测总酸含量含0.1，可溶性固形物含量含1.0，淀粉酶含量16.32U/mL，蛋 白酶含量220.12U/mL，脂肪酶含量19.32U/mL。经药理实验证明酵素原液稀释十倍后对正常 小鼠的细胞免疫、体液免疫均有显著的增强作用。
[0019] -、材料与方法
[0020] 1.1实验动物选用清洁级雌性昆明种小鼠，体重1?~22g，按体重随机分为四组： 对照及低、中、高剂量组，每组12只，试验组剂量分别为3.3ml/kg、6.6ml/kg、lOml/kg体重。 [00別]1.2试验方法
[0022] 1.2.1细胞免疫采用小鼠迟发型变态反应试验(DTH)、脾脏淋己细胞转化试验(MTT 法)及胸腺和脾脏脏器系数测定。
[0023] 1.2.2体液免疫采用脾脏抗体生成细胞检测（Jerne改良玻片法）、半数溶血值 化C50)测定。
[0024] 二、结果
[0025] 2.1酵素饮料对小鼠脏器系数的影响。见表1。
[0027]由表1可见，经口给予小鼠不同剂量的酵素30d，脾脏和胸腺的脏器系数经方差分 析，各剂量组间比较无显著性差异(P〉〇.05)。
[002引2.2酵素饮料对小鼠迟发型变态反应功能(DTH)的影响。见表2。
[0030] ~由表2可见，经口给予小鼠不同剂量
的酵素30d，中、高剂量组的足巧肿胀度与对照 组比较明显升高，且有显著性差异(P<〇. 05，P<0.0 l)
[0031] 2.3酵素饮料对ConA诱导的小鼠脾脏淋己细胞转化功能的影响。见表3。
[0033] 由表3可见，经口给予小鼠不同剂量的酵素30d，随着剂量的增加，小鼠的脾脏淋己 细胞增殖能力逐渐增强，其低、高剂量组的OD差值与对照组比较有显著性差异(P<0.05)。
[0034] 2.4酵素饮料对小鼠脾脏抗体生成细胞数的影响。见表4。
[0036] 由表4可见，经口给予小鼠不同剂量的酵素30d，其抗体生成细胞数中、高剂量组与 对照组比较明显升高，且有显著性差异(P<〇. 05，P<0.0 l)。
[0037] 2.5酵素饮料对小鼠半数溶血值化C50)的影响。见表5。
[0039] 由表5可见，经口给予小鼠不同剂量的酵素30d，中、高剂量组的半数溶血值与对照 组比较明显升高，且有显著性差异(P<〇.01)。
[0040] 实施例二:本发明开发出的一种酵素饮料，包括原材料、发酵剂，原材料包括食用 菌、藻类、蔬菜、水果，该酵素饮料还包括低気水，低気水与原材料质量比为5:1;发酵剂包括 酵母菌、乳酸菌，酵母菌使用的量为占接种原材料体积分数的8%，乳酸菌使用的量为占接 种原材料质量的2%;食用菌在原材料中的重量份数为10份;藻类在原材料中的重量份数为 15份，蔬菜包括胡萝h番茄、芦算、甘蓝，各成分在原材料中的重量份数为胡萝h20份、番茄5 份、甘蓝20份、芦算5份。
[0041] 所述食用菌可采用香茹、猴头茹、阿魏茹、灰树花、姬松茸、杏鲍茹和、草茹、平茹、 金针茹、灵芝和木耳任意一种或一种W上。
[0042] 藻类可采用褐藻、红藻、绿藻中任意一种或一种W上的组合。
[0043] 水果包括苹果、梨、山植、木瓜中的一种或一种W上，各成分在原材料中的重量份 数为苹果5份、梨20份、山植5份、红要5-20份、木瓜5份。
[0044] 所述低気水为质量浓度为lOppm。
[0045] 制备上述酵素饮料的方法包括如下步骤，（1)原材料预处理:选择新鲜的原材料， 洗净消毒后切断，加入原料重量5倍的低気水打浆；
[0046] (2)酵母菌发酵:将步骤(1)得到的待发酵的果蔬原汁糖度调至为10%-20%，按照 接种量为体积分数8%，将酵母培养液接入步骤(1)所得的果蔬浆中，发酵溫度为28-30°C， 时间3-5d;
[0047] (3)乳酸菌发酵:按照接种原材料量的2%，将乳酸菌也接入步骤(2)的果蔬汁中， 发酵溫度为28-30°C，时间3-5d;
[0048] (4)熟成:将发酵液过滤后置于密闭容器中20-25°C后熟1-2个月，微滤膜过滤即得 酵素原液。酵素原液可W直接口服，也可根据需要用低気水稀释适当倍数后服用。
