一种猪伪狂犬病毒纯化方法
【专利摘要】本发明提供了一种猪伪狂犬病毒纯化方法，该方法综合采用了微滤澄清纯化法，超滤浓缩纯化法，重复洗滤法等一系列工艺，最大限度的增大了PRV的回收效率，降低了纯化成本。以本发明制备的猪伪狂犬病毒浓缩液成品尤其适宜于制备疫苗，以本发明制备的猪伪狂犬病毒浓缩液成品制备的疫苗相对于现有技术的猪伪狂犬病毒疫苗而言，具有安全性高，均一性好、免疫效果好等优点，同时，本发明工艺简便、成本较低，具有突出的规模化应用前景。
【专利说明】一种猪伪狂犬病毒纯化方法
【技术领域】
[0001]本发明涉及一种病毒纯化方法，尤其涉及一种猪伪狂犬病毒纯化方法。
【背景技术】
[0002]伪狂犬病(PorcinePseudorabies)是由伪狂犬病毒(Pseudorabies Virus, PRV)引起的发生在多种家畜和野生动物体内的一种急性传染病，以发热、奇痒、脑脊髓炎为主要发病症状。成年猪常表现为隐性感染，妊娠母猪感染后可引起流产、死胎以及呼吸系统疾病症状，无奇痒。新生仔猪感染后除了出现神经症状外，还可侵害消化系统。本病呈世界性分布。猪既是本病原的原发感染宿主，又是病毒的长期贮存者和排毒者，在伪狂犬病的传播上起着重要作用。伪狂犬病给猪养殖业造成的危害仅次于猪瘟。伪狂犬病的传播和蔓延，给养殖业造成了巨大损失，全世界每年因伪狂犬病造成的经济损失高达数十亿美元，因此该病引起了世界各国的高度重视。
[0003]本病目前尚无特效治疗药物，疫苗的免疫接种是预防和控制猪伪狂犬病的根本措施，目前国内外已研制出猪伪狂犬病的常规弱毒疫苗、灭活疫苗和基因缺失疫苗，这些疫苗都能在一定程度上减轻或防治伪狂犬病的临床症状，从而减少造成的经济损失。目前，我国商品化的猪伪狂犬病病毒疫苗主要是基因缺失活疫苗，其安全性和有效性主要受病毒滴度，抗原纯净性，灭活工艺及佐剂等因素的影响。商品化疫苗如果直接以细胞繁殖的病毒液进行成品苗的生产，会受到细胞破碎产物，培养基成分，细胞代谢产物等杂质的影响，致使疫苗免疫动物后易发生过敏反应，发热反应等副作用。所以，提高病毒滴度和抗原纯净性是提升疫苗质量基本途径。
[0004]中空纤维膜过滤技术属于切向流过滤技术(Tangential Flow Filtration, TFF)的范畴，又称错流过滤(Cross-Flow Filtration, CFF):料液以一定的流速在膜的上表面循环，小于膜孔径的物质可以透过膜到透过端，而大于膜孔径的物质会被膜截留，从而实现目标物质的浓缩以及不同物质的分级分离。
[0005]和传统的平板膜包相比，中空纤维柱具有纤维管状的开放式流道结构，无筛网的管状流道结构避免了料液的无规则剧烈湍流，因此具有更低的剪切力，温和的操作可以有效防止病毒表面糖蛋白的脱落和蛋白的聚集，有利于保护病毒的完整性，防止病毒颗粒聚集的同时有助于杂蛋白的透过和去除。
[0006]目前，对于猪伪狂犬病病毒(PRV)的中空纤维澄清纯化及浓缩工艺尚无报道。
【发明内容】
[0007]本发明旨在解决现有猪伪狂犬病活疫苗副反应率高、均一性差、免疫效果差等技术问题，提供一种使用微滤澄清纯化系统和超滤浓缩纯化系统实现的猪伪狂犬病病毒纯化方法。
[0008]为实现以上技术目的，本发明采用以下技术方案:
[0009]一种猪伪狂犬病毒纯化方法，该方法通过微滤澄清纯化系统和超滤浓缩纯化系统来实现，过程如下:
[0010]I系统的组装
[0011]无菌条件下，将微滤澄清纯化系统和超滤浓缩纯化系统按照组装要求进行组装。在微滤澄清纯化系统中可安装无菌0.45 μ m或0.65 μ m、完整无损的中空纤维微滤膜,在超滤浓缩纯化系统中可安装无菌100KD或300KD、完整无损的中空纤维超滤膜。
