主动脉夹 层动物模型的假腔长度的控制，为探讨Stanford A型主动脉夹层发病机制及新的治疗方法 提供了实验基础。
【附图说明】
[0017] 附图1为猪的升主动脉剖切图。
[0018] 附图2为猪的正常升主动脉管壁放大25倍的显微镜图。
[0019] 附图3为本发明中含有升主动脉夹层的猪的升主动脉管壁放大25倍的显微镜图。
[0020] 附图4为本发明中含有升主动脉夹层的猪的升主动脉管壁放大100倍的显微镜 图。
[0021] 附图5为本发明中含有升主动脉夹层的猪的升主动脉管壁放大400倍的显微镜 图。
[0022] 附图6为本发明中的血管壁分离器的主视结构示意图。
[0023] 附图1中，左图为猪的升主动脉正常图，右图为本发明中形成升主动脉假腔的猪 的升主动脉图。
[0024] 附图6中的编码分别为：1为连接段，2为第一分离段，3为第二分离段，4为弧形 面，α为第一夹角，β为第二夹角。
【具体实施方式】
[0025] 本发明不受下述实施例的限制，可根据本发明的技术方案与实际情况来确定具体 的实施方式。
[0026] 在发明中，为了便于描述，在实施例7中各部件的相对位置关系的描述均是根据 说明书附图6的布图方式来进行描述的，如：上、下、左、右等的位置关系是依据说明书附图 6的布图方向来确定的。
[0027] 下面结合实施例对本发明作进一步描述： 实施例1:该Stanford Α型主动脉夹层动物模型按下述制作方法得到：第一步，为动物 建立静脉通道，将动物麻醉并消毒后，对动物进行开胸，使动物的升主动脉暴露；第二步，于 动物的升主动脉根部远端处沿血管方向下侧壁钳，阻断部分升主动脉管腔，然后，纵行切开 动物的升主动脉管壁的外膜和中膜，动物的升主动脉管壁的中膜的切入深度为动物的升主 动脉管壁的中膜厚度的五分之二至二分之一；第三步，在动物的升主动脉管壁的中膜内找 至忡膜间隙，将中膜间隙进行钝性分离，使中膜间隙向四周扩大，从经过钝性分离后的中膜 间隙处继续自外而内切开动物的升主动脉管壁内未切开的中膜和内膜，使主动脉管腔与外 界相通，接着，剪除与中膜间隙内外对应的部分内膜以及与中膜间隙内外对应的中膜的部 分内侧面，动物的升主动脉管壁的中膜的内侧面和内膜的剪除面积小于钝性分离后的中膜 间隙的面积，动物的升主动脉管壁的中膜的剪除厚度为动物的升主动脉管壁的中膜厚度的 五分之二至二分之一，然后，缝合已切开的动物的升主动脉管壁的中膜外侧和外膜，使剪除 后的升主动脉管壁的中膜内侧面与剪除后的升主动脉管壁的内膜之间的部位形成与中膜 间隙相通的缺口，钝性分离后的中膜间隙形成主动脉假腔，血液依序通过升主动脉管腔和 缺口流入主动脉假腔后形成升主动脉夹层；第四步，给动物静脉注射肾上腺素，使动物的血 压骤然升高，升主动脉夹层向升主动脉管壁的远端撕裂、增高和膨大，在动物处于肺膨胀期 时，关闭动物的胸腔后得到Stanford A型主动脉夹层动物模型。静脉通道的建立、麻醉和消 毒均为现有公知技术。根据本实施例制作Stanford A型主动脉夹层动物模型，动物为猪， 个数为12只，猪由新疆医科大学第一附属医院实验动物研究科学部提供，雌雄不限，体重 30-50kg(平均46± 13. 2kg)，制作前至少在实验动物中心饲养一周，适应环境，注射疫苗。 标准家猪饲料喂养，自由摄食、进水，12小时光照/黑暗，室温23°C至25°C，所有实验动物已 经通过新疆医科大学第一附属医院伦理委员会的审批。根据本实施例所述的Stanford A 型主动脉夹层动物模型的制作方法，猪的升主动脉夹层的制作时间(制作时间/分钟)、制作 Stanford A型主动脉夹层动物模型的成功率(成功率/%)如表1所示。采用现有Stanford A型主动脉夹层动物模型的制作方法(现有方法)制作Stanford A型主动脉夹层动物模型， 动物为猪，个数为12只，猪由新疆医科大学第一附属医院实验动物研究科学部提供，雌雄 不限，体重30-50kg(平均46± 13. 