一种抗寒粗肋草多倍体的诱导方法

文档序号:125583阅读:353来源:国知局
专利名称:一种抗寒粗肋草多倍体的诱导方法
技术领域
本发明涉及粗肋草育种技术,尤其涉及一种抗寒粗肋草多倍体的诱导方法。
背景技术
粗肋草是天南星科粗肋草属(Aglaonema)植物的通称,又名广东万年青、亮丝草, 原产于我国广东、广西、云南及东南亚的印度、泰国、越南、菲律宾、马来西亚、印尼和新几内亚等地,为多年生常绿草本植物。其叶片、叶柄和叶脉具有多姿多彩的颜色搭配,具有很强的欣赏价值,深受人们的喜爱,在国际上被列为理想的室内观叶植物。但是,粗肋草普遍在 15°C以下即会出现冻伤现象,影响其冬季生产、销售。为此,通过诱导多倍体,培育出具有抗寒性的粗肋草新品种,对满足市场需要具有重要意义。

发明内容
本发明旨在克服粗肋草普遍在15°C以下即会出现冻伤现象、影响其冬季生产的不足,满足市场需求,提供一种抗寒粗肋草多倍体的诱导方法。本发明一种抗寒粗肋草多倍体的诱导方法的技术方案是 本发明一种抗寒粗肋草多倍体的诱导方法,包括如下步骤
步骤一、丛生芽诱导取无病虫害及健壮的粗肋草植株茎段或顶芽作为外植体,先用洗衣粉溶液擦洗,流水冲洗掉洗衣粉,在超净工作台上将外植体置于含有吐温-20的0. 1%升汞溶液中浸泡15 30min,无菌水冲洗,用灭菌滤纸吸干表面水分,插入丛芽诱导培养基内,置于温度为25士2°C,光照10 12h · d-1,光照强度为60 IOOymol m—Y1的培养室内诱导丛生芽;丛生芽诱导培养基为MS+2-IP1 ;3mg/L+NAA0. 2 0. 5mg/L+白糖25 35g/L+ 卡拉胶 6 7g/L,pH 值为 6 士 0. 5 ;
步骤二、秋水仙素处理将丛芽去顶连同下面的愈伤一起,置于含0. 2% 0. 3%秋水仙素的溶液中黑暗条件下振荡培养48 72h,无菌水冲洗,转入不含秋水仙素的恢复培养基上,置于25士2°C温室内,光照条件下恢复培养;恢复培养基为MS+2-IPl ;3mg/L+6-BA 2 %ig/L +白糖25 !35g/L+卡拉胶6 7g/L,pH值为6士0. 5 ;
步骤三、低温处理将恢复培养15-20d的处理材料,置于0°C的培养箱内继续培养 M 48 h。将处理材料重新转到25士2°C培养室内恢复培养;
步骤四、变异植株扩繁将外观与对照有变异的新长出的植株,转到继代培养基 MS+2-IP1 3mg/L+NAA0. 2 0. 5mg/L+ 白糖 25 35g/L+卡拉胶 6 7g/L,PH值为 6士0. 5 上进行扩繁;每30d继代一次,继代5次;
步骤五、多倍体鉴定选择外观表现稳定的变异株系,随机挑选5株进行根尖压片,观察染色体数目;在一个根尖上同时观察到5个以上分裂相染色体数目加倍,即可确定该变异株系为多倍体;
步骤六、生根移栽鉴定为多倍体的株系,长到3-4cm长时,从基部切下,转到生根诱导培养基上诱导生根;生根培养基为MS+2IP1 ^ig/L+IAAl ang/L+IBAO. 5 lmg/L+白糖25 35g/L+卡拉胶6 7g/L,PH值为6 士 0. 5 ;生根苗转到日光温室大棚炼苗7_10d ; 把生根苗取出,洗掉培养基后,移栽到泥炭及珍珠岩的基质上,置于温室大棚中,盖上薄膜和阴网,14 16d后掀开阴网和薄膜正常管理。步骤六中的所述基质中泥炭与珍珠岩的体积比为3:1。本发明是一种诱导抗寒性粗肋草多倍体植株的方法,具有突出的特点,其有益效果是其一,将变异植株经过5代繁殖后,再进行多倍体检测,可以有效降低嵌合体的比例; 其二,多倍体植株比对照茎干粗壮,矮化,株型更加美观;其三,多倍体植株具有抗寒性,能耐5°C低温不出现冻伤,降低了冬季温室大棚加温费用,经济效益大大提高。
