一种用于次生代谢物含量高的植物组织的dna提取方法

文档序号:9300514阅读:1187来源:国知局
一种用于次生代谢物含量高的植物组织的dna提取方法
【技术领域】
[0001] 本发明涉及生物技术领域,具体地说,涉及一种用于次生代谢物含量高的植物组 织的DNA提取方法。
【背景技术】
[0002] 在二代和三代测序技术中,获得纯度好、完整性高的基因组DNA是文库构建顺利 完成并获得真实、完整的基因组信息的前提和关键。植物组织的特点是含有多种复杂的次 生代谢物,特别是多糖多酚类化合物,不仅难去除,还会介导基因组DNA的降解,并对后续 酶反应有一定的抑制作用,次生代谢物含量偏高,基因组DNA降解的风险也会加大。目前常 用的植物组织DNA提取方法,如常规CTAB (Hexadecyltrimethyl ammonium bromide,十六烧 基三甲基溴化铵)法、SDS (Sodium dodecyl sulfate,十二烷基磺酸钠)法、试剂盒(过柱 法和磁珠法),不能保证猕猴桃、侧柏等多糖或其它杂质含量高的基因组DNA的纯度,这些 方法提取的基因组DNA在二代和三代测序技术中会造成文库构建失败或信息分析异常。

