海洋微生物来源化合物p-3在制备抗衰老药物中的应用

文档序号:10560185阅读:478来源:国知局
海洋微生物来源化合物p-3在制备抗衰老药物中的应用
【专利摘要】本发明公开了海洋微生物来源化合物P?3 在制备抗衰老药物中的应用。该化合物可以通过增加抗衰老基因Sirt 1的表达,提高细胞端粒酶活性,可显著降低细胞的老化程度,对血管紧张素Ⅱ诱导的细胞衰老具有明显的保护作用。本发明 P?3在制备抗衰老损伤及相关性疾病药物中的应用发掘了 P?3 新的医疗用途,开拓了一个新的应用领域,且 P?3安全无毒,药理作用强,有很好的药用前景。
【专利说明】
海洋微生物来源化合物P-3在制备抗衰老药物中的应用
技术领域
[0001 ]本发明设及海洋微生物来源化合物P-3的新应用。
【背景技术】
[0002] 海洋微生物来源化合物P-3是南海红树林真菌Xylaria SP . 2508的代谢产物 xyloke化1 A的合成衍生物,其化学结构如下:
[0003]
[0004] 已发现该化合物通过调苄基因MMPs而有促血管新生的活性,而血管新生在缺血性 疾病,如冠屯、病,缺血性脑卒中的治疗中具有重要意义,故该化合物可被用作缺血性疾病治 疗药物的活性成分。
[0005] 老龄化问题被认为是21世纪Ξ大世界性社会问题之一,而衰老和老年病的发生是 相生相伴的,二者具有相同的病理生理过程,如神经内分泌素乱、糖类及脂类代谢素乱、免 疫系统损伤等。随着年龄的增大,一些老年性疾病的发生率和患病率均明显增加,如冠屯、 病、糖尿病、动脉粥样硬化等。因此,寻找一种可W有效的延缓细胞衰老,并预防和治疗衰老 相关性疾病的药物对我国的医疗发展具有重要意义。

【发明内容】

[0006] 本发明的目的在于提供海洋微生物来源化合物P-3在制备抗衰老药物中的应用。
[0007] 为了实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
[000引发明人经过长期的研究发现P-3可增加细胞抗衰老基因 Sbt 1表达,提高细胞端 粒酶活性,显著降低细胞的老化程度,对血管紧张素 Π 诱导的细胞老化具有明显的保护作 用,可W用于制备抗衰老及衰老相关疾病的药物。特别是W肾素血管紧张素醒固酬系统 (RAAS)激活和(或)端粒酶/SIRT1受损为特征的衰老损伤及相关性疾病。
[0009]其中,可W将P-3制备成药物领域可W接受的各种剂型,如片剂、胶囊等等。
[0010]与现有的P-3的应用相比,本发明具有如下有益效果:
[0011] (1)本发明的化合物P-3具有良好的抗细胞衰老作用。
[0012] (2)本发明的化合物P-3安全无毒,药理作用强,预示着很好的药用前景。
【具体实施方式】
[0013] 下面将描述本发明的一个实施例,但本
【发明内容】
并不局限于此。
[0014] 实施例1P-3抗细胞衰老的研究 [001引(一)材料与方法
[0016] 1.药物:P-3,白色粉末。溶于DMS0,胆存浓度1 OOmmo 1 /L,保存于4°C备用。
[0017] 2.细胞培养及模型制备:
[001引采用hEPC(人外周血来源的内皮祖细胞)作为体外研究的细胞,90%EGM-2化0NZA) +10%胎牛血清(GIBC0)于37°C5%C02培养箱解育,待细胞生长至7天可用于实验。
[0019]使用血管紧张素 II诱导细胞老化模型:把生长状态良好的hEP巧巾于6孔板,待其生 长至7天时将其正常培养基换成无血清培养基,加入lOOnM血管紧张素 II作用24小时后进行 实验指标的检测。
[0020] 3、细胞活性检测--CCK-骑去
[0021] 于96孔板接种10化L hEPC细胞悬液,每组使用6个复孔,放入37°C溫箱培养,24小 时后加入不同浓度P-3预刺激1小时,再加入lOOnM血管紧张素 II处理24小时后,每孔中加入 1化L CCK-8溶液,在37°C溫箱中避光解育4小时后,于酶标仪测定在45化m波长检测各组吸 光度,将各组吸光度与空白对照组相比较,从而计算各组细胞的存活比例。
[0022] 4、SA-i3-半乳糖巧酶染色检测细胞的衰老程度
[0023] 在6孔板中培养hEPC7天,加入lOOnM血管紧张素11,24小时后去除培养基,用?85洗 2遍,每孔加入1血固定液室溫固定,15min后PBS洗2遍,每孔加入按照SA-0-gal染色试剂盒 配制的ImL染色混合液,在37°C、无 C〇2条件下解育过夜,用巧光显微镜拍照计数细胞染色 率,被染色的细胞代表衰老细胞。