具体实施例方式下面,介绍本发明的具体实施方式
。实施例一
步骤一、丛生芽诱导取无病虫害及健壮的粗肋草植株茎段或顶芽作为外植体,先用饱和洗衣粉溶液擦洗一遍,流水冲洗掉洗衣粉后,在超净工作台上将外植体置于含有几滴吐温-20的0. 1%升汞溶液中浸泡15-30min,无菌水冲洗4-5次,用灭菌滤纸吸干表面水分后, 插入丛芽诱导培养基内,置于温度为23°C,光照IOh · d-Ι,光照强度为60μπιΟ1 m^s"1的培养室内诱导丛生芽。丛生芽诱导培养基为MS+2-IPlmg/L+NAA0. 2mg/L+白糖25g/L+卡拉胶6g/L,pH5.5。步骤二、秋水仙素处理将丛芽去顶连同下面的愈伤一起,置于含0. 2%秋水仙素的溶液中黑暗条件下振荡培养48h,无菌水冲洗4-5次后,转入不含秋水仙素的恢复培养基上,置于23°C温室内,光照条件下恢复培养。恢复培养基为MS+2-IPlmg/L+6-BA 2mg/L + 白糖 25g/L+ 卡拉胶 6g/L,ρΗ5· 5。步骤三、低温处理将恢复培养15-20d的处理材料,置于0°C的培养箱内继续培养 24 h。将处理材料重新转到23°C培养室内恢复培养。步骤四、变异植株扩繁将外观与对照有变异的新长出的植株,转到继代培养基 MS+2-IPlmg/L+NAA0. 2mg/L+ 白糖 25g/L+ 卡拉胶 6g/L,pH5. 5 上进行扩繁。每 30d 继代一次,继代5次。步骤五、多倍体鉴定选择外观表现稳定的变异株系,随机挑选5株进行根尖压片,观察染色体数目。在一个根尖上同时观察到5个以上分裂相染色体数目加倍,即可确定该变异株系为多倍体。步骤六、生根移栽鉴定为多倍体的株系,长到3_4cm长时,从基部切下,转到生根诱导培养基上诱导生根。生根培养基为MS+2IPlmg/L+IAAlmg/L+IBA0. 5mg/L+白糖25g/ L+卡拉胶6g/L,pH5.5。生根苗转到日光温室大棚炼苗7-10d。把生根苗取出,洗掉培养基后,移栽到泥炭及珍珠岩基质上,置于温室大棚中,盖上薄膜和单层阴网,15d后掀开阴网和
薄膜正常管理。步骤六中的所述基质中泥炭与珍珠岩的体积比为3:1。实施例二
步骤一、丛生芽诱导取无病虫害及健壮的粗肋草植株茎段或顶芽作为外植体,先用饱和洗衣粉溶液擦洗一遍,流水冲洗掉洗衣粉后,在超净工作台上将外植体置于含有几滴吐温-20的0. 1%升汞溶液中浸泡15-30min,无菌水冲洗4-5次,用灭菌滤纸吸干表面水分后, 插入丛芽诱导培养基内,置于温度为25°C,光照Ilh · d-Ι,光照强度为SOymol m^s"1的培养室内诱导丛生芽。丛生芽诱导培养基为MS+2-IPang/L+NAA0. 3mg/L+白糖30g/L+卡拉胶 6. 5g/L, ρΗ5· 8。步骤二、秋水仙素处理将丛芽去顶连同下面的愈伤一起,置于含0. 3%秋水仙素的溶液中黑暗条件下振荡培养60h,无菌水冲洗4-5次后,转入不含秋水仙素的恢复培养基上,置于25°C温室内,光照条件下恢复培养。