动脉管壁的中膜的内侧面和内膜的剪除面积小于钝性分离后的中膜间隙 的面积，动物的升主动脉管壁的中膜的剪除厚度为动物的升主动脉管壁的中膜厚度的五分 之二，然后，缝合已切开的动物的升主动脉管壁的中膜外侧和外膜，使剪除后的升主动脉管 壁的中膜内侧面与剪除后的升主动脉管壁的内膜之间的部位形成与中膜间隙相通的缺口， 钝性分离后的中膜间隙形成主动脉假腔，血液依序通过升主动脉管腔和缺口流入主动脉假 腔后形成升主动脉夹层；第四步，给动物静脉注射肾上腺素，使动物的血压骤然升高，升主 动脉夹层向升主动脉管壁的远端撕裂、增高和膨大，在动物处于肺膨胀期时，关闭动物的胸 腔后得到Stanford A型主动脉夹层动物模型。根据本实施例制作Stanford A型主动脉 夹层动物模型，动物为猪，个数为12只，猪由新疆医科大学第一附属医院实验动物研究科 学部提供，雌雄不限，体重30-50kg (平均46± 13. 2kg)，制作前至少在实验动物中心饲养一 周，适应环境，注射疫苗。标准家猪饲料喂养，自由摄食、进水，12小时光照/黑暗，室温23°C 至25°C，所有实验动物已经通过新疆医科大学第一附属医院伦理委员会的审批。根据本实 施例所述的Stanford A型主动脉夹层动物模型的制作方法，猪的升主动脉夹层的制作时间 (制作时间/分钟)、制作Stanford A型主动脉夹层动物模型的成功率(成功率/%)如表1所 不。
[0030] 实施例4:该Stanford A型主动脉夹层动物模型按下述制作方法得到：第一步，为 动物建立静脉通道，将动物麻醉并消毒后，对动物进行开胸，使动物的升主动脉暴露；第二 步，于动物的升主动脉根部远端处沿血管方向下侧壁钳，阻断部分升主动脉管腔，然后，纵 行切开动物的升主动脉管壁的外膜和中膜，动物的升主动脉管壁的中膜的切入深度为动物 的升主动脉管壁的中膜厚度的二分之一；第三步，在动物的升主动脉管壁的中膜内找到中 膜间隙，将中膜间隙进行钝性分离，使中膜间隙向四周扩大，从经过钝性分离后的中膜间隙 处继续自外而内切开动物的升主动脉管壁内未切开的中膜和内膜，使主动脉管腔与外界相 通，接着，剪除与中膜间隙内外对应的部分内膜以及与中膜间隙内外对应的中膜的部分内 侧面，动物的升主动脉管壁的中膜的内侧面和内膜的剪除面积小于钝性分离后的中膜间隙 的面积，动物的升主动脉管壁的中膜的剪除厚度为动物的升主动脉管壁的中膜厚度的二分 之一，然后，缝合已切开的动物的升主动脉管壁的中膜外侧和外膜，使剪除后的升主动脉管 壁的中膜内侧面与剪除后的升主动脉管壁的内膜之间的部位形成与中膜间隙相通的缺口， 钝性分离后的中膜间隙形成主动脉假腔，血液依序通过升主动脉管腔和缺口流入主动脉假 腔后形成升主动脉夹层；第四步，给动物静脉注射肾上腺素，使动物的血压骤然升高，升主 动脉夹层向升主动脉管壁的远端撕裂、增高和膨大，在动物处于肺膨胀期时，关闭动物的胸 腔后得到Stanford A型主动脉夹层动物模型。根据本实施例制作Stanford A型主动脉 夹层动物模型，动物为猪，个数为12只，猪由新疆医科大学第一附属医院实验动物研究科 学部提供，雌雄不限，体重30-50kg (平均46± 13. 2kg)，制作前至少在实验动物中心饲养一 周，适应环境，注射疫苗。标准家猪饲料喂养，自由摄食、进水，12小时光照/黑暗，室温23°C 至25°C，所有实验动物已经通过新疆医科大学第一附属医院伦理委员会的审批。根据本实 施例所述的Stanford A型主动脉夹层动物模型的制作方法，猪的升主动脉夹层的制作时间 (制作时间/分钟)、制作Stanford A型主动脉夹层动物模型的成功率(成功率/%)如表1所 不。
[0031] 实施例5:与上述实施例的不同之处在于，第二步中，纵行切开的长度为2厘米至 3厘米；第三步中，中膜间隙向四周扩大2厘米至3厘米，动物的升主动脉管壁的中膜的内 侧面和内膜的剪除面积均为0. 5平方厘米至1. 0平方厘米；第四步中，肾上腺素的注射量为 lmg/Kg至2mg/Kg。纵行切开的长度、中膜间隙的扩大范围、动物的升主动脉管壁的中膜的 内侧面和内膜的剪除面积大小和肾上腺素的注射量的选择能够有效控制主动脉假腔的长 度，为探讨Stanford A型主动脉夹层发病机制及新的治疗方法提供了实验基础。