2kg)，制作前至少在实验动物中心饲养一周，适应环境， 注射疫苗。标准家猪饲料喂养，自由摄食、进水，12小时光照/黑暗，室温23°C至25°C，所 有实验动物已经通过新疆医科大学第一附属医院伦理委员会的审批。根据现有Stanford A型主动脉夹层动物模型的制作方法，猪的升主动脉夹层的制作时间（制作时间/分钟)、制 作Stanford A型主动脉夹层动物模型的成功率(成功率/%)如表1所示。在附图1中，通 过将左图与右图进行对比可知，右图中的升主动脉具有主动脉假腔，说明根据本实施例所 述的Stanford A型主动脉夹层动物模型的制作方法能够在猪的升主动脉内形成主动脉假 腔；将猪的正常升主动脉管壁在显微镜下观察，放大25倍的显微镜图如图2所示；将根据 本实施例所述的Stanford A型主动脉夹层动物模型的制作方法得到的猪的升主动脉管壁 在显微镜下观察，放大25倍的显微镜图如图3所示，放大100倍的显微镜图如图4所示，放 大400倍的显微镜图如图5所示。通过附图2、附图3、附图4和附图5可以看出，附图3、附 图4和附图5均与附图2存在明显的区别，附图2中升主动脉管壁完好，而附图3和附图4 中的升主动脉管壁中，具有升主动脉夹层，并且升主动脉夹层撕裂于升主动脉管壁的中层， 附图5中的升主动脉管壁中，升主动脉管壁的中层弹力纤维断裂，炎性细胞浸泡，由此说明 根据本实施例所述的Stanford A型主动脉夹层动物模型的制作方法能够得到Stanford A 型主动脉夹层动物模型，为探讨Stanford A型主动脉夹层发病机制及新的治疗方法提供了 实验基础。
[0028] 实施例2:该Stanford A型主动脉夹层动物模型按下述制作方法得到：第一步，为 动物建立静脉通道，将动物麻醉并消毒后，对动物进行开胸，使动物的升主动脉暴露；第二 步，于动物的升主动脉根部远端处沿血管方向下侧壁钳，阻断部分升主动脉管腔，然后，纵 行切开动物的升主动脉管壁的外膜和中膜，动物的升主动脉管壁的中膜的切入深度为动物 的升主动脉管壁的中膜厚度的五分之二或二分之一；第三步，在动物的升主动脉管壁的中 膜内找到中膜间隙，将中膜间隙进行钝性分离，使中膜间隙向四周扩大，从经过钝性分离后 的中膜间隙处继续自外而内切开动物的升主动脉管壁内未切开的中膜和内膜，使主动脉管 腔与外界相通，接着，剪除与中膜间隙内外对应的部分内膜以及与中膜间隙内外对应的中 膜的部分内侧面，动物的升主动脉管壁的中膜的内侧面和内膜的剪除面积小于钝性分离后 的中膜间隙的面积，动物的升主动脉管壁的中膜的剪除厚度为动物的升主动脉管壁的中膜 厚度的五分之二或二分之一，然后，缝合已切开的动物的升主动脉管壁的中膜外侧和外膜， 使剪除后的升主动脉管壁的中膜内侧面与剪除后的升主动脉管壁的内膜之间的部位形成 与中膜间隙相通的缺口，钝性分离后的中膜间隙形成主动脉假腔，血液依序通过升主动脉 管腔和缺口流入主动脉假腔后形成升主动脉夹层；第四步，给动物静脉注射肾上腺素，使动 物的血压骤然升高，升主动脉夹层向升主动脉管壁的远端撕裂、增高和膨大，在动物处于肺 膨胀期时，关闭动物的胸腔后得到Stanford A型主动脉夹层动物模型。
[0029] 实施例3:该Stanford A型主动脉夹层动物模型按下述制作方法得到：第一步，为 动物建立静脉通道，将动物麻醉并消毒后，对动物进行开胸，使动物的升主动脉暴露；第二 步，于动物的升主动脉根部远端处沿血管方向下侧壁钳，阻断部分升主动脉管腔，然后，纵 行切开动物的升主动脉管壁的外膜和中膜，动物的升主动脉管壁的中膜的切入深度为动物 的升主动脉管壁的中膜厚度的五分之二；第三步，在动物的升主动脉管壁的中膜内找到中 膜间隙，将中膜间隙进行钝性分离，使中膜间隙向四周扩大，从经过钝性分离后的中膜间隙 处继续自外而内切开动物的升主动脉管壁内未切开的中膜和内膜，使主动脉管腔与外界相 通，接着，剪除与中膜间隙内外对应的部分内膜以及与中膜间隙内外对应的中膜的部分内 侧面，动物的升主