富培养基(如超级肉汤或18超级肉汤培养基)中，培养过夜后，再加入到500此含18培养基(含有适当抗生素)的21烧瓶中，再于371培养至饱和状态(00.^ 4，为提高产量，应采用表面积较大及带折流板的烧瓶以尽量增大通气度，振摇速度应大于4001~ / 111111)，于4X^60008离心10111111,用4此6X1溶液重悬沉淀，并转移到一个容积彡201111的高速离心管中(细菌沉淀可以在-201或/ 111[溶菌酶的以2溶液，重悬沉淀，于室温放置10111111，加入10此新配版10? / 808溶液，并且轻轻混匀直至液体变得均一、清亮而粘稠，于冰上放置10-！！，加入7.5.111乙酸溶液，用吸管轻轻搅拌直至粘稠度下降并形成大的沉淀，于冰上放置10-11，于41，200008离心10-11，将上清轻轻倒入至另一个干净的离心管中，如果有可见的飘浮物可用数层纱布过滤，加入0.6倍体积的异丙醇，颠倒混匀，室温放置5?100111，于室温，15008离心川砧!!，加入2齓70%乙醇轻轻洗涤沉淀，然后短暂快速离心，吸去乙醇，并真空干燥(沉淀可在41长期保存③重组子的鉴定:上述从感受态大肠杆菌中提取的0嫩(含重组子^401 / 1)00^3.1)，同上法用限制性内切酶8肅！1I进行酶切，108 / I琼脂糖凝胶电泳鉴定，获得大小约2600^及5600^的2条带，前者符合中37401片段的大小。
[0019]4、^401 /1重组子转染18-三体综合征组织细胞及其阳性克隆的筛选与扩增:①18-三体综合征组织细胞的收集与培养:以无菌操作提取在作其他实验或其他检查后多余、废弃的18-三体综合征患儿羊水脱落细胞，以组织细胞终浓度约为1X10^ /此备用，取上述呈单个分散的组织细胞或经处理后成为单个分散的细胞接种于含5?101111101 / I胰岛素、20%胎牛血清的即111640液中或接种于含20%胎牛血清、5?101111101 / [胰岛素的低糖0121细胞培养基中，置于371，体积分数5% (:02培养箱内，细胞贴壁培养约3?4天、细胞形态为梭形、小园形细胞不到10%、贴壁细胞的汇合率达75%?85%、处于刚进入对数生长期时，即考虑收集培养细胞，先吸干净培养瓶中的培养液，加入
1-2010.01%的胶原酶II液(以消化液能覆盖整个瓶底为准)，静置2-10-11 (显微镜下动态监测)，吸去胶原酶II液，加入低糖0121或即111640培养液，用吸管吸取瓶内培养液，反复吹打瓶壁细胞，形成细胞悬液，转入离心管离心沉淀，去上清液，细胞沉淀用上述培养液清洗2次后，制成悬液，用作重组子导入。②37401丨1)00^3.1的导入:方法1:在上法分离所得细胞中，选用脂质体转染法，将上述2 X 105个细胞接种于35111111培养皿中，在371 002培养箱培养24?36匕使细胞生成单层、细胞形态为梭形、尚未见或仅见少于10%小园形细胞、贴壁细胞的汇合率达55%?65%、处于将进入或刚进入对数生长期时，即考虑转染重组子^401 / 嫩3.1，在1.501微量离心管中制备下列的溶液:即管八，将^40丁 /1)00^3.1溶于100 4 1无血清培养液中；而管8，将20 ^ 1 “即作⑶肅丨加溶于80 ^ 1无血清培养液中，将管八和管8混匀，室温下置45-1吸去细胞培养液后，用无血清培养液洗涤细胞2次，在[11)0:^6(31:211111116-37401 / ￠101)^3.1混合物中加入11111无血清培养液，轻轻混勻，再滴加至细胞培养皿内，然后加入11111无血清培养液，在(?培养箱培养101！