一种富含RG‑I的超低分子量果胶的制备方法与流程

文档序号:12707520阅读:1148来源:国知局

本发明涉及一种富含RG-I的超低分子量果胶的制备方法,特别涉及一种利用超声辅助氧化处理绿色、快速制备超低分子量果胶的方法,属于多糖降解领域。



背景技术:

果胶主要是由D-半乳糖醛酸经α-1,4糖苷键连接的一类酸性杂多糖,其侧链含有大量的鼠李糖、阿拉伯糖和半乳糖等中性糖。果胶主要包括均聚半乳糖醛酸聚糖(HG)、鼠李半乳糖醛酸聚糖I(RG-I)和鼠李半乳糖醛酸聚糖II(RG-II)三个结构域,其广泛存在于植物中,如苹果、柑橘、番石榴、向日葵花盘及甘薯渣中,且被认为是一种可溶性的膳食纤维,具有降低胆固醇、预防糖尿病、防止肥胖以及维持肠道健康等多种生理功能。但果胶分子量太大,不易被消化吸收,因此限制其在小肠中的吸收,影响其生理活性的发挥。而改性后的超低分子量果胶溶解性好,易被吸收,且RG-I含量增加,并能表现出更强的生物活性,因此开发新型降解果胶的方法,制备改性低分子量果胶具有重要意义。

目前果胶降解的方法主要包括生物降解、物理降解和化学降解。生物酶解反应温和,专一性高,但反应条件苛刻,成本较高。物理降解法主要有超声降解、辐射降解、微波降解等,辐射法降解效率最高,但对分子结构破坏大,且安全性存在争议,使其应用受到限制;微波降解易产生高温影响降解产物生物活性;超声降解对产物活性结构破坏小,但其降解能力有限,只能将果胶降解至30kDa左右,仍不能被人体吸收。化学降解目前主要包括酸降解和碱降解,但由于加入强酸、强碱等,易造成环境污染,反应速率较慢,且一般在高温下进行反应,因此对结构影响破坏较大,降低生物活性。



技术实现要素:

本发明的目的在于改进目前制备RG-I型超低分子量果胶技术,提供了一种绿色、安全、快速的富含RG-I的超低分子量果胶的制备方法。

实现本发明生产工艺的主要特征包括以下步骤:

(1)取蒸馏水,加入适量HCl溶液调整pH在3-5之间,加入FeCl2·4H2O、FeSO4·7H2O、Cu(CH3COO)2·H2O或CuSO4·5H2O,配置成金属离子浓度为0.5-5mmol/L的溶液A;

(2)取果胶溶于溶液A中,使得果胶的浓度为2-10mg/mL,涡旋振荡仪震荡,使其完全溶解;

(3)在步骤2配制的果胶溶液中加入5mol/LH2O2溶液,使金属离子与过氧化氢摩尔浓度比为1:20,转移到0-50℃环境中进行超声处理,超声强度为1.5-20W/mL。

(4)超声处理后,加入亚硫酸氢钠,终止反应;然后通过阳离子交换树脂柱置换溶液中的阳离子;

(5)对步骤4处理后的溶液进行4000r/min离心,取上清液,调整上清液pH至5-8;

(6)将步骤5处理后的上清液转移至500Da的透析袋,流水透析24h,纯水透析12h,后将其置于真空冷冻机中冻干,得到富含RG-I的超低分子量果胶。

进一步地,所述步骤2中,果胶的浓度为5mg/mL。

进一步地,所述步骤3中,超声处理的环境温度为30℃,超声强度为3-5W/mL

进一步地,所述步骤5中,上清液pH优选6。

本发明的有益效果在于:

(1)本发明为富含RG-I超低分子量果胶提供一种绿色、安全、快速降解方法,得率可达到65%以上,所得产品纯度较高、质量稳定、成本低。

(2)降解工艺简单,反应时间短,所用树脂可重复利用,工艺条件环保无污染。

(3)本发明所得果胶的重均分子量在5-10kDa,酯化度下降,产物多为富含RG-I的超低分子量果胶,抗氧化活性显著高于原果胶,综合利用率提高。

具体实施方式

本发明通过超声强化氧化反应,促进反应体系(如公式1)中生成的Fe3+还原为Fe2+,强化Fe2+与过氧化氢重新反应,产生羟基自由基,造成果胶糖链氧化断裂,且特异型攻击果胶中的半乳糖醛酸,形成富含RGI结构域的低分子量果胶。

Fe2++H2O2→Fe3++·OH+OH-

下面结合具体施例对本发明做进一步的阐述。

实施例1:

(1)取25mL蒸馏水,加入3mol/L HCl溶液,用pH计调整pH为3.0,加入FeCl2·4H2O,配置成0.5mmol/L Fe2+的溶液A;

(2)取60mg果胶(Sigma公司)溶解于25ml溶液A中,充分溶解后,转移至超声管(内径3cm)中;

(3)将其置于30℃恒温槽中,将超声探头置于液面下1.5cm处进行超声处理,同时加入50μL 5mol/LH2O2溶液,设定超声强度1.5W/mL,超声处理40min;

(4)在降解液中加入过量亚硫酸氢钠,还原多余的双氧水,以终止反应;

