针对A族链球菌表面蛋白FbaA第96-118位氨基酸的单克隆抗体的制作方法

文档序号:564832阅读:260来源:国知局
专利名称:针对A族链球菌表面蛋白FbaA第96-118位氨基酸的单克隆抗体的制作方法
技术领域
本发明涉及一种针对A族链球菌表面蛋白FbaA第96-118位氨基 酸的单克隆抗体(以下简称McAb96-118),属于单克隆抗体技术领域。
背景技术
A族链球菌(GAS)即化脓性链球菌,是一种常见的病原菌,它可 以引起人类的多种感染性疾病,包括扁桃腺炎、咽炎、中耳炎等的浅 表感染,及坏死性筋膜炎等具有高度侵袭及潜在致死性的感染,以及 儿童猩红热等中毒性疾病,更为严重的是可导致感染后的超敏反应性 疾病,如风湿热、急性肾小球肾炎等,临床上存在着反复感染及难以 治愈等问题,因为目前尚无有效的疫苗予以预防,人类对其致病机制 及疫苗的研究从未停止过。FbaA蛋白是一种表达于GAS表面的新发现 蛋白,至少存在于18个血清型中。研究发现FbaA蛋白有抗吞噬及通 过结合补体调节蛋白FH、 FH-L以促进GAS进入上皮细胞的作用(参见 Infect Imnmn. 2003, 71: 7119-7128.)。本申请发明人的前期工作显 示FbaA具有良好的免疫原性和免疫保护性(参见中国免疫学杂志, 2007, 23 (9): 835-838,中华传染病学杂志,2008, 26 (3): 146-150), 有望成为疫苗的候选蛋白。
经国内外检索,尚未发现以A族链球菌表面蛋白FbaA为抗原制备 单克隆抗体的相关文献。

发明内容
本发明所要解决的技术问题是为寻求新型GAS疫苗而开创新思路 的针对A族链球菌表面蛋白FbaA第96-118位氨基酸的单克隆抗体。
本发明解决其技术问题所采用的技术方案 本发明所述单克隆抗体是由以FbaA蛋白为免疫原免疫小鼠制备
的杂交瘤细胞产生;
所述单克隆抗体的类型为IgGl;
所述第96-118位氨基酸的基因的碱基序列为
acg tat aaa caa犯a att aaa act gca cca gac犯ei gat aag eta tta ttc acg tat cat agt gag tat;
所述第96-118位氨基酸序列为
TY眼KTAPDKDKLLFTYHSEYo
一、制备A族链球菌(GAS)表面蛋白FbaA的单克隆抗体(McAb) 的方法
1. 材料和方法
材料pMD18-T载体,高保真PCR系统,T4DNA连接酶及限制性 内切酶均购自Takara生物公司。表达载体pGEX4T-2和£ cWiBL21 均为本室保存。FbaA+GAS标准菌株、FbaA—GAS菌株及抗FbaA蛋白的兔 血清均由Kansas大学Cue惠赠。小量质粒抽提及胶纯化回收试剂盒购 自北京天为时代科技有限公司。凝血酶购自PIERCE公司、6周龄的雌 性BALB/c小鼠,购自河北医科大学实验动物中心;小鼠骨髓瘤细胞 SP2/0为河北医科大学生物科技公司惠赠;RPMI1640粉末(用于培养 细胞的培养基)购自GIBCO公司;服PES (羟乙基哌嗪乙硫磺酸)缓冲 液购自AMERECO公司;次黄嘌呤(H)、胸腺嘧啶核苷(T)、氨基喋呤(A) 等细胞培养添加剂购自SIGMA公司;聚乙二醇4000 (PEG4000)购自 MERK公司;弗氏佐剂购自SIGMA公司;碱性磷酸酶(AP)标记的抗小 鼠IgG以及AP标记的抗小鼠IgGl- IgG4购自北京中杉金桥生物技术 有限公司。
2. 以FbaA蛋白为免疫原免疫BALB/c小鼠 2.1.制备融合FbaA蛋白
2.1.1. 引物设计
根据网上公布的化脓性链球菌SSI-9 (GAS Ml血清型标准株) 基因序列(编号:AB040536)设计引物, Pl: 5' -TTAAGGATCCAGGAGGACAATATGCGTAGAGC-3'; P2: 5' -AGTGAATTCTCACCTGTTGMGGCAAGTACTTACCTG-3',分别在Pl 和P2上添加^a貞及&oM酶切位点(划线所示)。扩增的目的基因约 为982 bp,编码324个氨基酸,为FbaA蛋白第1位至324位的氨基酸 片段。