[0024] 5、端粒酶活性检测
[0025] 于6孔板培养hEPC7天,P-3预解1小时后,加入lOOnM血管紧张素 II处理2地,离屯、收 集细胞于离屯、管中,每管加入2(Κ)化裂解液重悬,冰上静置30min后离屯、取上清,同时取阴性 对照85 °C加热lOmin。进行TRAP反应,每个PCR管中加入25化反应混合液、化L待测样品及对 照样品,进行PCR扩增。对应每个样品加入20化变性试剂、5化扩增产物室溫解育lOmin,于预 包被的96孔板中每孔加入22扣L杂交缓冲液、100化混合液37°C摇床解育化,去除缓冲液并 用Washing buffer洗Ξ次,每孔加入10化L甲基联苯胺溶液染色,20min后每孔加入10化L终 止液。用Microplate化LISA) reader读取450nm处的吸光值。
[00%] 6.抗衰老基因 SIRT1蛋白的表达检测
[0027] SIRT1蛋白的表达采用western blot的方法检测,于6孔板培养hEPC7天,P-3预解1 小时,加入lOOnM血管紧张素 II处理24h后,用冰PBS洗细胞Ξ次,加入含有蛋白酶抑制剂 (Cocktai 1)的裂解液RIPA 60~80ul;在冰上裂解细胞5~lOmin。用干净细胞刮刮下细胞及 细胞裂解液,12000r/min 4°C离屯、12min,弃沉淀,小屯、吸取上清蛋白液,-80°C保存。用BCA 法进行定量,按标准曲线计算出样品浓度,W相同的上样总蛋白量将样品与上样缓冲液W 4:1的比例混合,95°C溫浴5min使蛋白在上样缓冲液的作用下变性。配置聚丙締酷胺(SDS- PAGE)凝胶,分离胶8%,浓缩胶5%。使用微量上样器将样品加入浓缩胶的各个跑道中,恒压 80V电泳90min;将分离胶与滤纸、PVDF膜用电转夹包裹好后一起置入电转槽中,在电转缓冲 液中恒流200mA电转90min。电转结束后取出PVDF膜,在室溫用含有5%脱脂奶粉的TBST封闭 化;随后加入相应的Sbtl抗体,Wactin作为内参,4°C冰箱过夜。TBST洗膜5min X 3次,加入 相应的二抗化RP标记,1:1000,用抗体稀释液稀释)后室溫摇床上解育1-化;TBST洗膜lOmin X 3次,在暗室中将PVD刊莫与E化发光液(A液:B液,1:1)混合,于X光胶片上曝光,洗片机冲洗 胶片,随后使用Image J 1.39U进行灰度分析。WSbtl与内参actin的灰度比值代表Sbtl 的表达水平,并把control组的比值设为1,其它组与之相比较分析Sbtl的表达高低。
[00巧]7、统计分析
[0029] 本实验为多组定量数据间两两比较,且符合正态性及方差齐性的要求,因此选用 方差分析(One-way AN0VA)作为统计分析的方法。使用SPSS软件执行统计分析操作。
[0030] (二)实验结果
[0031] 1.不同剂量P-3对Angll诱导的hEPC损伤的保护作用如表1。
[0032] 表1不同剂量P-3处理对Ang II诱导的hEPC活性的影响
[0033]
[0035] *经单因素方差分析得到Angll组与空白对照组的细胞活性具有统计学差异(P< 0.05);
[0036] #经单因素方差分析得到P-3 0.2ιχΜ处理组与Angn组的细胞活性具有统计学差异 (P<0.05)
[0037] ##经单因素方差分析得到P-3 1μΜ/5μΜ/25μΜ处理组与Angn组的细胞活性具有统 计学差异(P<〇.〇l)
[0038] 上述实验结果说明P-3具有保护hEPC血管紧张素损伤的作用,增加细胞生存率,且 呈现剂量依赖(0.04-25μΜ)效应。
[0039] 2.Ρ-3的SA-β-半乳糖巧酶染色研究如表2。
[0040] 表2不同剂量Ρ-3对Angll诱导hEPC衰老的保护能力
[0041]
[0042] **经单因素方差分析得到Angn组与空白对照组的细胞衰老程度具有统计学差异 (P<0.01);
[0043] ##经单因素方差分析得到P-3 ΙμΜ/ΙΟμΜ处理组与Angll组的细胞衰老程度具有统 计学差异(P<〇.〇l);
[0044] 上述实验结果说明hEPC细胞体外Angll诱导衰老模型构建成功,衰老比例约为空 白对照组的360 % ;同时,P-3具有抗hEPC衰老的作用,且呈现剂量依赖(0.1 -1 ΟμΜ)效应。
