菌株，按照上述测试方法范例中的方法进行测试。用96孔细胞培养板在37°C静置培养菌株24h，用结晶紫染色法和全波长酶标仪测定菌株的生物膜形成能力，测得的OD595均值为:1.27 ;用每升含氯化钠10g，胰蛋白胨10g，酵母粉5g的对照培养基在同样条件下培养枯草芽孢杆菌Oacillussubtilis ATCC6051)，所测得的OD595均值为:1.03(对照)；由此可见，使用本发明所提供的简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基培养枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilisATCC6051)，与对照相比，其生物膜形成能力提高23.30%。
[0034]实施例10:
[0035]一种简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基，该培养基的配方如下:每升含有氯化钠llg，胰蛋白胨9g，酵母粉4g，氯化钙50g，余量为水，将上述成分混合均匀后，灭菌备用；用枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis ATCC6051)作为测试菌株，按照上述测试方法范例中的方法进行测试。用96孔细胞培养板在37°C静置培养菌株24h，用结晶紫染色法和全波长酶标仪测定菌株的生物膜形成能力，测得的OD595均值为:1.23 ;用每升含氯化钠Hg，胰蛋白胨9g，酵母粉4g，余量为水的对照培养基在同样条件下培养枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis ATCC6051)，所测得的OD595均值为:1.02 (对照)；由此可见，使用本发明所提供的简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基培养枯草芽孢杆菌(Bacillussubtilis ATCC6051)，与对照相比，其生物膜形成能力提高20.59%。
[0036]实施例11:
[0037]一种简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基，该培养基的配方如下:每升含有氯化钠Sg，胰蛋白胨12g，酵母粉7g，氯化钙10g，余量为水，将上述成分混合均匀后，灭菌备用；用铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)作为测试菌株，按照上述测试方法范例中的方法进行测试。用96孔细胞培养板在30°C静置培养菌株24h，用结晶紫染色法和全波长酶标仪测定菌株的生物膜形成能力，测得的OD595均值为:2.34 ;用每升含氯化钠8g，胰蛋白胨12g，酵母粉7g的对照培养基在同样条件下培养铜绿假单胞菌(Pseudomonasaeruginosa ATCC9027)，所测得的OD595均值为:1.82(对照)；由此可见，使用本发明所提供的简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基培养铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosaATCC9027)，与对照相比，其生物膜形成能力提高28.57%。
[0038]实施例12:
[0039]一种简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基，该培养基的配方如下:每升含有氯化钠9g，胰蛋白胨13g，酵母粉6g，氯化1? 20g，余量为水，将上述成分混合均勾后，灭菌备用；用铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)作为测试菌株，按照上述测试方法范例中的方法进行测试。用96孔细胞培养板在30°C静置培养菌株24h，用结晶紫染色法和全波长酶标仪测定菌株的生物膜形成能力，测得的OD595均值为:3.62 ;用每升含氯化钠9g，胰蛋白胨13g，酵母粉6g，余量为水的对照培养基在同样条件下培养铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)，所测得的 OD595均值为:1.79 (对照);由此可见，使用本发明所提供的简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基培养铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)，与对照相比，其生物膜形成能力提高1.02倍。
[0040]实施例13:
[0041]一种简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基，该培养基的配方如下:每升含有氯化钠12g，胰蛋白胨Sg，酵母粉6g，氯化钙30g，余量为水，将上述成分混合均匀后，灭菌备用；用铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)作为测试菌株，按照上述测试方法范例中的方法进行测试。用96孔细胞培养板在30°C静置培养菌株24h，用结晶紫染色法和全波长酶标仪测定菌株的生物膜形成能力，测得的OD595均值为:2.68 ;用每升含氯化钠12g，胰蛋白胨Sg，酵母粉6g，余量为水的对照培养基在同样条件下培养铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)，所测得的 OD595均值为:1.85 (对照)；由此可见，使用本发明所提供的培养基培养铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)，与对照相比，其生物膜形成能力提高44.86%。