[0049] 得到上述饮料，建议每天饮用10-30毫升，经检测总酸含量^ 0.1，可溶性固形物含 量> 1.0，淀粉酶含量17.24U/mL，蛋白酶含量210.23U/mL，脂肪酶含量20.02U/mL。经药理实 验证明酵素原液稀释十倍后对正常小鼠的细胞免疫、体液免疫均有显著的增强作用。
[0050] 实施例本发明开发出的一种酵素饮料，包括原材料、发酵剂，原材料包括食用 菌、藻类、蔬菜、水果，该酵素饮料还包括低気水，低気水与原材料质量比为8:1;发酵剂包括 酵母菌、乳酸菌，酵母菌使用的量为占接种原材料体积分数的6%，乳酸菌使用的量为占接 种原材料质量的1.5%;食用菌在原材料中的重量份数为10份;藻类在原材料中的重量份数 为15份，蔬菜包括胡萝h番茄、芦算、甘蓝，各成分在原材料中的重量份数为胡萝h20份、番 茄5份、甘蓝20份、芦邦5份。
[0051] 所述食用菌可采用香茹、猴头茹、阿魏茹、灰树花、姬松茸、杏鲍茹和、草茹、平茹、 金针茹、灵芝和木耳任意一种或一种W上。
[0052] 藻类可采用褐藻、红藻、绿藻中任意一种或一种W上的组合。
[0053] 水果包括苹果、梨、山植、木瓜中的一种或一种W上，各成分在原材料中的重量份 数为苹果5份、梨20份、山植5份、红要5-20份、木瓜5份。
[0054] 所述低気水为质量浓度为lOppm。
[0055] 制备上述酵素饮料的方法包括如下步骤，（1)原材料预处理:选择新鲜的原材料， 洗净消毒后切断，加入原料重量8倍的低気水打浆；
[0056] (2)酵母菌发酵:将步骤(1)得到的待发酵的果蔬原汁糖度调至为10%-20%，按照 接种量为体积分数6%，将酵母培养液接入步骤(1)所得的果蔬浆中，发酵溫度为28-30°C， 时间3-5d;
[0057] (3)乳酸菌发酵：按照接种原材料量的I.5%，将乳酸菌也接入步骤(2)的果蔬汁 中，发酵溫度为28-30°C，时间3-5d;
[0058] (4)熟成:将发酵液过滤后置于密闭容器中20-25°C后熟1-2个月，微滤膜过滤即得 酵素原液。酵素原液可W直接口服，也可根据需要用低気水稀释适当倍数后服用。
[0059] 得到上述饮料，建议每天饮用10-30毫升，经检测总酸含量含0.1，可溶性固形物含 量> 1.0，淀粉酶含量12.32U/mL，蛋白酶含量233.42U/mL，脂肪酶含量15.1 lU/mL。经药理实 验证明酵素原液稀释十倍后对正常小鼠的细胞免疫、体液免疫均有显著的增强作用。
[0060] 实施例四：本发明开发出的一种酵素饮料，包括原材料、发酵剂，原材料包括食用 菌、藻类、蔬菜、水果，该酵素饮料还包括低気水，低気水与原材料质量比为2:1;发酵剂包括 酵母菌、乳酸菌，酵母菌使用的量为占接种原材料体积分数的7%，乳酸菌使用的量为占接 种原材料质量的2.5%;食用菌在原材料中的重量份数为10份;藻类在原材料中的重量份数 为15份，蔬菜包括胡萝K番茄、芦算、甘蓝，各成分在原材料中的重量份数为胡萝h5份、番茄 20份、甘蓝5份、芦算20份。
[0061] 所述食用菌可采用香茹、猴头茹、阿魏茹、灰树花、姬松茸、杏鲍茹和、草茹、平茹、 金针茹、灵芝和木耳任意一种或一种W上。
[0062] 藻类可采用褐藻、红藻、绿藻中任意一种或一种W上的组合。
[0063] 水果包括苹果、梨、山植、木瓜中的一种或一种W上，各成分在原材料中的重量份 数为苹果20份、梨5份、山植20份、红要5份、木瓜20份。
[0064] 所述低気水为质量浓度为137ppm。
[0065] 制备上述酵素饮料的方法包括如下步骤，（1)原材料预处理:选择新鲜的原材料， 洗净消毒后切断，加入原料重量2倍的低気水打浆；
[0066] (2)酵母菌发酵:将步骤(1)得到的待发酵的果蔬原汁糖度调至为10%-20%，按照 接种量为体积分数7 %，将酵母培养液接入步骤(1)所得的果蔬浆中，发酵溫度为28-30°C， 时间3-5d;
[0067] (3)乳酸菌发酵：按照接种原材料量的2.5%，将乳酸菌也接入步骤(2)的果蔬汁 中，发酵溫度为28-30°C，时间3-5d;