，吸出转染液，加401完全培养液继续培养16匕弃去培养液，更换浓度为400呢。171的6418培养液继续培养，8?10天后选择单个细胞集落进行亚克隆，扩大培养后再加大6418浓度到800呢。^1,将能在高浓度的6418环境中稳定生长的克隆进行传代扩增，另外18-三体综合征细胞与^40或￡8病毒共同培养后，感染了病毒0嫩并发生整合的18-三体综合征细胞进行传代扩增。方法2:吸取1丨10-1 / 40细胞悬液，配制成终浓度为1乂105 / 111[细胞悬液，接种于培养瓶内，选择低糖腫刚或即111640培养基，其中含201^/1胎牛血清、10鹽01 / [胰岛素，培养48卜后，使细胞生成单层、细胞形态为梭形、尚未见或仅见少于10%小园形细胞、贴壁细胞汇合率达55%?65%、处于将进入或刚进入对数生长期时，采用脂质体转染的方法，将重组子37401 / 1)00^3.1转染至18-三体综合征细胞内，或将3740直接感染至18-三体综合征细胞内，用含700呢/1^418的培养液筛选1流，将6418浓度改为300呢/匕至出现阳性克隆，将其转移至新培养瓶进行扩大、传代培养；方法3:将上述的细胞悬液以低糖0121或即111640培养液配成5 X 1071终浓度的细胞悬液接种于24孔培养板，待细胞长至90%左右融合时用于转染，其方法是将0.2^ 8含量的重组子^401 / 嫩3.1，用腫刚或尺?II1640调整体积为50 ^ 1，室温放置5-11 ；脂质体6 ^ 1，用0腿1调整体积为50 ^ 1，室温放置5111111，两种试剂轻轻混匀，室温放置20111111，同时将24孔板内的细胞用0121洗3次后，再在每孔加培养液100 9 1，加脂质体-^401 / 嫩3.1混合液，轻轻在细胞表面铺均匀，于371 002培养箱放置6匕随后用0.018 / I胶原酶将细胞消化，转入6孔板内，加入完全培养基，次日加6418抗生素使终浓度为500呢/匕直到有单克隆细胞长出。约10(1后有单克隆细胞集落长出，挑出置于24孔板内继续培养，以300呢/ I的6418维持并稳定传代扩增培养。以此构建18-三体综合征细胞模型。
[0020]5、18-三体综合征细胞模型的传代、扩增:收集上述经脂质体转染法导入3740大X抗原基因的阳性单克隆细胞集落，以低糖0腿1或即111640培养基配成约1 X 105 /此的细胞悬液，接种于数瓶20?50挪2培养瓶中，加入5此含20此/ [胎牛血清、10咖01 / I胰岛素的低糖0121或即111640培养基，至细胞贴壁生长、汇合率达80?85%、处于对数生长期的前期时收集细胞，再按上述步骤传代培养，如此反复传代接种、培养，记录代数并观察细胞生长特点。如图1，细胞传代至第55代、培养至第7天时，呈对数生长、圆形、梭形、铺满瓶底，其细胞生长汇合率达95%以上，此后随着传代次数的增加，细胞生长变慢、变稀疏。其中对数生长是指细胞生长速度快，细胞数量的增加与培养时间呈倍增关系，通常按常规按种细胞进行培养时，培养1?2天便可在显微镜下找到生长的单个细胞；4?5天时可见细胞集落，贴壁生长细胞铺盖培养瓶底的1 / 3，培养7?13天时可见贴壁生长细胞铺盖培养瓶底的2 / 3以上，甚至细胞重叠、几乎不留空隙(汇合率达95?100% ),细胞光亮，无颗粒、无粗糙感等老化现象，也可据细胞计数与培养时间的关系来判断；死亡的细胞少，每周因死亡而漂浮的细胞少于10% [通过台盼蓝染色法鉴别死细胞和活细胞，因为正常的活细胞，胞膜结构完整，能够排斥，使台盼蓝不能够进入胞内；而丧失活性的细胞，胞膜的通透性增加，可被台盼蓝染成蓝色，可判断为细胞已经死亡，方法是每周吸取一定量的细胞培养悬液，与台盼蓝染色剂混合后置室温5?10分钟，然后制成细胞薄片，在显微镜下计数1000个细胞总数，计算着色的死细胞和不着色的活细胞的百分比〕。
