一种外周血淋巴细胞连接蛋白43与IL‑2和IL‑6表达的相关性分析方法与流程

本发明属于生物技术领域，涉及一种外周血淋巴细胞连接蛋白43与IL-2和IL-6表达的相关性分析方法，具体地说，涉及一种自发性高血压大鼠外周血淋巴细胞连接蛋白43与IL-2和IL-6表达的相关性分析方法。

背景技术：

高血压作为多因素引起的慢性疾病，其病因和发病机制十分复杂。ARIMA等研究发现，高血压、动脉粥样硬化等心血管疾病均与机体免疫系统功能关系密切。免疫系统，尤其外周血T细胞、B细胞及自然杀伤细胞中均表达连接蛋白(connexin,Cx)。Cx是缝隙连接的基本组成单位，在相邻细胞间传递信息物质，构成缝隙连接细胞间通讯。MATSUE等研究发现，在脂多糖和肿瘤坏死因子ɑ刺激下，单核细胞中Cx43表达可显著上调。因此，缝隙连接与机体免疫炎性反应相关，参与免疫系统细胞间通讯。CD4+T细胞和CD8+T细胞作为外周血T细胞的主要亚群细胞，参与调节机体免疫炎性反应，在抗感染、抗肿瘤方面发挥重要的免疫调节作用。

技术实现要素：

本发明的目的在于克服现有技术中存在的缺陷，提供一种外周血淋巴细胞连接蛋白43与IL-2和IL-6表达的相关性分析方法，初步探讨Cx43与高血压大鼠炎性反应间的关系，为阐明Cx43对高血压患者炎性反应的作用机制提供理论依据。

其具体技术方案为：

一种外周血淋巴细胞连接蛋白43与IL-2和IL-6表达的相关性分析方法，包括以下步骤：

步骤1、大鼠血压测定 应用BP-6无创血压监测仪测量大鼠尾动脉血压，避免大鼠躁动，于大鼠清醒安静状态下连续测量3次，每次间隔至少1min，取测量3次平均值即为大鼠收缩压。

步骤2、样本采集 3％戊巴比妥钠麻醉大鼠，乙二胺四乙酸(EDTA)抗凝管采集腹主动脉外周血5ml，1 500r/min离心5min，取血浆于-20℃保存，离心后的下层血细胞用于分离外周血淋巴细胞。

步骤3、炎性因子IL-2和IL-6表达 取冻存于-20℃的血浆样品，ELISA法检测IL-2和IL-6表达水平，操作严格按照试剂盒说明书进行。

步骤4、淋巴细胞分离 将血细胞与0.9％氯化钠溶液1:1等体积稀释，吹打混匀。取无菌15ml离心管，加入淋巴细胞分离液，将细胞悬液缓慢按照1:1比例加到淋巴细胞分离液上层，保证血液置于淋巴细胞分离液上层。根据密度梯度离心法分离淋巴细胞，低速离心机水平离心30min(1 500r/min，缓升缓降)。将分离的白色浑浊淋巴细胞层吸出至无菌15ml离心管内，加入3倍0.9％氯化钠溶液洗涤，以1 800r/min离心6min洗涤2次，弃上清，沉淀即淋巴细胞。加入1ml培养基重悬，吸取50μl到1.5ml离心管，加450μl磷酸盐缓冲液(PBS)稀释10倍，显微镜下计数并用台盼蓝染色观察细胞活性。细胞活性为95％以上，调整细胞浓度为1×10⁶个/ml，将细胞接种在24孔板中。

步骤5、流式细胞术检测CD₄⁺和CD₈⁺T细胞Cx43表达 收集5×10⁵个细胞于EP管内，100μl PBS重悬细胞，分别加入相应流式抗体(CD₄-APC，APC同型对照；CD₈-PE，PE同型对照)1μl，并设立阴性对照。125μl固定剂固定淋巴细胞，4℃孵育20min，Cx43一抗1μl抗体与99μl 1×破膜剂破膜，37℃孵育20min；FITC二抗1μl，37℃孵育20min；1ml 1×破膜剂洗涤，弃上清液，PBS重悬细胞，流式细胞仪检测，流式CELLQuest软件进行分析。

步骤6、实时荧光定量PCR检测IL-2mRNA和IL-6mRNA表达 计数分离出的淋巴细胞，调整培养基至细胞浓度为1×10⁶个/ml。将淋巴细胞分为空白对照组、刀豆蛋白(Concanavalin A，ConA)组(培养48h后加入5μg/ml ConA)和Gap27+ConA组(培养前加入5 00μmol/L Gap275，培养48h后加入5μg/ml ConA)。加入10％自体血清(血清处理步骤：56℃灭活30min，以4 000r/min离心30min，4℃保存)，于37℃，5％CO₂培养箱中培养48h。