2.1.2. PCR (聚合酶链反应)
以化脓性链球菌SSI-9为模板,用引物P1、P2进行扩增,94。C5min 预变性;94。C30s,55。C30s,72。C40s,25个循环;最后72'C延伸7min。 PCR片段经琼脂糖凝胶电泳切胶回收纯化。
2.1. 3.融合表达质粒的构建
将纯化的目的基因连接至pMD18-T载体,经序列测定正确后,用
AM和&0皿双酶切获得目的基因片段如图1所示,与经相同双酶
切后的原核pGEX4T-2表达质粒连接,转化£ co7iDH5 a ,小量提取质 粒酶切鉴定,成功构建了 pGEX4T-2//&a4。
2. 1. 4.融合蛋白的表达和包涵体纯化 将pGEX4T-2及鉴定为阳性的pGEX4T-2/Z&a4质粒分别转化 £ "hBL21,挑取单菌落用异丙基-b-d-硫代半乳糖苷(IPTG)诱导, pGEX4T-2作为表达质粒,表达的融合蛋白带有GST (Glutathione S-transferase,谷胱甘肽硫基转移酶)标签蛋白,SDS-PAGE电泳检 测目的蛋白的表达。阳性菌株大量诱导表达后,超声裂解破碎,分别 收集裂解上清液和沉淀,洗涤沉淀后,溶于8mol/L尿素(pH8.0)中, 经SDS-PAGE电泳证实GST-FbaA融合蛋白主要为包涵体形式,采用凝 胶电泳回收法进行纯化。并按常规操作用凝血酶去掉GST蛋白,电洗 脱法回收。结果如图2所示,成功诱导并纯化出FbaA蛋白。本申请克 隆的/^W基因不包含锚定基序,共编码324个氨基酸,相对分子质量 约为35. 6KDa,但由于FbaA蛋白中富含脯氨酸,使其在SDS-PAGE电 泳中的迁移速度变慢,因此经SDS-PAGE反映的相对分子质量比实际大 21. 1Kda (参见Molecular Microbiology, 2001,42(1), 75-86),故 FbaA蛋白的相对分子质量为57. 7 KDa, GST相对分子质量约为26KDa, 故GST-FbaA融合蛋白相对分子质量分别为82. 7KDa。
2. 1. 5. Western blot检测蛋白表达
纯化的GST-FbaA融合蛋白及移去GST的FbaA蛋白经SDS-PAGE 电泳,通过电转膜转移至醋酸纤维素膜,用含3呢牛血清白蛋白(BSA) 的磷酸盐缓冲液封闭过夜,以兔抗FbaA多克隆抗体为一抗,AP标记 的羊抗兔IgG为二抗,底物BCIP-NBT显色。结果获得了纯化的FbaA 蛋白。结果如图3所示。
2. 2.免疫方法
免疫原为FbaA蛋白,分别在一、三、五周三次免疫小鼠,抗原 FbaA蛋白(50ug)与弗氏完全(初次免疫)或不完全佐剂(二、三 次免疫)按1 : 1比例充分混合乳化,于小鼠的背部皮下多点注射。末 次免疫后10天断尾取血,检测血清抗体效价,效价达6.0X1()4以上 小鼠备用,处死小鼠取脾细胞之前72-96小时,腹腔注射无佐剂的抗 原FbaA蛋白100ug加强免疫一次。
3. 杂交瘤细胞株的建立
按常规方法取免疫小鼠脾细胞,与已培养好的SP2/0细胞按io :
1比例混合,37。C水浴逐滴加入509&聚乙二醇(PEG4000) lmL进行细胞融 合,HAT培养液选择培养10-14天(待融合细胞集落生长至孔底1/4 时)后,采用间接ELISA法筛选阳性杂交瘤细胞株,具体方法为优 化包被浓度后用10ug/ml FbaA蛋白包被ELISA板,用4°C 12h,洗 涤液洗涤4次(lmin/次),加入封闭液100Pl/孔,37。C孵育1.5h洗涤 4次;加入细胞培养上清,每种上清双复孔,37。C孵育lh,洗涤4次; 加入l: 5000稀释的AP标记羊抗鼠IgG, 37。C孵育lh,洗涤;加入显 色液,显色30min,测定0D405值,同时设2孔空白对照。判断标准 将阴性对照的0D405值求平均数,然后将每一份细胞培养上清的 0D405值与该平均数相比,P/N〉 2. l为阳性。有限稀释法行阳性杂交 瘤细胞株的亚克隆(参见《抗体工程》 一书,北京医科大学出版社, 第二版,2001, 56-71)。结果获得的杂交瘤细胞融合率为37. 1%,经 两次亚克隆后获得了稳定分泌抗FbaA融合蛋白单克隆抗体的杂交瘤 细胞株。