[0021]6、18-三体综合征细胞模型生物学特性的鉴定:使用^40建立细胞模型(细胞系)后，鉴定的关键问题有:一是要求该细胞具有持续的增殖能力，即I抗原在细胞系中稳定表达；二是要求其形态、基本生理功能等表型保持不变。①观察细胞形态:在倒置光学显微镜下每日观察细胞是否呈典型的上皮细胞样贴壁生长，是否呈梭形、或小园形生长；②观察细胞生长曲线:取生长较好的转染细胞，采用0.25胰蛋白酶液消化，制成细胞悬液，经计数，分别取1.4X10^细胞接种于30个含15？83低糖0121培养基培养瓶。每天取2瓶细胞进行计数，计算均值，连续观察直至细胞数量明显下降，培养3天后每隔2天给未计数的细胞换液，采用同样方法观察转染细胞在“即如2枷2-3？1无血清培养基中的生长情况。结果以培养时间为横轴，细胞数量为纵轴(对数)，描绘在半对数座标上制成曲线后即成该细胞的生长曲线，永生化细胞系呈典型的“3”特征或“穹隆”形成；③检查染色体:如果染色体核型为47，XX，+18 ；或47，XI, +18 ；或相同于本发明采集的原代18三体综合症细胞，则说明该细胞系没有发生恶性转化(同时可用流式细胞仪分析细胞系中是否出现异常的0嫩群体，如果没有，也说明细胞系未出现瘤性特征)。染色体核型分析方法是:在细胞生长密度达85-95% (其中小园形细胞占10%〉、处于对数生长期的培养物中按5此培养液中加入预热的250118 / 1111秋水仙素100111，混匀后置371培养箱4小时，吸干培养液，加入预热的
2-301 ￡0171-胰酶消化液，371作用5分钟，终止消化，洗下贴壁细胞，经离心、低渗、固定、制片、6显带后分析染色体核型软琼脂集落生长试验:将37401转染后永生化的细胞以5父104 / “接种于直径为软琼脂平皿内，观察三周后，未发现克隆形成，说明本实验的37401永生化染色体异常羊水细胞不能在软琼脂内形成克隆，符合永生化特点；⑤裸鼠致瘤试验:将37401永生化的细胞以3乂107接种裸鼠背部皮下，2个月后，4只裸鼠均未见肿瘤形成，证明此细胞为非恶化细胞；⑥转染细胞0嫩中^40大I基因检测:如以免疫组织化学检测，3乂40转染的细胞核内染色可见大量棕色颗粒，表明3乂401抗原已整合入细胞内；也可用奶-？0？法检测I抗原在细胞中的表达，其中I抗原的引物:上游引物(八4239)5’ -611^16 八丁丁八丁八 ^01 6X1 八 1^-3’，下游引物(34496)5, ^16 IX八 101 似 6八丁-3，；扩增产物长度为 268如，扩增条件为 94。匕 5111111,即:(94^0,1111111:55^0,1111111, -0.5。。/ 循环；72。。，1111111) X 30、(9400，308 ；40。。，308, 72。。，308) X 15，扩增体系为 50 11 1: 2臟01 丨[、伽1？8200 411101 / [、引物浓度0.4 011101 /匕I叫1 口、模板5^ 1 ；实验组以第19代细胞的⑶嫩为模板(参照市售⑶嫩第一链合成试剂盒进行⑶嫩第一链合成，产物-201保存)；阴性对照设两个，分别以无菌水、原代细胞的⑶嫩做模板，阳性对照以^400嫩为模板(参照303-蛋白酶1(法提取37400嫩，因为^40病毒无包膜，不使用303破膜，取5 4 1进行1.5 %琼脂糖凝胶电泳检测，其余-20 00保存备用)；⑦1111很八表达产物测定:I'抗原很八奶-？0？产物测序:取1009 1体系的扩增产物，用凝胶回收试剂盒(化!^!^，日本)回收产物，取2^ 1 0嫩溶液稀释100倍，测浓度，余下的0嫩及上、下游引物各10^ 1进行测序。④流式细胞术检测:检测第19代细胞系中合成、分裂的细胞比例，如果其增殖能力明显比未建系的正常细胞增强，说明是^40大I抗原整合、表达的结果；@0嫩序列测定:按常规测序仪检测，显示3料0大I抗原0嫩序列。
