一种二氧化硫的比率荧光探针及其合成方法和应用与流程

文档序号:17585997发布日期:2019-05-03 21:19阅读:700来源:国知局
一种二氧化硫的比率荧光探针及其合成方法和应用与流程

本发明属于有机小分子荧光探针领域,具体涉及一种检测二氧化硫荧光探针及其合成方法。



背景技术:

二氧化硫(化学式so2)是最常见、最简单的硫氧化物。大气主要污染物之一。火山爆发时会喷出该气体,在许多工业过程中也会产生二氧化硫。在日常生活中,so2衍生物被广泛用作酶抑制剂、抗菌剂、医药产品、食品和饮料必不可少的防腐剂,它们大量用于范围广泛的行业。研究发现,暴露于高剂量的硫酸氢盐中,不仅是导致呼吸疾病,也与肺癌,心血管疾病的原凶,同时与许多神经系统疾病,如中风、偏头痛、阿尔兹海默症也有不可分的关系。二氧化硫吸入后会溶解到人体的血液中。轻度中毒时,发生流泪、畏光、咳嗽、咽喉痛;严重中毒者可在数小时之内发生肺水肿,出现心慌、胸闷、呼吸困难、咯血。长期低浓度接触,可出现头痛、头昏、乏力等全身症状。尽量避免接触有害气体。因此,发展一种有效快速检测二氧化硫及其衍生物的技术具有重要意义。

近年来,对生物体和环境中重要的物种进行检测是一个热点的研究课题。与其他分析工具相比,荧光探针具有操作简单,检测限低,灵敏度高等优点,被广泛用于生物化学,药学以及环境研究和工业领域中的诊断,监测和分析工具。文献中已经报道了一些检测二氧化硫荧光探针。然而,大多数探针是基于荧光强度变化检测二氧化硫的,该类探针容易受到样品环境条件、探针浓度等因素的影响。相反,比值荧光探针可以避免这些因素的影响。fret(荧光能量共振转移机制)是目前设计比率荧光探针应用最广泛的方法之一,该机理设计的比值荧光探针有两个完全分开的发射峰,能有效的避免光谱重叠。基于此,本文根据亚硫酸氢或亚硫酸盐的亲核性,设计了以fret荧光信号传感为原理可逆性检测二氧化硫的比率型荧光探针。此类可逆的比率型对研究so2在生物体内的生理功能具有重要意义。通过动力学实验证明,该探针能够快速可逆的识别so2。本发明所述的比率型荧光消除了背景、环境、浓度的干扰,对检测环境及生物体系中的二氧化硫具有潜在的应用价值。此外,该探针成功应用于细胞成像,同时用于小鼠活体成像在生物体分析检测中显示出很大的优越性。



技术实现要素:

针对现有技术中存在的问题,本发明提供一种可逆检测二氧化硫的比率型荧光探针(nasf),该探针选择性好、灵敏度高。

本发明的另一目的是提供一种上述荧光探针的合成方法,原料易得、合成步骤简单、收率高。

为实现上述目的,本发明采用如下技术方案。

一种可逆检测二氧化硫的比率型荧光探针,简称为nasf,其结构式如式(i)所示:

式(i)。

一种上述探针的合成方法,包括以下步骤:

(1)4-溴-1,8-萘二甲酸酐与β-氨基丙酸在乙醇中加热回流,冷却至室温抽滤,提纯后得化合物1:

(2)在dcc(二环己基碳二亚胺)和dmap(4-二甲氨基吡啶)存在下,步骤(1)所得化合物1与哌嗪苯乙酮于无水二氯甲烷中在保护气氛下室温反应,提纯得到化合物2:

(3)化合物2与四氢吡咯,在保护气氛下,于乙二醇、甲醚混合液中加热回流,得到红色溶液;然后将其滴加到冰水后抽滤、提纯得橙黄色化合物3:

(4)在保护气下,化合物3与n,n二乙基水杨醛于浓硫酸中加热反应,然后将反应液加入过量高氯酸,混匀后加至冰水中,抽滤、提纯后得到荧光探针:

步骤(1)中,4-溴-1,8-萘二甲酸酐与β-氨基丙酸物质的量比为4:3。

步骤(1)中,反应温度为80-90℃。

步骤(1)中,反应时间为3-5h。

步骤(2)中,化合物1与哌嗪苯乙酮物质的量比为5:6。

步骤(2)中,反应时间为20-24h。

步骤(3)中,化合物2与四氢吡咯物质的量比为1:5。

步骤(3)中,反应温度为125-135℃。

步骤(3)中,反应时间为5-6h。

步骤(4)中,化合物3与n,n二乙基水杨醛物质的量比为1:1。

步骤(4)中,反应温度为85-95℃。

步骤(4)中,反应时间为5-6h。

步骤(2)、(3)、(4)中,保护气体选自氮气或氩气。

一种上述荧光探针在检测溶液、细胞和生物体中so2的应用。

所述so2在溶液、细胞和生物体中为hso3-或so32-

荧光探针的检测原理如下:

