1.一种烟草腋芽生长调控基因NtBRC1，其特征在于所述的烟草腋芽生长调控基因NtBRC1的核苷酸序列如SEQ ID NO：1所示。
2.根据权利要求1所述的烟草腋芽生长调控基因NtBRC1，其特征在于所述的烟草腋芽生长调控基因NtBRC1编码的氨基酸序列如SEQ ID NO：2所示。
3.一种权利要求1所述的烟草腋芽生长调控基因NtBRC1的克隆方法，其特征在于包括以下步骤：
A、确定NtBRC1基因序列；
（1）利用番茄基因SIBRC1b搜索烟草基因组数据库得到烟草NtBRC1的核苷酸序列，利用此序列设计基因克隆引物：
正向引物：5′- ATGTATCCGCCAAGCAACAG -3′；
反向引物：5′- GCTATTGAAATCCTAAAAAAT -3′；
B、提取烟草根组织RNA，反转录得到第一链cDNA；
C、根据NtBRC1基因序列设计合成特异性引物，以反转录得到的第一链cDNA作为模板，进行PCR扩增，选用Phusion高保真扩增酶反应体系，体系总体积50μL，包括：200ng cDNA，5×Phusion HF反应缓冲液，10mM dNTP，2U的Phusion® High-Fidelity DNA Polymerase，正反向引物各1μM，PCR反应在Mastercycler® pro扩增仪上进行，反应程序为：98℃，30秒；98℃，7秒，55℃，30秒，72℃，30秒，35个循环；72℃延伸7分钟；回收和纯化PCR产物；
D、纯化产物与载体连接，通过试剂盒反应与TOPO载体连接，连接体系与过程如下： 4μL纯化产物+1μL salt salution +1μL PCR-BluntⅡ-TOPO混匀，25℃，水浴30min；将连好的载体通过热激转化进入大肠杆菌，加液体培养基震荡培养后涂到含100mg/L 卡那霉素的LB平板上过夜培养， 长出菌后挑取菌落进行培养，培养后取2ml菌液提取质粒，进行质粒PCR检测，筛选阳性克隆，对阳性克隆进行测序。
4.根据权利要求3所述的烟草腋芽生长调控基因NtBRC1的克隆方法，其特征在于C步骤中所述的特异性引物引物为：
正向引物：5′- ATGTATCCGCCAAGCAACAG -3′；
反向引物：5′- GCTATTGAAATCCTAAAAAAT -3′。
5.根据权利要求3所述的烟草腋芽生长调控基因NtBRC1的克隆方法，其特征在于D步骤中所述的培养基为：称取胰蛋白胨10g，酵母提取物5g，NaCl 10g 溶解于1L 蒸馏水中，高温灭菌，即121℃，25min灭菌后使用。
6.一种权利要求1所述的烟草腋芽生长调控基因NtBRC1的应用，其特征在于所述的烟草腋芽生长调控基因NtBRC1在获得降低打顶后烟草产生腋芽的发育长度的转基因植株中的应用。
7.根据权利要求6所述的烟草腋芽生长调控基因NtBRC1的应用，其特征在于所述获得NtBRC1转基因烟草的方法包括以下步骤：
A、构建过表达（OE）载体：
a、以pCR®-BluntII-TOPO载体为中间载体、pK2G7为表达载体构建NtBRC1基因的过表达（OE）载体，构建引物为：
NtBRC1-OE-F: 5’- GGATCCATGTATCCGCCAAGCAACAG -3’，
NtBRC1- OE-R: 5’- CTCGAGCTATTGAAATCCTAAAAAAT -3’，
NtBRC1- OE-F中GGATCC处为BamH I酶切位点；NtBRC1-OE-R中CTCGAG处为Xho I酶切位点；
b、以NtBRC1阳性克隆TOPO质粒DNA为模板进行PCR扩增，PCR反应体积为50μL，包括：200ng cDNA，5×Phusion HF反应缓冲液，10mM dNTP，2U的Phusion® High-Fidelity DNA Polymerase，NtBRC1- OE-F引物、NtBRC1- OE-R引物各1μM，PCR反应在Mastercycler® pro扩增仪上进行，反应程序为：98℃，30秒；98℃，7秒，55℃，30秒，72℃，30秒，30个循环；72℃延伸7分钟；回收和纯化PCR产物；
c、回收目的片段产物与TOPO载体连接：通过试剂盒反应与TOPO载体连接；
连接体系与过程如下： 4μL纯化产物+1μL salt salution +1μL PCR®-BluntⅡ-TOPO混匀，25℃，水浴30min，将连好的载体通过热激转化进入大肠杆菌，加培养基震荡培养后涂到含100mg/L 卡那霉素的LB平板上过夜培养， 长出菌后挑取菌落进行培养，培养后取2ml菌液提取质粒，进行质粒PCR检测，筛选阳性克隆，对阳性克隆进行测序；