4.小鼠腹水的制备
采用免疫同系BALB/c小鼠,每只小鼠腹腔注射0. 5mL高温灭菌后 的石蜡油,14d后每只小鼠再腹腔注射杂交瘤细胞0. 5-1 X 106。待小鼠 腹部明显膨大后抽取腹水。
二、单克隆抗体的检测方法
1. 抗体效价的测定
采用间接ELISA法,测定杂交瘤细胞培养上清、腹水的效价,方法 同上。酶标仪检测0D405值,效价的判定标准以大于或等于阴性对 照OD405值2. 1倍且0D405值^0. 15的最高稀释度为效价。所获单抗 的上清效价约为l: 640,腹水的效价约为1:105。
2. McAb类别的检测
采用间接ELISA法,测定杂交瘤细胞培养上清、腹水中的McAb 的类别,方法同上,所获单抗的类型均为IgGl。
3. 单克隆抗体特异性的检测
采用Western-blot方法,将纯化的GAS-FbaA融合蛋白及GST蛋 白(阴性对照)行SDS-PAGE,电转移法转至PVDF膜,第一抗体为阳 性细胞培养上清,第二抗体为AP-马抗鼠IgG,底物为BCIP-NBT。结 果阳性杂交瘤细胞株分泌的单克隆抗体与FbaA蛋白有特异杂交带,如
图4所示。
4. McAb结合链球菌能力的检测
挑FbaAGAS,FbaA+GAS菌单菌落接种于THY液体培养基过夜培养, 次日按l: 30转种,当0D560=0. 5时离心集菌、洗涤2次后,将菌液 用包被液稀释为0D560=0. 05包被96孔ELISA,第一抗体为获得的不 同株阳性杂交瘤细胞的分泌的McAb,第二抗体为AP-马抗鼠IgG,间 接ELISA法检测McAb结合菌的能力。结果发现有一株单克隆抗体(命 名为McAb96-118)与FbaA+GAS菌的结合能力远远高于与FbaA—GAS 菌的结合,如图5所示。
三、McAb96-118对应表位区段的检测
1. FbaA蛋白分段表达及Western blot检测McAb96-118对应表位 所在区段
根据FbaA蛋白的结构,本申请人将FbaA蛋白分段诱导表达,四 段蛋白分别为37-108位氨基酸(FbaA3w。s) 、 68-161位氨基酸
(FbaA68—161)、 104-277位氨基酸(FbaA卦277 )及160-324位氨基酸
(FbaA16Q-324 ),设计引物如下 FbaA37—咖的上游引物5, -TT GAATTC GCC GTA GAT GGC ATC CCT C-3, FbaA37—舰的下游引物5, -GC GCTAGC CTT ATC TTT GTC TGG TGC-3, FbaAs8-un的上游引物5, -GGC GGATCC CCT TTA GGT ATA AGC TTA G-3, FbaAe8,的下游引物5, -GGT GCTAGC AGG AGA ATC AGT CGT AAC-3, FbaAun-277的上游引物5, -G GGATCC GCA CCA GAC AAA GAT AAG CTA-3, FbaA,277的下游引物5, -GTTTG GCTAGC MC AAG TGA AGA GGC-3, FbaA则—324的上游引物:5, -TT GGATCC ACG ACT GAT TCT CCT GAG-3, FbaA16。—324的下游引物5, -TC GCTAGC ACC TGT TGA AGG CAA GTA C-3, 上述划线部分为DNA内切酶的酶切位点,以化脓性链球菌SSI-9 为模板,分别用四对引物进行扩增,94nC5min预变性;94'C30s,55i: 30s,72。C40s,25个循环;最后72'C延伸7 min。 PCR片段经琼脂糖凝 胶电泳切胶回收纯化。成功扩增出四段目的基因片段,见图6A所示, 四段基因分别经相应DNA内切酶双酶切后插入经相同双酶切的原核表 达载体pGEX4T-2,转化感受态后小提质粒做双酶切鉴定,结果见图6B,