[0042]实施例14:
[0043]一种简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基，该培养基的配方如下:每升含有氯化钠10g，胰蛋白胨10g，酵母粉5g，氯化1? 40g，余量为水，将上述成分混合均勾后，灭菌备用；用铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)作为测试菌株，按照上述测试方法范例中的方法进行测试。用96孔细胞培养板在30°C静置培养菌株24h，用结晶紫染色法和全波长酶标仪测定菌株的生物膜形成能力，测得的OD595均值为:2.55 ;用每升含氯化钠10g，胰蛋白胨10g，酵母粉5g，余量为水的对照培养基在同样条件下培养铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)，所测得的 OD595均值为:1.88 (对照);由此可见，使用本发明所提供的简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基培养铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)，与对照相比，其生物膜形成能力提高35.64%。
[0044]实施例15:
[0045]一种简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基，该培养基的配方如下:每升含有氯化钠llg，胰蛋白胨9g，酵母粉4g，氯化钙50g，余量为水，将上述成分混合均匀后，灭菌备用；用铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)作为测试菌株，按照上述测试方法范例中的方法进行测试。用96孔细胞培养板在30°C静置培养菌株24h，用结晶紫染色法和全波长酶标仪测定菌株的生物膜形成能力，测得的OD595均值为:2.26 ;用每升含氯化钠Hg，胰蛋白胨9g，酵母粉4g，余量为水的培养基在同样条件下培养铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)，所测得的 OD595均值为:1.86 (对照)；由此可见，使用本发明所提供的简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基培养铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa ATCC9027)，与对照相比，其生物膜形成能力提高21.51%。
[0046]实施例16:
[0047]一种简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基，该培养基的配方如下:每升含有氯化钠8g，胰蛋白胨12g，酵母粉7g，氯化1? 10g，余量为水，将上述成分混合均勾后，灭菌备用；用魏氏梓檬酸杆菌(Citrobacter werkmanii ATCC51635)作为测试菌株，按照上述测试方法范例的方法进行测试。用96孔细胞培养板在30°C静置培养菌株24h，用结晶紫染色法和全波长酶标仪测定菌株的生物膜形成能力，测得的OD595均值为:3.41 ;用每升含氯化钠Sg，胰蛋白胨12g，酵母粉7g，余量为水的对照培养基在同样条件下培养魏氏柠檬酸杆菌(Citrobacter werkmanii ATCC51635)，所测得的 OD595均值为:2.03 (对照);由此可见，使用本发明所提供的简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基培养魏氏柠檬酸杆菌(Citrobacter werkmanii ATCC51635)，与对照相比，其生物膜形成能力提高67.98%。
[0048]实施例17:
[0049]一种简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基，该培养基的配方如下:每升含有氯化钠9g，胰蛋白胨13g，酵母粉6g，氯化1? 20g，余量为水，将上述成分混合均勾后，灭菌备用；用魏氏梓檬酸杆菌(Citrobacter werkmanii ATCC51635)作为测试菌株，按照上述测试方法范例中的方法进行测试。用96孔细胞培养板在30°C静置培养菌株24h，用结晶紫染色法和全波长酶标仪测定菌株的生物膜形成能力，测得的OD595均值为:3.75 ;用每升含氯化钠9g，胰蛋白胨13g，酵母粉6g，余量为水的对照培养基在同样条件下培养魏氏柠檬酸杆菌(Citrobacter werkmanii ATCC51635)，所测得的 OD595均值为:2.02 (对照);由此可见，使用本发明所提供的简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基培养魏氏柠檬酸杆菌(Citrobacter werkmanii ATCC51635)，与对照相比，其生物膜形成能力提高85.64%。
[0050]实施例18:
[0051]一种简便而有效促进细菌生物膜形成的培养基，该培养基的配方如下:每升含有氯化钠12g，胰蛋白胨8g，酵母粉6g，氯化1? 30g，余量为水，将上述成分混合均勾后，灭菌备用；用魏氏梓檬酸杆菌(Citrobacter werkmanii ATCC51635)作为测试菌株，按照上述测试方法范例中的方法进行测试。用96孔细胞培养板在30°C静置培养菌株24h，用结晶紫染色法和全波长酶标仪测定菌株的生物膜形成能力，测得的OD595均值为:3.81 ;用每升含氯化钠12g，胰蛋白胨Sg，酵母粉6g，余量为水的对照培养基在同样条件下培养魏氏柠檬酸杆菌(Citrobacter werkmanii ATCC51635)