本发明所述的可逆识别二氧化硫的比率型荧光探针,在存在二氧化硫水溶液中,所发射的荧光由645nm(近红外)变成了550nm;在甲醛存在下,发射的荧光又变为645nm(近红外)。

本发明的有益效果为:

本发明提供的荧光探针nasf对二氧化硫有响应,且在甲醛存在下荧光可逆,能够快速可逆的识别so2,消除了背景、环境、浓度的干扰,为生物及环境中检测二氧化硫的应用奠定了可靠的理论基础,对检测环境及生物体系中的二氧化硫具有潜在的应用价值。此外,该探针成功应用于细胞成像,同时用于小鼠活体成像在生物体分析检测中显示出很大的优越性。

附图说明

图1是荧光探针nasf的核磁表征:1hnmr谱(a)和13cnmr谱(b);

图2是荧光探针nasf不同浓度二氧化硫的滴定测试;

图3是荧光探针nasf不同浓度甲醛的滴定测试;

图4是荧光探针nasf在pbs缓冲液中二氧化硫及甲醛的动力学测试实验;

图5是荧光探针nasf对不同离子的选择性;

图6是荧光探针nasf的细胞成像测试;

图7是荧光探针nasf的小鼠活体成像测试。

具体实施方式

下面结合实施例和附图对本发明做进一步说明,但本发明不受下述实施例的限制。

实施例1荧光探针的合成

(1)将化合物1的合成

称取的4-溴-1,8-萘二甲酸酐(2.38g,16mmol)和的β-氨基丙酸(1.68g,12mmol)于合适的反应瓶中,加入10ml无水乙醇溶解,在氮气保护下,85℃的条件下加热回流3-5h,等体系温度冷却至室温时出现沉淀,然后抽滤,以二氯甲醛:甲醇=20:1为淋洗液过硅胶柱纯化,得到灰色固体化合物1。

(2)化合物2的合成

称取化合物1(1.74g,5mmol)和哌嗪苯乙酮(1.3g,6mmol)于合适的反应瓶中,再加入dcc(1.5g,7.5mmol)和dmap(30mg,0.25mmol),然后加入10ml的无水二氯甲烷,在氮气保护下,室温搅拌20h,旋蒸,以二氯甲醛:甲醇=30:1为淋洗液过硅胶柱提纯后得到化合物2。

(3)化合物3的合成

称取化合物2(3.2g,6mmol)和四氢吡咯(2.1g,30mmol)于反应瓶中,再加入10ml乙二醇甲醚使其溶解,在氮气保护下,130℃回流5h,然后加入冰水中,抽滤,以二氯甲醛:甲醇=25:2为淋洗液过硅胶柱提纯,得到橙色固体化合物3。

(4)化合物nasf的合成

称取化合物3(1.59g,1mmol)和n,n-二乙基水杨醛(193mg,1mmol)于合适的反应瓶中,加入5ml的浓硫酸作溶剂,在氮气保护下,90℃条件下搅拌5h。加热后颜色为灰褐色且随时间颜色逐渐加深。反应结束后,加入100μl高氯酸,搅拌混匀后,将其慢慢滴加入冰水中,然后抽滤后,以二氯甲醛:甲醇=20:1为淋洗液过硅胶柱得荧光探针nasf。

实施例2荧光探针nasf对二氧化硫和甲醛响应测试配制浓度为1mm实施例1获得的荧光探针nasf的二甲基亚砜(dmso)的测试母液溶液待用。

(1)测试溶液为2ml体系,探针的终浓度为10μm,测试使用的亚硫酸氢钠的终浓度分别为1μm、2μm、5μm-70μm(以5为公差递增),其中含乙腈的体积分数为20%。继而进行荧光检测(λex=440nm,λem=540nm,645nm)。得各体系中荧光强度,建立荧光强度与亚硫酸氢钠浓度标准曲线,如图2。由图2可知,随着亚硫酸氢钠浓度的增加,540nm处的荧光强度逐渐增加,645nm处的荧光强度逐渐降低,当亚硫酸氢钠浓度达到50μm时,反应体系荧光强度达到饱和状态。