TRIzol法提取上述培养的淋巴细胞mRNA，核酸蛋白含量检测仪测定A₂₆₀/A₂₈₀值，1％甲醛变性凝胶电泳检测提取质量。选用GADPH作为内参基因，根据大鼠IL-2、IL-6基因cDNA序列，设定引物序列(见表1)。将提取的mRNA样品、随机引物、Rtmix、dNTP混合液、焦碳酸二乙酯(DEPC)水按照反转录体系配制反应体系，按照37℃反转录60min，90℃灭活反转录酶5min的反应程序进行反转录合成cDNA。将2×QuantiNova SYBR Green PCR Master Mix，10×miScript Nucleics Mix通用引物，模板cDNA和RNase-Free water置于冰上，并轻轻混匀，配制反应体系，按照95℃预变性2min，1个循环；95℃变性5s，60℃退火加延伸10s，40个循环设置Bio-Rad荧光定量PCR仪，记录IL-2mRNA与IL-6mRNA相对表达量。

与现有技术相比，本发明的有益效果：

本研究发现，SHR大鼠伴随炎性反应，促炎因子释放增加，同时构成T细胞间缝隙连接通道的Cx43表达显著上调，应用缝隙连接阻断剂阻断淋巴细胞间信息通讯后促炎因子的释放显著下降，提示缝隙连接参与高血压炎性反应。

具体实施方式

下面结合具体实施方案对本发明的技术方案作进一步详细地说明。

1材料与方法

1.1材料

1.1.1实验动物 于2015年4月—2016年4月，选取SHR和正常血压的WKY大鼠各20只，16～18周龄，雄性，体质量150～220g，均从北京维通利华实验动物有限责任公司购买(许可证编号SCXK京2007-0001)，已达到清洁级标准，动物质量为一级标准。饲养环境要求：良好通风、空气过滤系统，环境安静，室温保持20℃、湿度控制在45％左右，每日更换垫料和饮用水，自由摄取水和食物。

1.1.2仪器及试剂 流式细胞仪(E6)购自深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司，水浴锅(H216)购自上海博讯实业有限公司，低速大容量离心机(LC-4016)购自安徽中科中佳科学仪器有限公司，相差倒置显微镜(XD30)购自宁波舜宇有限责任公司，生物安全柜(BHC-1300ⅡA2)购自阿尔泰实验室设备(北京)有限公司，CO₂恒温培养箱(HF151)购自上海力申科学仪器有限公司，凝胶成像仪(BioDoc Imaging)购自美国UVP公司，梯度PCR仪(TC-96/G/H(b)C)购自杭州博日科技有限公司，酶标仪、微量分光光度计(K5500)购自北京凯奥科技发展有限公司，荧光定量PCR仪(TIB-8000)购自泰普生物科技(中国)有限公司。

别藻青蛋白(allophycocyanin，APC)标记小鼠抗大鼠CD₄抗体(B159112)、藻红蛋白(phycoerythrin，PE)标记小鼠抗大鼠CD_8a抗体(B166485)、PE标记IgG1、кIsotype Ctrl同型对照(B179044)均购自BioLegend公司，小鼠来源抗大鼠Anti-Connexin 43(ab-79010)购自Abcam公司，山羊抗小鼠IgG/FITC标记二抗(ZF-0312)购自北京中杉金桥生物科技有限公司，大鼠IL-2(230240922)、IL-6(230641023)ELISA试剂盒均购自杭州联科生物有限责任公司，淋巴细胞分离液(LTS10770125)购自天津灏洋科技有限责任公司，RPMI 1640培养基(1279443)购自美国gibco公司，Concanavalin A(C-2010)购自美国Sigma公司，缝隙连接阻断剂Gap27(A1045)购自Apexbio公司，实时定量PCR(real-time quantitative PCR，qRT-PCR)试剂购自北京庄盟生物有限公司，TRIzol购自life techologies公司，引物序列由生工生物工程股份有限公司设计合成。

1.2方法

1.2.1大鼠血压测定 应用BP-6无创血压监测仪测量大鼠尾动脉血压，避免大鼠躁动，于大鼠清醒安静状态下连续测量3次，每次间隔至少1min，取测量3次平均值即为大鼠收缩压。

1.2.2样本采集 3％戊巴比妥钠麻醉大鼠，乙二胺四乙酸(EDTA)抗凝管采集腹主动脉外周血5ml，1 500r/min离心5min，取血浆于-20℃保存，离心后的下层血细胞用于分离外周血淋巴细胞。

1.2.3炎性因子IL-2和IL-6表达 取冻存于-20℃的血浆样品，ELISA法检测IL-2和IL-6表达水平，操作严格按照试剂盒说明书进行。

1.2.4淋巴细胞分离 将血细胞与0.9％氯化钠溶液1:1等体积稀释，吹打混匀。取无菌15ml离心管，加入淋巴细胞分离液，将细胞悬液缓慢按照1:1比例加到淋巴细胞分离液上层，保证血液置于淋巴细胞分离液上层。根据密度梯度离心法分离淋巴细胞，低速离心机水平离心30min(1 500r/min，缓升缓降)。将分离的白色浑浊淋巴细胞层吸出至无菌15ml离心管内，加入3倍0.9％氯化钠溶液洗涤，以1 800r/min离心6min。洗涤2次，弃上清，沉淀即淋巴细胞。加入1ml培养基重悬，吸取50μl到1.5ml离心管，加450μl磷酸盐缓冲液(PBS)稀释10倍，显微镜下计数并用台盼蓝染色观察细胞活性。细胞活性为95％以上，调整细胞浓度为1×10⁶个/ml，将细胞接种在24孔板中。