成功构建了四段基因的融合原核表达质粒。挑选阳性克隆菌37"C常规 IPTG诱导,四段蛋白成功表达见图7A;将四段蛋白行SDS-PAGE后转 PVDF膜,与McAb96-118行Western blot,方法同上。结果McAb96-118
只与FbaAe8^段特异地结合,见图7B,证实McAb96-118对应表位位 于FbaA 68—161 段。但McAb96-118不与FbaA 37-108 段、FbaA 104—277 段结合,据 此推测McAb96-118针对的表位涵盖了 FbaA第104-108位氨基酸,结 合生物信息学技术初步确定McAb96-118针对的表位区段为FbaA的第 96-118位氨基酸。
2.表位缺失片段的融合表达及检测
PCR搭桥法设计缺失96-118氨基酸(涵盖了 FbaA第104-108位 氨基酸)的68-161氨基酸的基因片段(简写为FbaAA68-161),引物 如下
68位氨基酸端的上游引物为
5, -GGCGGATCCCCTTTAGGTATAAGCTTAG-3,
96位氨基酸端的下游引物为
5 , -CGGCTGTCATTTCTTTTTGTGCTTCAGATAA-3 ,
118位氨基酸的上游引物为
5 , -GCACAAAAAGAAATGACAGCCGTTAAGGAT-3,
161位氨基酸的下游引物为
5, -GCCGGGAATTCAGTCGTAACTGATGTTG-3, 上述划线部位为酶切位点。上游引物的酶切位点为BamHl,下游 引物的酶切位点为EcoRI ,以化脓性链球菌SSI-9为模板,PCR扩增 出相应的基因片段(见图8)。将PCR扩增产物BamH I / EcoR I双酶切 后插入经相同双酶切的pGEX4T-2载体,转化DH5a感受态。PCR鉴定 阳性克隆、测序正确后,将融合质粒转化入BL21感受态,阳性克隆经 IPTG诱导表达FbaAA68-161蛋白片段(见图9), McAb96-118与FbaA △68-161、 FbaA68-161行western blot以及将这两种蛋白以相同浓 度包被ELISA板后行间接ELISA。 二者结果一致,即McAb96-118只与 FbaA68-161片段特异结合,不与FbaAA68-161结合(见图10, 11), 证实McAb96-118针对的表位位于FbaA蛋白的第96-118位氨基酸。
四、结论与讨论
链球菌FbaA蛋白属于纤连蛋白结合蛋白,与金黄色葡萄球菌纤连 蛋白结合蛋白有很高的同源性。己知在化脓性链球菌和上皮细胞相互 作用的过程中,GAS的F1蛋白可以利用可溶性纤连蛋白介导与作为上 皮细胞表面受体的整合素a 5 6 1的结合(参见Mol Microbiol, 1998, 30:625-637 ); FbaA蛋白也可以通过结合纤连蛋白介导链球菌与HEp-2
细胞结合并侵入HEp-2细胞(参见Infect Immun., 1998, 66: 4593-4601),链球菌的这种特性可使其逃避抗生素及机体免疫系统的 攻击。
FbaA蛋白还可与血浆中的补体调节蛋白H因子(FH)及H因子样蛋 白-1 (FHL-1)结合(参见Infect I國n, 2002, 70: 6206-6214)。 Horstmann等(参见Proc Natl Acad Sci USA, 1988, 85:1657-1661) 首先提出,FbaA蛋白结合FH和其他补体调节蛋白的能力支配或影响致 病菌逃避补体攻击和细胞调理作用的能力(参见Biol Chem, 2002, 277:12642-12648, Eur J I画unol, 2003, 33:697-707)。