[0022]所以，本发明的细胞模型为①细胞在倒置光学显微镜下呈梭形或小园形的上皮细胞样贴壁生长；②细胞的生长曲线如以培养时间为横轴，细胞数量为纵轴，在“即如21腿-3？1无血清培养基中呈“3”特征或“穹隆”形成逾染色体核型为47，XX，+18 ；或47，XV，+18 ；或相同于本发明采集的原始唐氏综合症细胞；④细胞不能在软琼脂内生长(形成克隆)；⑤细胞为非恶化细胞，裸鼠致瘤试验阴性细胞的0嫩中整合了 ^401抗原基因，表达^401抗原1111？嫩产物；@细胞传代至第55代、培养至第7天时，呈对数生长、圆形、梭形、铺满瓶底，其细胞生长汇合率达95%以上，此后随着传代次数的增加，细胞生长变慢、变稀疏。
[0023]7、874011基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库:筛选并继续传代、扩大培养经上述鉴定后符合永生化细胞特性并与原代细胞相同或相近的细胞，取生长状态良好、处于对数生长期的不同世代的贴壁细胞，经过消化、终止和离心分离(12001 /
6111111)，用含二甲亚砜的冻存液0.5?11111重悬细胞，细胞密度为5父105个/ 1111，加入冻存管，经41,0.51！ ；-2021！ ；-70。〇，过夜，入-1961液氮冻存，以此法构建生物学特性稳定的永生化18-三体综合征细胞模型及其细胞库，以集中保存遗传资源，为其他研究提供科研材料，又可直接作为18-三体综合征发病机制体外研究的细胞模型，以加速拓展18-三体综合征研究的新途径，从细胞水平在体外研究18-三体综合征细胞受物理、化学、生物、遗传等影响的基因突变、基因表达、功能改变、生理特性、生物传导等机制。
[0024]8、细胞模型应用
[0025]1)细胞模型作为科研细胞
[0026]使18三体细胞模型处于人为制造的具有不同含量或浓度的有害物如物理(如X射线〉、化学(如甲醛、汽油、铅、汞〉、生物(如风疹病毒，巨细胞病毒，疱疹病毒)的条件下培养，然后取体外长期传代的不同周期的活细胞、传代过程的凋亡细胞、含有传代培养中所产生的代谢产物的培养液从不同角度和水平，研究染色体异常、其他异常、正常对照细胞模型对有害物的耐受性、有害物致出生缺陷的机制。例如应用常规方法如基因芯片、1111^芯片、比较基因组杂交芯片(⑶田、差异甲基化杂交芯片(01?)和％？8、等筛选差异的基因及其多态性、甲基化水平；运用原位杂交$13?)、^01-^1161-11 610扒1？631^11116 ？⑶、⑶I？、21“等技术检测基因所在研究细胞模型中的基因转率表达、定位及调控；利用酶反应学、代谢组学技术鉴定细胞模型长期传代中蛋白质代谢过程和关键的代谢产物；应用双向电泳、嫩0)1-10？