[0045] 3.Ρ-3 ΙμΜ处理对Angll诱导的hEPC的端粒酶活性的作用如表3。
[0046] 表3P-3 ΙμΜ处理对Angll诱导的hEPC的端粒酶活性的影响
[0047]
[0049] **经单因素方差分析得到Angn组与空白对照组的细胞端粒酶活性具有统计学差 异(P<〇.〇l);
[0050] #经单因素方差分析得到P-3 ΙμΜ处理组与Angn组的细胞端粒酶活性具有统计学 差异(P<0.05)
[0051] 上述实验结果说明P-3 ΙμΜ具有显著提高hEPC端粒酶活性的作用。
[0化2] 4.P-3 ΙμΜ处理对SIRT1表达的作用如表4。
[0053] 表4Ρ-3 ΙμΜ处理对hEPC中SIRT1表达的影响
[0化4]
[0055] *经单因素方差分析得到Angn组与空白对照组的Sbtl表达具有统计学差异(P< 0.05);
[0化6] ##经单因素方差分析得到P-3 ΙμΜ处理组与Angll组的Sbtl表达具有统计学差异 (P<0.01)
[0057]上述实验结果说明P-3 lliM具有显著提高hEPC中抗衰老基因 Sbtl表达的作用。 [0化引 (Ξ)讨论
[0059] 现今的研究认为,衰老源于细胞活性的降低,进而导致细胞、组织和器官的衰老, 因此衰老即是细胞的衰老。随着衰老机制的研究进入分子时代,各种导致衰老的原因包括 自由基理论、热量限制、端粒酶学说W及表观遗传学等研究领域都有了新的发展。在屯、血管 疾病,如高血压、屯、血管重构,屯、衰等的发病过程中,肾素-血管紧张素-醒固酬系统(RAAS) 的激活起着重要的作用,其中Angll是RAAS系统中关键的活性分子,Angll可通过激活ATI受 体,上调NADPH氧化酶的蛋白表达,诱导过多的自由基生成导致细胞衰老;也可通过下调抗 衰老基因 SIRT,降低线粒体的数量等多种方式诱导细胞衰老,在WRAAS系统激活为特征的 衰老损伤及相关性疾病中发挥着重要的作用。因此,在本实施例1中,我们WAngll诱导细 胞衰老为模型具有一定的代表性。
[0060] 端粒酶和β-半乳糖巧酶活性检测是目前最公认的细胞衰老检测手段。端粒是真核 染色体末端像帽子一样的特殊结构,可稳定染色体、防止染色体末端融合、保护染色体结构 基因及调节正常细胞生长。端粒酶则是帮助端粒合成的分子,使端粒的长度和结构得W稳 定,从而保护染色体。细胞随着端粒的变短而衰老,而当端粒酶的活性足W维护端粒的长度 时,细胞将会延迟衰老。0-半乳糖巧酶在人体大部分细胞上均有表达,且随着衰老的进程, 表达逐渐增加,因此β-半乳糖巧酶染色是常用的检测细胞衰老的指标。我们的研究结果发 现Ρ-3能够明显提高细胞生存率,增加端粒酶活性,减少β-半乳糖巧酶的细胞染色率,具有 良好的抗细胞衰老的作用。
[0061] SIRT1又称沉默信息调节因子相关酶1,是一种依赖于烟酷胺嚷岭二核巧酸的去乙 酷化酶,主要分布于细胞核内。现今的研究认为,SIRT1是一种长寿基因,是当今衰老领域的 分子学研究热点。当细胞发生损伤时,SIRT1可W通过去乙酷化ρ53,F0X0和Ku等蛋白W减轻 细胞调亡的趋势;除此之外,SIRT1可W通过控制新陈代谢,热量消耗,脂肪存储,维持氧化 应激下线粒体的正常功能W及抑制炎症等多个方面来延缓衰老。研究表明抑制SIRT1表达 会促进细胞衰老,敲除SIRT1后细胞死亡率明显增多;而激活其同源体的表达可W延长酵母 的存活期。在本研究发明中,我们发现P-3能够显著提高细胞中Sbtl的表达,对抗Angll诱 导的细胞衰老。
[0062]总之,本发明研究通过检测细胞存活率,β-半乳糖巧酶染色,端粒酶活性和抗衰老 基因 Sbtl的表达证明了海洋微生物来源的化合物Ρ-3具有良好的抗细胞衰老作用。
【主权项】
1. 海洋微生物来源化合物P-3在制备抗衰老药物中的应用。2. 如权利要求1所述的应用,其特征在于是以肾素血管紧张素醛固酮系统激活或端粒 酶/SIRTl受损为特征的衰老损伤及相关性疾病。
【文档编号】A61P39/06GK105920580SQ201610281054
【公开日】2016年9月7日
【申请日】2016年4月28日
【发明人】杜艳华, 庞冀燕, 王冠蕾
【申请人】中山大学
网友询问留言 已有0条留言
  • 还没有人留言评论。精彩留言会获得点赞!
1