[0012]2系统完整性检测
[0013]压力保持法检测系统的完整性。
[0014]3系统的处理
[0015]3.1清洗及灭菌
[0016]将0.5M NaOH溶液注满系统的进料罐，浸泡处理20min，开启循环泵300rpm，进行系统的清洗及灭菌处理30min。
[0017]3.2水洗及通量检测
[0018]灭囷结束后，排尽系统内的NaOH溶液。将无囷超纯水注?两系统的进料--!，开启循环泵，300rpm循环30min，弃尽系统内的液体，如此反复水洗，直至系统内PH为7.0左右。
[0019]3.3PBS 处理
[0020]水洗结束后，弃尽最后一次超纯水。将0.1M PBS溶液注满进料罐，开启循环泵300rpm循环冲洗20min。
[0021]上述所述技术方案中，步骤3.1和3.2中用到的NaOH溶液起到清洗、灭菌作用，也可选用50%~80%的酒精溶液，或采用蒸汽灭菌的方式进行系统灭菌。
[0022]一种猪伪狂犬病毒纯化方法，该方法通过微滤澄清纯化系统和超滤浓缩纯化系统来实现，该方法包括以下步骤:
[0023]I)将无菌的吐温20按0.5%~10%(v/v)的比例加入猪伪狂犬病毒(PRV)病毒液中，振荡处理；
[0024]2)将步骤I)振荡处理后的病毒液注入微滤澄清纯化系统的进料罐中，开启循环泵，循环一定时间后经0.45或0.65 μ m中空纤维微滤柱微滤，收集透过液，待用；
[0025]3)以l:l(v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，收集透过液，得到第一洗滤液待用；
[0026]4)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入到步骤3)处理完毕的进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，收集透过液，得到第二洗滤液待用；
[0027]5)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入到步骤4)处理完毕的进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，收集透过液，得到第三洗滤液待用；
[0028]6)将上述透过液、第一洗滤液、第二洗滤液、第三洗滤液混合均匀，得到混合液；
[0029]7)将步骤6)得到的混合液注入超滤浓缩纯化系统的进料罐，开启循环泵循环一定时间，经100KD或300KD中空纤维超滤柱进行过滤处理，弃去透过液，收集进料罐中剩余截留液，即为初级浓缩病毒液；
[0030]8)以l:l(v/v)的比例将0.1M PBS注入进料罐中的初级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，弃去透过液，收集进料罐中剩余截留液，即为二级浓缩病毒液；
[0031] 9)以l:l(v/v)的比例将0.1M PBS注入进料罐中的二级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵，循环一定时间，弃去洗滤液，收集进料罐中剩余截留液，即为三级浓缩病毒液；[0032]10)以1:1 (v/v)的比例将0.1M PBS注入进料罐中的三级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵，循环一定时间，弃去洗滤液，收集进料罐中剩余截留液，即为病毒浓缩液成品。
[0033]将上述制备的病毒浓缩液成品保存于_20°C。