质谱鉴定、酵母双杂交和免疫共沉淀等技术研究细胞模型在长期传代中的蛋白质功能及蛋白质间的相互作用，从活细胞培养过程动态、长期研究环境有害因素致出生缺陷的机制，例如:①环境中常见的毒性物质苯并芘致18三体出生缺陷的研究:使18三体细胞模型和正常对照细胞分别在含有0.1,1.0,5.0,10.0,20.0^1 / I苯并芘的培养液中培养，检测在培养2周、4周、6周、8周、16周等不同培养时间的可作为细胞毒性指标的细胞凋亡、坏死、双核细胞率和可作为遗传毒性指标的微核率、核质桥率、核芽率，即在光学显微镜下计数10000个双核细胞中的微核数、核质桥数和核芽数；500个活细胞中的凋亡和坏死细胞数、双核细胞数，以及检测细胞存活率，即应用四甲基偶氮唑盐比色法(111法)，在吸去原培养液后，在96孔板上加入20%的5呢/ 1111111的无血清培养液，继续培养处，小心吸弃孔内上清液，每孔加入1509[二甲亚砜，振荡10-！！，使紫色结晶物充分溶解，本酶标仪以490=0测定各孔的吸光度值，计算出细胞存活率。还可以其他常规实验方法检测不同培养时间的含毒性物与不含毒性物、病例与正常细胞中各组细胞的基因突变、蛋白质组学、细胞分泌功能、染色体畸变、细胞存活率(寿命)等，以从活细胞培养过程中从细胞水平动态、长期研究环境有害因素致18三体出生缺陷的机制。②以某种病源微生物替换毒性物质苯并芘做同样的研究，即可从活细胞培养过程中从细胞水平动态、长期研究生物因素致18三体出生缺陷的机制。③将配成浓度梯度的治疗药物与配成浓度梯度的病源微生物或毒性化学物质以及18三体细胞模型共同培养，即可从活细胞培养过程中从细胞水平动态、长期研究药物对致18三体出生缺陷因素的治疗效果及对出生缺陷的干预效果。④同样可用18三体细胞模型研究基因治疗的方法，替代某些以人体直接做试验。
[0027]2)细胞模型作为质控细胞
[0028]实验室的质量控制是开展实验诊断项目的准入制度，已成为政府行为。18三体细胞模型可用作质控细胞，用于室内质控和室间质评。例如用细胞模型同步于临床标本的染色体病实验诊断方法，作常规细胞培养、染色体制备、染色体核型分析，以考核实验过程的试剂质量、仪器性能、操作方法等是否可靠，相当于实验中的阳性、阴性对照；可将细胞模型经常规染色体制备、染色体核型分析所得到的图像作整理后，发送到各相关实验室，以考核各室对各种染色体异常图像的诊断的准确性；可将细胞模型发送到各相关实验室，在各室自行作出常规细胞培养、染色体制片、染色体核型分析后回报结果，对各室的诊断结果作室间质量评价，通过评比各室的准确性，以发现相关问题、解决问题、提高诊断质量；可将18三体细胞模型与各种正常染色体细胞按质控所需要的种类及比例混合，制成含有不同种类和比例的混合质控细胞，作为荧光原位杂交(巧別)检测染色体数目异常室内质控细胞和室间质评细胞，如果某实验室在作？13?中没有检测出(漏诊)质控细胞的不同种类的染色体异常、没有准确检测出不同种类的染色体异常的比率(％ ),则说明实验方法存在质量问题，应找原因改正。现以几种染色体异常细胞模型混合后制备的质控细胞在荧光原位杂交室间质评中的具体应用为例说明如下:①准备质控细胞:取1例或数例18三体及染色体正常细胞模型，按质控所需要的例次或比例混合而成质控细胞，混合的质控细胞还可经扩增后发放使用。如以1例18三体染色体数目异常细胞模型与1例染色体正常细胞模型等比例细胞数混合，则18三体染色体数目异常的细胞与染色体正常细胞各占50%。然后将质控细胞发送到各受试对象做室间质量评价。②荧光原位杂交(巧別)检测质控细胞染色体数目及结果判定:各受试对象收到质控细胞后，可酌情对质控细胞株进行传代扩增后测试，以增加细胞数。试剂采用瑞士雅培制药有限公司的八1161^781011试剂盒，完成3条染色体的数目分析:第 18 号細皿，青色)? X61-0611,绿色)、！