d、入门克隆pENTRTM2B-NtBRC1OE的构建：用上步测序对的TOPO质粒和pENTRTM2B空载体做酶切反应：BamH I+Xho I双酶切TOPO质粒和pENTRTM2B-ccdB得到目的基因片段和载体片段pENTRTM2B，切胶回收后进行连接、连接体系：连接反应总体积为10μL，含酶切目的片段的切胶回收产物4μL，pENTRTM2B（BamHI+Xho I双酶切）载体1μL，10×T4 buffer 1μL，T4 Ligase 1μL，灭菌双蒸水3μL，混匀，室温反应2小时，转化入大肠杆菌感受态细胞，加培养基震荡培养后涂到含100mg/L 卡那霉素的LB平板上过夜培养，提取质粒进行PCR检测和酶切检测，以验证目的基因片段是否已经插入载体片段，入门载体是否构建成功；
e、通过LR反应得到植物表达载体：挑选检测正确的入门克隆与植物表达载体PK2G7 (Destination clone)进行LR反应，具体反应如下：体系与过程如下：
1）连上2B载体的入门克隆(50-150ng )1-7μL + 0.5μL Destination Vector + TE Buffer(up to 8μL)；
2）上述体系混匀，冰浴2min,轻弹2次；
3）加入2μL LR CloneaseTMⅡ enzyme Mix 到上述体系，轻弹，混匀，离心，25℃水浴1h；
4）加入1μL Proteinase K 轻弹，混匀，37℃水浴10min；
通过热激转化转入大肠杆菌，加入培养基震荡培养后涂含100mg/L 壮观霉素的LB平板上，得到植物表达载体，挑菌提质粒后，进行PCR验证及酶切验证；
PCR反应体积为25μL，包括：100ng质粒DNA，5×Phusion HF反应缓冲液，10mM dNTP，1U的Phusion® High-Fidelity DNA Polymerase，NtBRC1-OE-F引物、NtBRC1-OE-R引物各0.5μM，PCR反应在Mastercycler® pro扩增仪上进行，反应程序为：98℃，30秒；98℃，7秒，55℃，30秒，72℃，30秒，30个循环；72℃延伸7分钟；检测重组质粒的正确性，理论上基因上下游引物扩增的片段大小为987bp，验证PCR扩增结果是否和预期一致；酶切体系为20μL：包含质粒DNA1μg，BamHI、Xho I各0.5μL，NEB Buffer 3.1 2μL，理论上酶切检测结果分别为载体片段约12kb和目的基因片段999bp，同时满足两个条件，则表明表达载体构建成功，将检测对的质粒进行测序比对，进一步验证；
B、农杆菌转化：
从-80℃冰箱中取出农杆菌感受态细胞，在冰上溶解，并加入重组表达载体PK7G- NtBRC1OE 4μL；将混合物分别放入液氮速冻1分钟，转入37℃水浴5分钟，再冰浴2分钟，向混合物中加入1mL LB液体培养基，28℃、220rpm培养3~4小时；培养物涂布于含有壮观霉素100mg/L和利福平25mg/L的LB固体培养基上，28℃倒置培养2~3天，可见含有目的载体的农杆菌克隆；
C、过表达（OE）载体导入烟草、培养转基因植株：
a、挑取含有目标载体的农杆菌克隆，在含有壮观霉素和利福平的LB平板上划线，28℃培养2~3天；刮取划线菌斑接菌于含有壮观霉素和利福平的MS培养基中，28℃，220rpm震荡培养，菌液浓度达到OD=0.5~0.8时进行侵染，得到含目标载体的农杆菌菌体；将菌体收集到离心管中，6,000rpm离心5分钟富集菌体，弃上清，再用20ml液体MS培养基重悬菌体，得到含目标载体的农杆菌悬浮菌液；
b、将烟草叶片置于500mL广口瓶中， 加入适量75%乙醇，漂洗1min；倒掉乙醇，加入0.1%的HgCl2溶液，置摇床上室温振荡15~30分钟；倒掉溶液，用无菌水冲洗6遍；
c、将烟草叶片取出，用灭菌吸水纸洗去表面液体，取无菌叶片用剪刀切成1cm×1cm的小片，将切成小片的烟草叶片分别放入含目标载体的无菌MS液体培养基悬浮菌液中，静置15~20min；取出烟草叶片，用无菌滤纸吸去多余菌液，于加入6-BA 1.0mg/L、NAA 0.1mg/L的MS培养基中25℃暗培养两天；把烟草叶片转入分化培养基中，切口接触培养基，于温室条件下分化培养；分化培养基为加入6-BA 1.0mg/L、NAA 0.1mg/L、Kan 100mg/L、头孢霉素500mg/L的MS培养基，每2~3周将其转移到新的培养基中，切口处逐渐长出愈伤组织，最后分化出芽；
d、将长至3~5cm的芽切下，转入MS培养基诱导生根，生根后的转基因植株由生根培养基中取出，用自来水净培养基，移植于灭菌的营养土中；
e、转基因植株经NPTII基因特异引物PCR验证扩增，鉴定转基因阳性植株。
8.根据权利要求7所述的烟草腋芽生长调控基因NtBRC1的应用，其特征在于C步骤b中所述的0.1%的HgCl2溶液配制方法为称取升汞0.1克，用少许酒精溶解，再加水定容至100毫升。