(2)测试溶液为2ml体系,探针的终浓度浓度为10μm,测试时,亚硫酸氢钠的终浓度为50μm,其中含乙腈的体积分数为20%。然后加入不同浓度的甲醛浓度分别为5μm、10μm、20μm、30μm、40μm、50μm、60μm、70μm、80μm、90μm、100μm、120μm、150μm、200μm、300μm。得各体系中荧光强度,建立荧光强度与甲醛浓度标准曲线,如图3。由图3可知,随着甲醛浓度的增加,540nm处的荧光强度逐渐减弱,645nm处的荧光强度逐渐增强,当甲醛浓度达到200μm时,反应体系荧光强度达到饱和状态。

实施例3荧光探针nasf对二氧化硫及甲醛响应的动力学测试配制探针终浓度为10μm,含20%乙腈(体积分数)的pbs溶液,体系ph为7.4,加入亚硫酸氢钠(终浓度为50μm)充分作用,约12s后加入终浓度为200μm的甲醛,从加入亚硫酸氢钠开始,每隔三秒进行荧光检测(λex=440nm,λem=540nm和645nm),得各体系中荧光强度,建立荧光强度i645/i540比值与时间的标准曲线,如图4。由图4可知,随着二氧化硫的加入540nm处的荧光强度与645nm处的荧光强度比值很快达到平衡,加入甲醛后,540nm处的荧光强度与645nm处的荧光强度比值约150s后达到平衡。

实施例4荧光探针nasf对不同离子、活性小分子和氨基酸的选择性。

配制浓度为1mm实施例1获得的荧光探针nasf的二甲基亚砜(dmso)的测试母液溶液待用。配制浓度为100mm的溶液(1-27号母液)作为备用:苯甲醛、nano2、naf、tbhp(过氧化氢叔丁基)、kno3、ki、dtbp(过氧化二叔丁基)、mgcl2、nacns、nh3po4、kcl、nabr、cacl2、h2o2、乙二醛、乙酸铵、bacl2、hcy、naclo、zncl2、探针nasf、feso4、cucl2、alcl3、cys、na2s、nahso3(100μm)。

在5ml的容量瓶中加入50μl探针母液、950μl乙腈、50μl不同离子(或氨基酸)或5μl活性氧,用pbs溶液(ph为7.4)定容,测试离子及氨基酸的浓度为1mm,活性氧浓度为100μm,摇匀,然后进行荧光检测(λex=440nm,λem=540nm,645nm),建立i645/i540与各离子的柱状图,如图5。由图5可以发现,各种离子(或氨基酸及活性氧小分子)对探针nasf的荧光几乎没有影响。

实施例5荧光探针nasf的细胞成像测试将适当密度的hela细胞接种到两个灭菌的35mm成像培养皿中,在co2培养箱(温度为37℃,5%co2)中培养,待细胞贴壁后,向培养皿中加入实施例1获得的荧光探针nasf,使其终浓度均为10μm。继续培养0.5h,弃掉培养基,用pbs缓冲液(ph为7.4)冲洗细胞三次,进行明场与荧光成像(λex=405nm,λem=500-550nm(绿色通道)λem=663-738nm(红色通道)),如图6a1-a4,可知,细胞具有微弱的绿色荧光,发出较强的红色荧光。随后向其中加入适量亚硫酸氢钠水溶液,终浓度为50μm,孵育0.5h后,pbs缓冲液(ph为7.4)洗细胞三次后进行明场与荧光成像(λex=405nm,λem=500-550nm(绿色通道)λem=663-738nm(红色通道)),如图6b1-b4,可知,细胞红色荧光减弱,绿色荧光有一定的增强,但红色荧光与绿色荧光比值明显减弱。随后加入甲醛200μm,培养0.5h,弃掉培养基,用pbs缓冲液(ph为7.4)冲洗细胞三次,进行明场与荧光成像(λex=405nm,λem=500-550nm(绿色通道)λem=663-738nm(红色通道)),如图6c1-c4,可知,细胞具有很强的红色荧光,且比值与探针相近,说明该探针能够可逆的检测细胞中so2。

实施例6荧光探针nasf的小白鼠成像将4周大小的balb/c小鼠注射一定量麻醉剂后,在其腹腔注射100μl50μm实施例1获得的探针nasf溶液,利用活体成像仪成像(λex=580nm,λem=640nm),如图7。由图7可知,在仅注射探针的位置有很强的红色荧光,而在其原位置又注射二氧化硫后,在活体成像仪下显示无荧光,再次注射甲醛后荧光又变强。表明在活体动物内本发明的探针也能够可逆化检测。

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