本申请基于FbaA蛋白制备了其单克隆抗体,类型均为IgGl,并 且其中一株单克隆抗体McAb96-118引起了申请人极大的兴趣。全菌 ELISA结果显示,McAb96-118与FbaA+GAS及FbaA—GAS的结合能力有明 显的差异:其可与FbaA+GAS特异结合,而与FbaA—GAS的结合能力极弱, 提示McAb96-118针对的表位属于菌体表面的FbaA蛋白的天然表位。 继而,将McAb96-118与FbaA分段蛋白结合,显示其能特异地结合FbaA 68—161 段,但不与FbaA 37-108 段、FbaA 104-277 段结合,据此推测McAb96-118 针对的表位涵盖了 FbaA第104-108位氨基酸的区段,结合生物信息学 技术,初步确定了该单抗针对的表位区段位于FbaA蛋白的第96-118 位氨基酸;于是,设计FbaA蛋白的第96-118位氨基酸(包含了 FbaA 第104-108氨基酸)缺失的68-161位氨基酸的融合蛋白FbaAA68-161 的诱导表达,并将表达产物与McAb96-118分别行Western-blot及 ELISA,结果显示缺失了 96-118位氨基酸的融合蛋白不与McAb96-l 18 发生特异性结合,证明FbaA蛋白的第96-118位氨基酸为McAb96-118 针对的表位区段,且筛选出多株一样的杂交瘤细胞,其产生的单克隆 抗体针对的表位区段都多是该区段,提示该表位是一个优势表位。
本发明有益效果如下
1、 本发明所述的单克隆抗体McAb96-118所针对FbaA蛋白的氨基 酸序列是位于GAS表面的天然结构,同时也是GAS的一个优势表位, 这为深入研究新型GAS疫苗提供了新的靶点。
2、 McAb96-118与FbaA蛋白的结合区段与FH、 FHL-1与FbaA蛋 白结合位点(FbaA蛋白的97-112位氨基酸)重叠,因为GAS通过其 表面蛋白FbaA与FH的结合入侵上皮细胞,故McAb96-118与GAS结合 可以降低GAS侵入细胞的能力。这为研究链球菌的致病机制、开辟控
制链球菌感染非抗生素治疗提供了新视角。


图1为PCR扩增/ib^基因片段及PMD-18T/ZZ,a力双酶切产物的琼 脂糖胶电泳图。
图2为融合Fba蛋白的SDS-PAGE图。
图3为融合蛋白的Western blot分析图。
图4为Western blot检测McAb的特异性。
图5为McAb96-118与FbaA+GAS和FbaA_GAS结合能力的ELISA检 测图(横坐标为McAb96-118的稀释度)。
图6A为PCR扩增四段基因片段的琼脂糖胶电泳图。 图6B为四段基因片段插入pGEX4T-2后的双酶切鉴定电泳图。 图7A为FbaA各分段蛋白诱导表达SDS-PAGE图。 图7B为McAb96-118与分段蛋白的Western blot分析图。 图8为PCR搭桥法扩增FbaAA68-161的基因片段的琼脂糖胶电泳图。
图9为FbaA68-161诱导表达SDS-PAGE图。 图10为McAb96-118与FbaA68-161和FbaAA68-161的Western blot分析图。
图11为McAb96-118与FbaA68-161和FbaAA68-161结合的ELISA 检测图(McAb96-118的稀释度为l: 4000)。
在图1中,1.标准分子质量DNA, 2. PCR扩增链球菌y&a4基 因,3.融合质粒pMD18-T外o4双酶切产物;
在图2中,4.蛋白相对分子质量标准,5.融合质粒pGEX4T-2/^kL4 未诱导,6.融合质粒pGEX4T-2外"诱导表达,7.纯化的GST-FbaA 融合蛋白,8.去除GST的FbaA蛋白;
在图3中,9.纯化的GST-FbaA融合蛋白,lO.移去GST的FbaA 蛋白,11. GST阴性对照;
在图4中,12.纯化的GST-FbaA融合蛋白,13. GST阴性对照, 14特异杂交带;
在,6A中,15. FbaA37.u)8的基因片段,16. FbaA68_161的基因片 段,17. FbaAK)4.277的基因片段,18. FbaA,324的基因片段,19. DNA Marker;
在图6B中,20. pGEX4T-2/y&d!,24的双酶切产物,21.