1.2.5流式细胞术检测CD₄⁺和CD₈⁺T细胞Cx43表达收集5×10⁵个细胞于EP管内，100μl PBS重悬细胞，分别加入相应流式抗体(CD₄-APC，APC同型对照；CD₈-PE，PE同型对照)1μl，并设立阴性对照。125μl固定剂固定淋巴细胞，4℃孵育20min，Cx43一抗1μl抗体与99μl 1×破膜剂破膜，37℃孵育20min；FITC二抗1μl，37℃孵育20min；1ml 1×破膜剂洗涤，弃上清液，PBS重悬细胞，流式细胞仪检测，流式CELLQuest软件进行分析。

1.2.6实时荧光定量PCR检测IL-2mRNA和IL-6mRNA表达计数分离出的淋巴细胞，调整培养基至细胞浓度为1×10⁶个/ml。将淋巴细胞分为空白对照组、刀豆蛋白(Concanavalin A，ConA)组(培养48h后加入5μg/ml ConA)和Gap27+ConA组(培养前加入5 00μmol/L Gap275，培养48h后加入5μg/ml ConA)。加入10％自体血清(血清处理步骤：56℃灭活30min，以4 000r/min离心30min，4℃保存)，于37℃，5％CO₂培养箱中培养48h。

TRIzol法提取上述培养的淋巴细胞mRNA，核酸蛋白含量检测仪测定A₂₆₀/A₂₈₀值，1％甲醛变性凝胶电泳检测提取质量。选用GADPH作为内参基因，根据大鼠IL-2、IL-6基因cDNA序列，设定引物序列(见表1)。将提取的mRNA样品、随机引物、Rtmix、dNTP混合液、焦碳酸二乙酯(DEPC)水按照反转录体系配制反应体系，按照37℃反转录60min，90℃灭活反转录酶5min的反应程序进行反转录合成cDNA。将2×QuantiNova SYBR Green PCR Master Mix，10×miScript Nucleics Mix通用引物，模板cDNA和RNase-Free water置于冰上，并轻轻混匀，配制反应体系，按照95℃预变性2min，1个循环；95℃变性5s，60℃退火加延伸10s，40个循环设置Bio-Rad荧光定量PCR仪，记录IL-2mRNA与IL-6mRNA相对表达量。

表1实时荧光定量PCR引物序列

1.3统计学方法 采用SPSS 18.0软件进行统计学分析，计量资料以(x±s)表示，两组间比较方差齐性者采用两样本t检验，方差非齐性者采用近似t检验；多组间比较采用方差分析，组间两两比较采用SNK-q检验。以P<0.05为差异有统计学意义。

2结果

2.1SHR和WKY大鼠收缩压比较 SHR大鼠收缩压为(211±15)mm Hg(1mm Hg＝0.133kPa)，高于WKY大鼠的收缩压(122±5)mm Hg，差异有统计学意义(t＝25.22,P<0.01)。

2.2SHR和WKY大鼠炎性因子表达水平比较 SHR大鼠IL-2表达水平为(152.40±29.62)pg/ml，高于WKY大鼠的(73.41±20.16)pg/ml，差异有统计学意义(t＝7.24，P<0.05)；SHR大鼠IL-6表达水平为(29.74±1.90)pg/ml，高于WKY大鼠的(22.58±1.06)pg/ml，差异有统计学意义(t＝14.72，P<0.05)。

2.3SHR和WKY大鼠CD₄⁺和CD₈⁺T细胞Cx43表达 SHR大鼠CD₄⁺T细胞Cx43阳性表达率为(3.48±0.58)％，高于WKY大鼠的Cx43阳性表达率(1.36±0.18)％，差异有统计学意义(t＝15.61，P<0.05)。SHR大鼠外周血CD₈⁺T淋巴细胞Cx43阳性表达率为(39.02±4.77)％，高于WKY大鼠的Cx43阳性表达率(27.48±1.90)％，差异有统计学意义(t＝10.05，P<0.05)。

2.4各组细胞IL-2mRNA、IL-6mRNA相对表达水平比较 5μg/ml ConA和500μmol/L Gap27刺激淋巴细胞，qRT-PCR检测发现ConA活化组IL-2、IL-6表达均显著高于Gap27阻断后再活化组(P<0.01，n＝3)，差异具有统计学意义(见表2)。

表2 SHR大鼠和WKY大鼠各组细胞IL-2mRNA、IL-6mRNA相对表达水平比较(x±s,n＝3)

以上所述，仅为本发明较佳的具体实施方式，本发明的保护范围不限于此，任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明披露的技术范围内，可显而易见地得到的技术方案的简单变化或等效替换均落入本发明的保护范围内。

SEQUENCE LISTING

<110> 石河子大学

<120> 一种外周血淋巴细胞连接蛋白43与IL-2和IL-6表达的相关性分析方法

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