(5)将步骤4处理后的溶液通过阳离子交换树脂柱,控制流速为0.5mL/min,使得阳离子交换树脂置换其中的金属阳离子;

(6)将置换后的溶液4000r/min离心,取上清液,调整pH 6.0;

(7)将上述溶液转移至500Da的透析袋流水透析24h,纯水透析12h,后将其置于真空冷冻机中冻干;取果胶样品进行分子量及单糖组成测定,结果如表1所示,处理后,分子量由448.26kDa降至6.32kDa,果胶RG-I域比例增加,主要以RG-I结构为主。

表1 降解前后果胶单糖组成

本实施例通过40分钟快速地完成了果胶的降解,从表中可以看出,降解后的果胶寡糖中,半乳糖含量大大降低,且Rha/GalA比值从0.13升至0.55,,说明RG-I结构域占比分布增加,(Gal+Ara)/Rha代表RG-I侧链长度,侧链长度略微下降,但相对于RG-I结构域占比和半乳糖酸酸含量,其改变较小。此外,GalA/(Fuc+Rha+GlcA+Ara+Gla+Xyl)比值从2.20将至0.56,说明果胶线性度显著下降,即支链度升高,从以上信息可以推测出超声结合氧化降解,主要作用于果胶中HG域,造成HG域含量降低,而RG-I结构较好的保留,从而制备出富含RG-I果胶。

实施例2:

(1)取100mL蒸馏水,加入3mol/L HCl溶液,用pH计调整pH为4.0,加入FeCl2·4H2O,配置成2mmol/L Fe2+的溶液A;

(2)取500mg果胶(Sigma公司)溶解于100ml溶液A中,充分溶解后,转移至超声管(内径6cm)中;

(3)将其置于30℃恒温槽中,将超声探头置于液面下1.5cm处进行超声处理,同时加入800μL高浓度H2O2溶液,设定超声强度4.0W/mL,超声处理30min;

(4)在降解液中加入过量亚硫酸氢钠,还原多余的双氧水,以终止反应;

(5)将步骤4处理后的溶液通过阳离子交换树脂柱,控制流速为1.0mL/min,使得阳离子交换树脂置换其中的金属阳离子;

(6)将置换后的溶液4000r/min离心,取上清液,调整pH 6.0;

(7)将上述溶液转移至500Da的透析袋流水透析24h,纯水透析12h,后将其置于真空冷冻机中冻干;取果胶样品进行分子量及单糖组成测定,结果如表2所示,处理后,分子量由448.26kDa降至7.29kDa,果胶RG-I域比例增加,主要以RG-I结构为主。

表2 降解前后果胶单糖组成

本实施例通过30分钟快速地完成了果胶的降解,从表中可以看出,降解后的果胶寡糖中,半乳糖含量大大降低,且Rha/GalA比值从0.13升高至0.53,说明RG-I结构域占比分布显著增加,(Gal+Ara)/Rha代表RG-I侧链长度,侧链长度略微下降,但相对于RG-I结构域占比和半乳糖酸酸含量,其改变较小。此外,GalA/(Fuc+Rha+GlcA+Ara+Gla+Xyl)比值从2.20将至0.58,说明果胶线性度下降,即支链度升高,从以上信息可以推测出超声结合氧化降解,主要作用于果胶中HG域,造成HG域含量降低,而RG-I结构较好的保留,从而制备出富含RG-I果胶。

实施例3:

(1)取1000mL蒸馏水,加入3mol/L HCl溶液,用pH计调整pH为5.0,加入FeCl2·4H2O,配置成5mmol/L Fe2+的溶液A;

(2)取10g果胶(Sigma公司)溶解于1000ml溶液A中,充分溶解后,转移至超声槽中;

(3)将其置于40℃恒温槽中,并加入20mL高浓度H2O2溶液,设定超声强度4.0W/mL,超声处理30min;

(4)在降解液中加入过量亚硫酸氢钠,还原多余的双氧水,以终止反应;

(5)将步骤4处理后的溶液通过阳离子交换树脂柱,控制流速为2.0mL/min,使得阳离子交换树脂置换其中的金属阳离子;

(6)将置换后的溶液4000r/min离心,取上清液,调整pH 6.0;

(7)将上述溶液转移至500Da的透析袋流水透析24h,纯水透析12h,后将其置于真空冷冻机中冻干;取果胶样品进行分子量及单糖组成测定,结果如表2所示,处理后,分子量由448.26kDa降至2.14kDa,果胶RG-I域比例增加,主要以RG-I结构为主。

表3 降解前后果胶单糖组成

本实施例通过30分钟快速地完成了果胶的降解,从表中可以看出,降解后的果胶寡糖中,半乳糖含量大大降低,且Rha/GalA比值从0.13升高至0.61,说明RG-I结构域占比分布显著增加,(Gal+Ara)/Rha代表RG-I侧链长度,侧链长度略微下降,但相对于RG-I结构域占比和半乳糖酸酸含量,其改变较小。此外,GalA/(Fuc+Rha+GlcA+Ara+Gla+Xyl)比值从2.20将至0.53,说明果胶线性度下降,即支链度升高,从以上信息可以推测出超声结合氧化降解,主要作用于果胶中HG域,造成HG域含量降低,而RG-I结构较好的保留,从而制备出富含RG-I果胶。

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