，红色)号染色体为计数探针(0^01110801116 ￡111111161? 1:丨叩？1~0136，⑶？)，混合后杂交第1个区域，方法是取18、X和V染色体探针，将质控细胞(与实验室被检标本)同步，经20001- / 111111离心10111111，去上清，留沉淀0.21111，离心管中加入41111胶原酶37。〇温浴30111111，20001 / 111111离心10111111，去上清，然后加入51111预温的1511101 / I %1，在37水浴中低渗25111111, 20001- / 111111离心10111111，去上清。加入新配制的固定液(甲醇:冰醋酸=3:1)固定10111111，离心2000:^ / 111111离心10111111去上清，反复两次。滴片，自然干燥老化。将制备好的标本片自冰柜中取出，依次放人70 %、85 %、100 %乙醇中脱水，室温干燥，预处理好的玻片置731，70%甲酰胺中50111。在暗室中将两种探针混合液各10 9 1加在玻片的靶区域，盖上盖玻片，避免产生气泡，封片胶将盖玻片封好，置暗湿盒中421杂交过夜，清洗，在高倍镜下观察杂交效果，每例标本计数60?100个细胞，记录杂交信号数目并采集图像，要求细胞核膜必须完整，核内杂交信号明亮清晰无重叠，信号弥散及微弱均不作统计。③测试结果:经探针杂交后，细胞内的18号染色体显示青色的点，每条18号显示1个青色的点，2条则显示2个青色的点，3条则显示3个青色的点；细胞内女性)染色体显示绿色的点，每条X染色体显示1个绿色的点，2条则显示2个绿色的点，3条则显示3个绿色的点；细胞内V男性)染色体显示红色的点，每条X染色体显示1个红色的点，2条则显示2个红色的点，3条则显示3个红色的点。如果实验人员技术、操作、实验器材、试剂等有质量问题，则21号染色体红色的点、细胞内XI:女性)染色体绿色的点、细胞内1(男性)染色体红色的点就没有信号或难以辩认。④另外，病例细胞模型可用于基因芯片、八芯片、比较基因组杂交芯片((--)、差异甲基化杂交芯片(01?)和 ％？8、吣忖116111 1310^^681-^11116 ？⑶、011？、￡13 八等基因检测技术的阳性对照，或作为病例资源保存，备作用上述方法作基因突变、基因组学、蛋白质组学等检测，以分析发病机理。
【权利要求】
1.一种用于医学研究领域的SV40LT基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库的构建，其主要特征是按常规以T4DNA连接酶、BamH1、pcDNA3.1 (-)DNA及SV40LTag DNA构建SV40LTag-pcDNA3.1 (-)重组子、以感受态大肠杆菌纯化重组子、以脂质体转染法将其导入经胶原酶II消化的离体传代或呈对数生长的18-三体综合征组织细胞，使重组子与细胞的DNA整合，并扩大培养经G418筛选含阳性重组子的细胞克隆，筛选细胞形态、生长曲线、染色体核型、软琼脂集落生长、裸鼠致瘤试验、转染细胞DNA中SV40大T基因检测、mRNA表达产物测定及DNA序列测定结果符合永生化细胞特性并与原代细胞相同或相近者作为SV40LT抗原基因介导18-三体综合征体外研究细胞模型冻存于液氮中，为在体外从细胞水平长期研究18-三体综合征的发病机制奠定基础。