恢复培养基为MS+2-IPang/L+6-BA;3mg/L +白糖 30g/L+ 卡拉胶 6. 5g/L,ρΗ5· 8。步骤三、低温处理将恢复培养15-20d的处理材料,置于0°C的培养箱内继续培养 36 h。将处理材料重新转到25°C培养室内恢复培养。步骤四、变异植株扩繁将外观与对照有变异的新长出的植株,转到继代培养基 MS+2-IP2mg/L+NAA0. 4mg/L+ 白糖 30g/L+ 卡拉胶 6. 5g/L, pH5. 8 上进行扩繁。每 30d 继代一次,继代5次。步骤五、多倍体鉴定选择外观表现稳定的变异株系,随机挑选5株进行根尖压片,观察染色体数目。在一个根尖上同时观察到5个以上分裂相染色体数目加倍,即可确定该变异株系为多倍体。步骤六、生根移栽鉴定为多倍体的株系,长到3_4cm长时,从基部切下,转到生根诱导培养基上诱导生根。生根培养基为MS+2IP2mg/L+IAAang/L+IBAlmg/L+白糖30g/L+ 卡拉胶6.5g/L,pH5.8。生根苗转到日光温室大棚炼苗7-10d。把生根苗取出,洗掉培养基后,移栽到泥炭及珍珠岩基质上,置于温室大棚中,盖上薄膜和单层阴网,15d后掀开阴网和
薄膜正常管理。步骤六中的所述基质中泥炭与珍珠岩的体积比为3:1。实施例三
步骤一、丛生芽诱导取无病虫害及健壮的粗肋草植株茎段或顶芽作为外植体,先用饱和洗衣粉溶液擦洗一遍,流水冲洗掉洗衣粉后,在超净工作台上将外植体置于含有几滴吐温-20的0. 1%升汞溶液中浸泡15-30min,无菌水冲洗4-5次,用灭菌滤纸吸干表面水分后, 插入丛芽诱导培养基内,置于温度为27°C,光照12h *(1-1,光照强度为lOOymol m^s"1的培养室内诱导丛生芽。丛生芽诱导培养基为MS+2-IP;3mg/L+NAAO. 5mg/L+白糖35g/L+卡拉胶7g/L,pH6. 5。步骤二、秋水仙素处理将丛芽去顶连同下面的愈伤一起,置于含0. 3%秋水仙素的溶液中黑暗条件下振荡培养72h,无菌水冲洗4-5次后,转入不含秋水仙素的恢复培养基上,置于27°C温室内,光照条件下恢复培养。恢复培养基为MS+2-IP;3mg/L+6-BA%ig/L +白糖 30g/L+ 卡拉胶 7g/L,ρΗ6· 5。步骤三、低温处理将恢复培养15-20d的处理材料,置于0°C的培养箱内继续培养 48 h。将处理材料重新转到27°C培养室内恢复培养。步骤四、变异植株扩繁将外观与对照有变异的新长出的植株,转到继代培养基 MS+2-IP3mg/L+NAA0. 5mg/L+ 白糖 350g/L+ 卡拉胶 7g/L,pH6. 5 上进行扩繁。每 30d 继代一次,继代5次。
步骤五、多倍体鉴定选择外观表现稳定的变异株系,随机挑选5株进行根尖压片,观察染色体数目。在一个根尖上同时观察到5个以上分裂相染色体数目加倍,即可确定该变异株系为多倍体。步骤六、生根移栽鉴定为多倍体的株系,长到3-4cm长时,从基部切下,转到生根诱导培养基上诱导生根。生根培养基为MS+2IPang/L+IAAaiig/L+IBAlmg/L+白糖35g/L+卡拉胶7g/L,pH6.5。生根苗转到日光温室大棚炼苗7-10d。把生根苗取出,洗掉培养基后,移栽到泥炭及珍珠岩基质上,置于温室大棚中,盖上薄膜和单层阴网,15d后掀开阴网和薄膜
