利用小球藻表达人干扰素基因的方法_3

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AGT)双酶切,人工合成 HuIFN-a2b基因AfIIII(AICATGT)和SpeI(AICTAGT)双酶切,回收酶切片段,T4DNA连 接酶将粘性末端连接,构建PCAMBIA1304-IFN表达载体。
[0089] 利用大肠杆菌DH5 a感受态的制备和热激法转化:
[0090] 1)将保存于_70°C超低温冰箱中的大肠杆菌DH5a菌种取出,在LB固体培养基上 划线,置于37°C倒置培养过夜;
[0091] 2)在长出菌落的LB固体平板上挑取单菌落至2mLLB液体培养基中,置于摇床,温 度设置37°C,转速设置220rpm,摇动培养过夜;
[0092] 3)将500yL菌液接种至50mLLB液体培养基中,按1 : 100比例,37°C、220rpm 摇床摇动培养至0D600~0. 5,控制时间约3h,培养两瓶;
[0093] 4)将菌液倒入灭菌的50mL离心管中,立即冰浴10~15min,直至菌液完全冷却;
[0094] 5)将离心管置于冷冻离心机中,温度设置4°C,转速设置5000rpm,离心lOmin,收 集菌体,倒出LB液体培养基,将离心管置于灭菌滤纸上倒置lmin,使残留的培养基流尽;
[0095] 6)用30mL预冷的0?lmol/LCaCl2-MgCl2溶液重悬菌体,置于冰上;
[0096] 7)将离心管置于冷冻离心机中,4°C,5000rpm,离心lOmin,倒出上清液,收集菌 体,将离心管置于灭菌滤纸上倒置lmin,使残留的溶液流尽;
[0097] 8)每个离心管加2mL预冷的0.lmol/LCaCl2溶液重悬菌体,然后加入860yL50 % 甘油,混匀,使甘油的最终浓度为15 % (V/V),置于冰上;
[0098] 9)将上述菌液每50yL分装于预冷的I. 5mL灭菌离心管中,液氮速冻,置于-70°C 超低温冰箱中保存。
[0099]对大肠杆菌DH5 a的热激法转化:
[0100] 1)保存于-70°C超低温冰箱中的大肠杆菌DH5a感受态细胞取出,置于冰上融 化;
[0101] 2)加入IyL重组质粒混匀,置于冰上30min;
[0102] 3)将混有质粒的菌液置于42°C水浴中热激90s,然后迅速置于冰上冷却2min;
[0103] 4)加入700yLLB液体培养基,37°C、200rpm摇床摇动培养Ih;
[0104] 5)将离心管置于离心机中,5000rpm,离心lOmin,去除650yLLB液体培养基,然 后将菌体沉淀用枪轻轻吹打,使之重悬混匀;
[0105] 6)将上述菌液均匀涂布于含50mg/LKan的LB固体培养基上,置于37°C生化培养 箱中倒置培养过夜。
[0106] 大肠杆菌质粒的提取和鉴定:
[0107]1)挑取大肠杆菌转化子于3mL含50mg/LKan的LB液体培养基中,37°C,220rpm, 摇床摇动培养过夜,然后进行如下操作;
[0108] 2)在提取质粒之前,吸出500yL菌液到灭菌的I. 5mL离心管中,加入500yL50% 甘油混匀,编号,液氮速冻,超低温冰箱保存,然后将剩余2. 5mL菌液分次加入I. 5mL离心管 中,1200rpm离心lmin,尽量吸去上清;
[0109] 3)向离心管中加入IOOyL预冷的质粒提取溶液I,在旋涡振荡器上振荡,将沉淀 的菌体重悬,冰上放置5min;
[0110] 4)配制质粒提取溶液II,向离心管中加入200iiL,盖紧管盖,轻轻地上下颠倒混 匀4~6次,冰上放置5min;
[0111] 5)向离心管中加入150yL质粒提取溶液III,轻轻地上下颠倒混匀4~6次,此时 菌液变得粘稠且清亮,冰上放置5min;
[0112] 6)4°C,12000rpm,离心10min,将上清液吸出至一新的灭菌的I. 5mL离心管中(约 400yL,不可将沉淀吸出);
[0113] 7)加入等体积的氯仿:异戊醇(24:1),充分振荡混勾,12000rpm,离心IOmin;
[0114] 8)取上清液至一新的灭菌的I. 5mL离心管中,加入1/10体积的3mol/L NaAc(PH5. 2),加入2倍体积的无水乙醇,充分混匀;
[0115] 9)放入-20°C冰箱静置至少 30min,然后 4°C,12000rpm,离心IOmin;
[0116] 10)弃去上清液,用75 %的乙醇洗涤两次,沉淀自然干燥,加入灭菌去离子水 (200yL中加IyL10mg/L的RNaseA);
[0117] 11)根据人干扰素HuIFN-a2b基因序列设计引物:
[0118] IFN-IFP :5' ATGTGCGACCTTCCCCAGAC3'
[0119] IFN-IRP :5' CTCCTTAGACCTAAGGCTCTCC3'
[0120]其扩增产物长度为498bp,
[0121] IFN-2FP-.5'ACAGGCACGACTTCGGCTTC3r
[0122] IFN-2RP : 5rCGCAAGGGCTGTACTTCTTCTC3r
[0123] 其扩增产物长度为321bp。
[0124] 质粒的PCR鉴定,PCR扩增体系(20yL)表I:
[0128] PCR扩增产物于2 %琼脂糖凝胶检测;
[0129] 12)质粒的酶切鉴定:由于NcoI与AflIII同尾酶连接后,不能被限制性内切酶识 另Ij,故利用HuIFN-a2b基因之前多克隆位点中HindIII限制性酶切位点与HuIFN-a2b基因 最后SpeI限制性酶切位点进行双酶切,切出的片段长度是1262bp。
[0130] 双酶切反应体系(10yL)表2 :
[0131]
[0132] 37°C酶切过夜,酶切产物于I. 2%琼脂糖凝胶检测。
[0133] 根癌农杆菌感受态细胞制备,冻融法:
[0134] 1)将保存于_70°C超低温冰箱中的农杆菌菌株取出,在LB固体培养基上划线,置 于28°C倒置培养1-2天,直至有菌落长出;
[0135] 2)挑取农杆菌单菌落于5mLLB液体培养基中,28°C,220rpm,摇床摇动培养36h;
[0136]3)将500yL农杆菌菌液接种至50mLLB液体培养基中(按1 : 100比例),28°C, 220rpm,摇床摇动培养至0D600~0? 5 (约6h),培养两瓶;
[0137] 4)将菌液倒入灭菌的50mL离心管中,立即冰浴10~15min,直至菌液完全冷却;
[0138] 5)将离心管置于冷冻离心机中,4°C,5000rpm,离心lOmin,收集菌体,倒出LB液体 培养基,将离心管置于灭菌滤纸上倒置lmin,使残留的培养基流尽;
[0139] 6)将农杆菌重悬于IOmL 0. 15mol/LNaCl溶液中,冰上放置IOmin ;
[0140]7) 4°C,5000rpm,离心lOmin,倒出上清液,收集菌体,将离心管置于灭菌滤纸上倒 置Imin,使残留的溶液流尽;
[0141] 8)将农杆菌用ImL0. 02mol/LCaCU容液重悬,置于冰上,
[0142]9)将上述菌液每IOOyL分装于预冷的1.5mL灭菌离心管中,液氮速冻,置 于_70°C超低温冰箱中保存;
[0143] 根癌农杆菌冻融法转化:
[0144] 1)将保存于_70°C超低温冰箱中的农杆菌冻融法感受态细胞取出,置于冰上融 化;
[0145] 2)加入IyL重组质粒混匀,冰浴5min;
[0146] 3)放入液氮速冻5min,然后37°C水浴5min;
[0147] 4)加入ImLLB液体培养基,28°C,200rpm,摇床摇动培养2h;
[0148] 5)将离心管置于离心机中,5000rpm,离心lOmin,去除ImLLB液体培养基,然后将 菌体沉淀用枪轻轻吹打,使之重悬混匀;
[0149]6)将上述菌液均匀涂布于含50mg/LKan、50mg/LRif的LB固体培养基上,置于 28°C生化培养箱中倒置培养2天以上,至板上长出单菌落;
[0150] 根癌农杆菌质粒的提取和鉴定:
[0151] 1)挑取农杆菌转化子于5mL含50mg/LKan和50mg/LRif的LB液体培养基中, 28°C,220rpm,摇床摇动培养2天,然后利用康为世纪质粒小提试剂盒进行如下操作;
[0152]2)在提取质粒之前,吸出500yL菌液到灭菌的I. 5mL离心管中,加入500yL50% 甘油混匀,编号,液氮速冻,超低温冰箱保存,然后将剩余4. 5mL菌液分次加入I. 5mL离心管 中,1200rpm离心lmin,尽量吸去上清;
[0153] 3)向有农杆菌沉淀的离心管中加入250yLBufferPl(在使用前预先加好 RNaseA),用漩涡混合器将细菌沉淀彻底重悬起来;
[0154] 4)向离心管中再加250yLBufferP2,轻轻地上下颠倒混勾4~6次,使菌体充分 裂解,此时菌液变得粘稠且清亮。此步操作时间不应超过5min,以防质粒受到破坏;
[0155] 5)向离心管中再加250yLBufferN3,立即轻轻地上下颠倒混匀4~6次,此时离 心管内会出现白色絮状沉淀,1200rpm离心lOmin,将沉淀离心至离心管底部;
[0156] 6)将已装入收集管的吸附柱中加入200yLBufferPS,12000rpm离心2min,倒掉 收集管中的废液,将吸附柱重新装回收集管中;
[0157] 7)将步骤5所得的上清液加入已经装入收集管的吸附柱中,不可将沉淀吸出, 12000rpm离心lmin,倒掉收集管中的废液,再将吸附柱装回收集管中;
[0158] 8)向收集管中加入600yLBufferPW,使用之前预先加入无水乙醇,12000rpm离 心lmin,倒掉收集管中的废液;
[0159] 9)重复步骤8;
[0160] 10)将吸附柱重新放回收集管中,12000rpm离心lmin,倒掉收集管中的废液。将吸 附柱置于室温下数分钟,将残留的乙醇挥发掉;
[0161] 11)将吸附柱置于一个新的灭菌离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加 50yLBufferEB(预先在65°C-70°C加热),室温放置数分钟,12000rpm离心Imin;
[0162] 12)将离心管中的质粒溶液重新加到吸附膜的中间部位,重复步骤11,然后收集 质粒溶液做鉴定,剩余的-20°C保存;
[0163] 13)农杆菌提取质粒的
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