【发明内容】

[0003] 为了解决现有技术中存在的问题,本发明的目的是提供一种用于次生代谢物含量 高的植物组织的DNA提取方法。
[0004] 为了实现本发明目的,本发明的技术方案如下:
[0005] -种用于次生代谢物含量高的植物组织的DNA提取方法,所述方法在进行细 胞裂解前,利用干扰物清除液对植物组织进行处理;所述干扰物清除液的组分为:l〇〇mM Tris-HCl(pH8.0),5mM EDTA,5%甘油,10%PEG8000,1% β-巯基乙醇。
[0006] 进一步地,所述方法包括以下步骤:
[0007] (一)将样品在预冷的研钵中充分研磨成粉末状;
[0008] (二)加入干扰物清除液清洗,振荡离心弃上清液;
[0009] (三)加入预热的CTAB裂解液中混勾,使样品悬浮,温浴30~60min ;取出冷却至 室温,离心取上清;
[0010](四)经氯仿-异戊醇抽提离心取上清;
[0011] (五)加入无水乙醇进行DNA沉淀;
[0012] (六)经乙醇清洗后离心得到DNA沉淀,干燥后加入含Rnase A的超纯水溶解DNA 沉淀,消化RNA。
[0013] 其中,所述步骤(三)加入65 °C预热的CTAB裂解液中混勾,使样品悬浮,65 °C温浴 30~60min ;取出冷却至室温,离心取上清。
[0014] 其中,所述步骤(二)加入干扰物清除液,振荡离心弃上清液,重复清洗至上清液 不粘桐。
[0015] 其中,所述步骤(四)中氯仿与异戊醇的体积比为24:1。
[0016] 其中,所述步骤(五)加入相对于上清液0· 35倍体积的无水乙醇进行DNA沉淀。
[0017] 更进一步地,所述方法包括以下步骤:
[0018] 1)将组织样品移至预冷的研钵中,用预冷的研杵将组织充分研磨成粉末状;然后 用液氮预冷的小勺将样品粉末转移至无菌离心管中;
[0019] 2)立即加入干扰物清除液,振荡离心弃上清液,重复清洗至上清液基本不粘稠;
[0020] 3)加入65°C预热的CTAB裂解液,剧烈震动混勾,使样品完全悬浮,65°C温浴30min 至60min ;取出后,冷却至室温,室温离心取上清液至新无菌离心管中;
[0021] 4)加入氯仿-异戊醇,缓慢上下颠倒多次,室温离心;
[0022] 5)吸取上清液至新无菌离心管,加入等体积氯仿-异戊醇,上下颠倒多次,室温离 心;
[0023] 6)吸取上清液至新无菌离心管中,加入无水乙醇,迅速混匀,4°C放置过夜,室温离 心,弃上清,瞬时离心,弃上清;
[0024] 7)加入70%乙醇清洗沉淀两次,离心弃上清;瞬时离心,吸弃残留液体,干燥至 DNA沉淀呈半透明状;
[0025] 8)根据DNA沉淀量加入含20 μ g/L Rnase A的超纯水溶解DNA沉淀,消化RNA。
[0026] 作为优选,所述方法包括以下步骤:
[0027] 1)将IOOmg植物组织材料移至预冷的研钵中,用预冷的研杵将组织充分研磨成粉 末状;而后用液氮预冷的小勺将样品粉末转移至2. OmL无菌离心管中;
[0028] 2)立即加入ImL干扰物清除液,振荡lmin,12000g离心10min,弃上清液,重复清 洗至上清液基本不粘稠;
[0029] 3)加入ImL 65°C预热的CTAB裂解液,剧烈震动混匀,使样品完全悬浮,65°C温 浴30min至60min ;取出后,冷却至室温,8000rpm室温离心5min,取800 μ L上清液至新的 2. OmL无菌离心管中;
[0030] 4)加入800 μ L氯仿-异戊醇,缓慢上下颠倒100次,上下为1次,12000rpm室温 离心20min ;
[0031] 5)吸取600 μ L上清液至新的2. OmL无菌离心管,加入等体积氯仿-异戊醇,上下 颠倒100次,12000rpm室温离心20min ;
[0032] 6)吸取400 μ L上清液至新的I. 5mL无菌离心管中,加入0. 35倍体积无水乙醇,迅 速混勾,4°C放置过夜,12000rpm室温离心10min,弃上清,瞬时离心,弃上清;
[0033] 7) ImL 70%乙醇清洗沉淀两次,7500rpm离心5min,弃上清;瞬时离心,吸弃残留 液体,37°C或室温干燥5min,至DNA沉淀呈半透明状;
[0034] 8)根据DNA沉淀量加入适量含20 μ g/L Rnase A的超纯水溶解DNA沉淀,37 °C消 化 30min。
[0035] 本发明还提供了一种用于次生代谢物含量高的植物组织DNA提取的干扰物清 除液,所述干扰物清除液的组分为=IOOmM Tris-HCl (pH8.0),5mM EDTA,5 %甘油,10 % PEG8000,1% β-巯基乙醇。
[0036] 本发明的有益效果在于:
[0037] 本发明利用干扰物清除液对粉碎的植物组织进行漂洗,并结合0. 35倍体积无水 乙醇4°C过夜沉淀DNA,有效除去因化学性质和DNA相似而难以去除的多糖类杂质,大幅提 高了所提基因组DNA的纯度。
【附图说明】
[0038] 图1为本发明实施例2所提基因组DNA进行1. 0%琼脂糖凝胶电泳检测的结果。
[0039] 图2为本发明实施例3所提基因组DNA进行1. 0%琼脂糖凝胶电泳检测的结果。
[0040] 图3为本发明对比例1所提基因组DNA进行1. 0%琼脂糖凝胶电泳检测的结果。
[0041] 图4为本发明对比例2所提基因组DNA进行1. 0%琼脂糖凝胶电泳检测的结果。
【具体实施方式】
[0042] 以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。
[0043] 实施例1用于次生代谢物含量高的植物组织DNA提取的干扰物清除液
[0045] 实施例2侧柏叶基因组DNA提取(含有挥发油、鞣质、树脂等复杂次生代谢物)
[0046] 1.将IOOmg植物组织材料移至预冷的研钵中,用预冷的研杵将组织充分研磨成粉 末状;而后用液氮预冷的小勺将样品粉末转移至2. OmL无菌离心管中;
[0047] 2.立即加入ImL干扰物清除液,振荡lmin,12000g离心10min,弃上清液,重复清 洗至上清液基本不粘稠;
[0048] 3.加入ImL 65°C预热的CTAB裂解液,剧烈震动混匀,使样品完全悬浮,65°C温浴 30min至60min (温浴期间摇匀2~3次,保证细胞充分裂解);取出后,冷却至室温,8000rpm 室温离心5min,取800 μ L上清液至新的2. OmL无菌离心管中;
[0049] 4.加入800 yL氯仿-异戊醇(24:1),缓慢上下颠倒100次(上下为1次), 12000rpm 室温离心 20min ;
[0050] 5.吸取600
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