正常管理。步骤六中的所述基质中泥炭与珍珠岩的体积比为3:1。
权利要求
1.一种抗寒粗肋草多倍体的诱导方法,其特征在于,包括如下步骤步骤一、丛生芽诱导取无病虫害及健壮的粗肋草植株茎段或顶芽作为外植体,先用洗衣粉溶液擦洗,流水冲洗掉洗衣粉,在超净工作台上将外植体置于含有吐温-20的0. 1%升汞溶液中浸泡15 30min,无菌水冲洗,用灭菌滤纸吸干表面水分,插入丛芽诱导培养基内,置于温度为25士2°C,光照10 12h · d-1,光照强度为60 IOOymol m—Y1的培养室内诱导丛生芽;丛生芽诱导培养基为MS+2-IP1 ;3mg/L+NAA0. 2 0. 5mg/L+白糖25 35g/L+ 卡拉胶 6 7g/L,pH 值为 6 士 0. 5 ;步骤二、秋水仙素处理将丛芽去顶连同下面的愈伤一起,置于含0. 2% 0. 3%秋水仙素的溶液中黑暗条件下振荡培养48 72h,无菌水冲洗,转入不含秋水仙素的恢复培养基上,置于25士2°C温室内,光照条件下恢复培养;恢复培养基为MS+2-IPl ;3mg/L+6-BA 2 %ig/L +白糖25 !35g/L+卡拉胶6 7g/L,pH值为6士0. 5 ;步骤三、低温处理将恢复培养15-20d的处理材料,置于0°C的培养箱内继续培养 M 48 h ;将处理材料重新转到25 士 2°C培养室内恢复培养;步骤四、变异植株扩繁将外观与对照有变异的新长出的植株,转到继代培养基 MS+2-IP1 3mg/L+NAA0. 2 0. 5mg/L+ 白糖 25 35g/L+卡拉胶 6 7g/L,PH值为 6士0. 5 上进行扩繁;每30d继代一次,继代5次;步骤五、多倍体鉴定选择外观表现稳定的变异株系,随机挑选5株进行根尖压片,观察染色体数目;在一个根尖上同时观察到5个以上分裂相染色体数目加倍,即可确定该变异株系为多倍体;步骤六、生根移栽鉴定为多倍体的株系,长到3-4cm长时,从基部切下,转到生根诱导培养基上诱导生根;生根培养基为MS+2IP1 ^ig/L+IAAl ang/L+IBAO. 5 lmg/L+白糖25 35g/L+卡拉胶6 7g/L,PH值为6 士 0. 5 ;生根苗转到日光温室大棚炼苗7_10d ; 把生根苗取出,洗掉培养基后,移栽到泥炭及珍珠岩的基质上,置于温室大棚中,盖上薄膜和阴网,14 16d后掀开阴网和薄膜正常管理。
2.根据权利要求1所述的一种抗寒粗肋草多倍体的诱导方法,其特征在于步骤六中的所述基质中泥炭与珍珠岩的体积比为3:1。
全文摘要
一种抗寒粗肋草多倍体的诱导方法涉及粗肋草育种技术。包括如下步骤丛生芽诱导,秋水仙素处理,低温处理,变异植株扩繁,多倍体鉴定,生根移栽。将变异植株经过5代繁殖后,再进行多倍体检测,可以有效降低嵌合体的比例;多倍体植株比对照茎干粗壮,矮化,株型更加美观;多倍体植株具有抗寒性,能耐5℃低温不出现冻伤,降低了冬季温室大棚加温费用,经济效益大大提高。
文档编号A01H4/00GK102440193SQ201110315590
公开日2012年5月9日 申请日期2011年10月18日 优先权日2011年10月18日
发明者范俊强, 郑贵朝 申请人:东莞市生物技术研究所
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