2.根据权利要求1所述的SV40LT基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库的构建，其特征是所指细胞模型(I)细胞在倒置光学显微镜下呈梭形或小园形的上皮细胞样贴壁生长；(2)细胞的生长曲线如以培养时间为横轴，细胞数量为纵轴，在h印ato ZYME-SFM无血清培养基中呈“S”特征或“穹隆”形成；(3)染色体核型为47，XX(XY)，+18 ;(4)细胞不能在软琼脂内生长(不形成克隆)；(5)细胞为非恶化细胞，裸鼠致瘤试验阴性；(6)细胞的DNA中整合了 SV40LT基因，表达SV40LTmRNA产物；(7)细胞传代至第55代、培养至第7天，仍呈对数生长、圆形、梭形；(8)作为细胞模型用于在体外从细胞水平(替代人体或动物直接试验)研究18-三体综合征的发病机制、遗传资源贮存、实验对照及质控细胞。
3.根据权利要求1所述的SV40LT基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库的构建，其特征是取自因其他实验所需而采集的、并在其他实验后多余、废弃的18-三体综合征患儿羊水脱落细胞构建之。
4.根据权利要求1所述的SV40LT基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库的构建，其特征是所用的培养液为含有20%胎牛血清、5?lOnmol/L胰岛素的RPMI1640或含有20mL / L胎牛血清、5?1nmol / L胰岛素的低糖DMEM培养液。
5.根据权利要求1所述的SV40LT基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库的构建，其特征是用作传代培养以备脂质体转染法导入重组子的18-三体综合征组织细胞，在原代扩增培养中，其收集指标是细胞贴壁培养约3?4天、细胞形态为梭形、小园形细胞不到10%、贴壁细胞的汇合率达75%?85%、处于刚进入对数生长期时收集细胞；用作脂质体转染法导入重组子的传代18-三体综合征组织细胞，其时机选择的指标是细胞形态为梭形、尚未见或仅见少于10%小园形细胞、贴壁细胞的汇合率达55%?65%、处于将进入或刚进入对数生长期时的培养细胞；传代细胞系收集的指标是选择细胞贴壁生长的汇合率达80?85%、处于对数生长期的前期时收集细胞；染色体核型分析的细胞收集指标是细胞生长密度达85-95 %、小园形细胞占10 %以上、处于对数生长期的细胞。
6.根据权利要求1所述的SV40LT基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库的构建，其特征是以0.01%胶原酶II消化贴壁生长的18-三体综合征组织细胞，作染色体核型分析时，每5mL培养液中加入250ug / ml秋水仙素lOOul，混匀后置37°C培养箱4小时。
7.根据权利要求1所述的SV40LT基因转染18-三体综合征细胞模型及其细胞库的构建，其特征是细胞库的构建包括(I)筛选经鉴定后符合永生化细胞特性并与原代细胞相同或相近的SV40LT基因转染的18-三体综合征细胞；(2)作传代、扩大培养，取生长状态良好、处于对数生长期的不同世代的贴壁细胞；(3)经消化、终止、离心(1200r / min,6min)步骤收获细胞；(4)用含二甲亚砜的冻存液配制密度为5父105个/ ml的细胞悬液；(5)按照4°C，0.5h ；-20°C,2h ;-70°C，过夜；入_196°C液氮的程序冻存细胞；(6)可再生性地长期保存SV40LT基因转染18-三体综合征细胞模型，备作遗传资源和科研材料。
【文档编号】C40B40/02GK104419684SQ201310415253
【公开日】2015年3月18日 申请日期:2013年9月1日 优先权日:2013年9月1日
【发明者】翁炳焕, 黄荷凤, 陈松长, 李晓, 刘蓓, 陈雁 申请人:翁炳焕