[0032] 实施例6:与上述实施例的不同之处在于，第二步中，于动物的升主动脉根部远端 1厘米至1. 5厘米处沿血管方向下侧壁钳，阻断二分之一至三分之二的升主动脉管腔。
[0033] 实施例7:该Stanford A型主动脉夹层动物模型的制作方法，按下述步骤进行：第 一步，为动物建立静脉通道，将动物麻醉并消毒后，对动物进行开胸，使动物的升主动脉暴 露；第二步，于动物的升主动脉根部远端处沿血管方向下侧壁钳，阻断部分升主动脉管腔， 然后，纵行切开动物的升主动脉管壁的外膜和中膜，动物的升主动脉管壁的中膜的切入深 度为动物的升主动脉管壁的中膜厚度的五分之二至二分之一；第三步，在动物的升主动脉 管壁的中膜内找到中膜间隙，采用血管壁分离器对中膜间隙进行钝性分离，使中膜间隙向 四周扩大，从经过钝性分离后的中膜间隙处继续自外而内切开动物的升主动脉管壁内未切 开的中膜和内膜，使主动脉管腔与外界相通，接着，剪除与中膜间隙内外对应的部分内膜以 及与中膜间隙内外对应的中膜的部分内侧面，动物的升主动脉管壁的中膜的内侧面和内膜 的剪除面积小于钝性分离后的中膜间隙的面积，动物的升主动脉管壁的中膜的剪除厚度为 动物的升主动脉管壁的中膜厚度的五分之二至二分之一，然后，缝合已切开的动物的升主 动脉管壁的中膜外侧和外膜，使剪除后的升主动脉管壁的中膜内侧面与剪除后的升主动脉 管壁的内膜之间的部位形成与中膜间隙相通的缺口，钝性分离后的中膜间隙形成主动脉假 腔，血液依序通过升主动脉管腔和缺口流入主动脉假腔后形成升主动脉夹层；第四步，给动 物静脉注射肾上腺素，使动物的血压骤然升高，升主动脉夹层向升主动脉管壁的远端撕裂、 增高和膨大，在动物处于肺膨胀期时，关闭动物的胸腔后得到Stanford A型主动脉夹层动 物模型。在采用血管壁分离器对中膜间隙进行钝性分离时，能够便捷分离中膜间隙，一方 面，能够提高制作Stanford A型主动脉夹层动物模型的成功率，另一方面，能够缩短升主动 脉夹层的时间。根据本实施例所述的Stanford A型主动脉夹层动物模型的制作方法制作 Stanford A型主动脉夹层动物模型，动物为猪，个数为12只，猪由新疆医科大学第一附属 医院实验动物研究科学部提供，雌雄不限，体重30-50kg (平均46 ± 13. 2kg)，制作前至少在 实验动物中心饲养一周，适应环境，注射疫苗。标准家猪饲料喂养，自由摄食、进水，12小时 光照/黑暗，室温23°C至25°C，所有实验动物已经通过新疆医科大学第一附属医院伦理委 员会的审批。根据本实施例所述的Stanford A型主动脉夹层动物模型的制作方法，猪的升 主动脉夹层的制作时间(制作时间/分钟)、制作Stanford A型主动脉夹层动物模型的成功 率(成功率/%)如表1所示。
[0034] 可根据实际需要，对上述血管壁分离器作进一步优化或/和改进： 如附图6所示，该血管壁分离器，包括连接段1、第一分离段2和第二分离段3,第一分 离段2的上端与连接段1的左端一体固定在一起，第二分离段3的上端与连接段1的右端 一体固定在一起，在第一分离段2与连接段1之间有第一夹角α，在第二分离段3与连接段 1之间有第二夹角β，连接段1的长度为20厘米至25厘米，第一分离段2的长度为2厘米 至3厘米，第二分离段3的长度为1厘米至2厘米。抓住连接段1，通过控制连接段1，将第 一分离段2或第二分离段3伸入中膜间隙，通过左右移动连接段1，使第一分离段2或第二 分离段3对中膜间隙进行钝性分离，使中膜间隙向四周扩大，由此可知，血管壁分离器能够 快速分离中膜间隙，为Stanford Α型主动脉夹层动物模型的制作做贡献。
[0035] 如附图6所示，第一夹角α的角度为90度至135度，第二夹角β的角度为90度至 135度；或/和，第一分离段2的底端面和