pGEX4T-2/yZ>o4/w_277的双酶切产物,22. DNA Marker , 23. pGEX4T-2妙o4沐^的双酶切产物,24. pGEX4T-2/yZ>a^7-/0S的双酶切 产物;
在图7A中,25.蛋白Marker, 26. FbaA37_108蛋白诱导表达,27. FbaA37.108未诱导表达,28. FbaA68.161蛋白诱导表达,29. FbaA^w 未诱导表达,30. FbaA胁277蛋白诱导表达,31. FbaA1()4_277未诱导表 达,32. FbaA胁324蛋白诱导表达,33. 63八16().324未诱导表达;
在图7B中,34. FbaA37.108, 35. FbaA68.161, 36. FbaA104.277, 37. PbaA160_324;
在图8中,38. DNAMarker, 39. 68位至95位氨基酸的基因片 段,40. 119位至161位氨基酸的基因片段,41. FbaAA68-161的基 因片段;
在图9中,42.蛋白Marker,43. FbaAA68-161诱导表达,44. FbaA △68-161未诱导表达,45.阴性对照GST蛋白;
在图10中,46. FbaA68-皿,47. FbaAA68-161。
具体实施例方式
单克隆抗体McAb96-118是由以FbaA蛋白为免疫原免疫小鼠制备 的杂交瘤细胞产生;
所述单克隆抗体的类型为IgGl;
所述第96-118位氨基酸的基因的碱基序列为
acg tat aaa caa aaa att aaa act gca_ cca_ gac aaa_ gat aag eta tta ttc acg tat cat agt gag tat;
所述第96-118位氨基酸序列为
TYKQKIKTAPDKDKLLFTYHSEY 。
并按照上述发明内容部分中第一、二、三部分的内容具体操作即可。
权利要求
1、针对A族链球菌表面蛋白FbaA第96-118位氨基酸的单克隆抗体,其特征在于所述单克隆抗体是由以FbaA蛋白为免疫原免疫小鼠制备的一株杂交瘤细胞产生;所述单克隆抗体的类型为IgG1;所述第96-118位氨基酸的基因的碱基序列为acg tat aaa caa aaa att aaa act gca cca gac aaa gat aag ctatta ttc acg tat cat agt gag tat;所述第96-118位氨基酸序列为TYKQKIKTAPDKDKLLFTYHSEY。
全文摘要
本发明涉及一种针对A族链球菌表面蛋白FbaA第96-118位氨基酸的单克隆抗体,所述单克隆抗体是由以FbaA蛋白为免疫原免疫小鼠制备的杂交瘤细胞产生;所述单克隆抗体的类型为IgG1。本发明的有益效果是为深入研究链球菌的致病机制提供了新的靶点;并且为寻找新型GAS疫苗、开辟控制链球菌感染非抗生素治疗提供了新视角。
文档编号C12N15/31GK101386647SQ20081007966
公开日2009年3月18日 申请日期2008年10月29日 优先权日2008年10月29日
发明者李彩红, 杨建岭, 王秀荣, 郭奕阳, 顾海燕, 马翠卿, 林 魏 申请人:河北医科大学
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