[0034]上述猪伪狂犬病毒纯化方法，采用的是二步纯化法，第一步通过较大孔径的澄清纯化滤膜过滤病毒液，除去毒液中的细胞碎片；第二步通过较小孔径的澄清纯化滤膜洗滤第一步的滤过液，达到除去病毒液中的吐温20、小分子蛋白，细胞代谢产线的小分子物质等杂质及实现浓缩病毒等目的。
[0035]上述猪伪狂犬病毒纯化方法中，步骤I)所述的振荡处理时间优选为IOmin ;步骤
I)所述的比例优选为5% ;步骤2)所述的微滤的滤膜孔径优选为0.65 μ m ;步骤7)所述的超滤滤膜孔径优选为300KD ;步骤2、3、4、5、7、8、9、10中所述的开启循环泵循环一定时间的操作条件均优选为400rpm循环30min ;利用该方法制备的病毒浓缩液成品用于制备疫苗；上述所述病毒澄清纯化及浓缩方法，步骤2)中透过液的体积可以根据需要进行调整，优选为透过液体积达到原液的90% ;步骤7)中的浓缩倍数可以根据实际需要进行调整，优选为浓缩10倍以上。 [0036]上述技术方案中，步骤I)所述的猪伪狂犬病毒病毒液是指制备得到的病毒原液，未经稀释处理；步骤I)加入吐温20起到乳化作用，能够有效避免病毒粒子聚集成团，从而提升后续过滤效率。
[0037]所述微滤澄清纯化系统是指GE公司制造的FlexStand中空纤维澄清纯化系统；所述微滤膜可以选自GE公司制造的、型号为CFP-6-D-9A或CFP_4_E_9A Xample微滤柱膜；所述超滤膜可以选自GE公司制造的、型号为UFP-300-C-9A或UFP-100-C-9A的Xample超滤柱膜。
[0038]上述制备的病毒浓缩液成品检测方法如下:
[0039]对纯化浓缩工艺过程中的病毒样品进行病毒滴度及蛋白浓度进行检测，以分析浓缩工艺的有效性。其中病毒滴度的检测方法为:
[0040]以IFA法对各样品的病毒滴度进行检测，纯化有效的判定标准为:二级纯化及浓缩步骤的洗滤液检测不出存活病毒，表明工艺有效；病毒的回收率在80%以上。
[0041]蛋白含量的测定方法为:
[0042]以蛋白浓度测定试剂盒对浓缩病毒液的蛋白残存量进行测定，可溶性蛋白的残存量应低于原液可溶性蛋白的10%,表明工艺有效。
[0043]以上对本发明的
【发明内容】
进行了详细说明。本发明的纯化方法综合采用了微滤澄清纯化法，超滤浓缩纯化法，重复洗滤法等一系列工艺，最大限度的增大了 PRV的回收效率，降低了纯化成本。以本发明制备的伪狂犬病毒病浓缩液生产的伪狂犬病毒疫苗相比于现有生产方式生产的疫苗，具有纯净度高，安全性高，均一性好、免疫效果好等优点，同时，本发明工艺简便、成本较低，具有突出的规模化应用前景。
【具体实施方式】
[0044]实施例所用仪器如下:
[0045]FlexStand中空纤维澄清纯化系统；
[0046]Xample 微滤柱:CFP-6-D_9A (0.65 μ m)，CFP-4-E-9A (0.45 μ m)；[0047]Xample 超滤柱:UFP-300-C_9A (300KD)，UFP-100-C-9A (100KD)；
[0048]上述仪器均购自GE公司。
[0049]实施例中所用试剂如下:
[0050]100L猪伪狂犬病毒病毒液，107 0TCID50/ml,由本公司生产；
[0051]BCA蛋白定量试剂盒，购自康为世纪。
[0052]0.5M NaOHlOOL ；
[0053]无菌0.1M PBS100L ；
[0054]无菌高纯水100L。 [0055]吐温20，分析纯。
[0056]实施例1
[0057]I操作流程
[0058]1.1前处理
[0059]1.1.1系统的组装
[0060]无菌条件下，将澄清纯化系统和浓缩系统按照组装要求进行组装。在澄清系统中可安装无菌0.65 μ m、完整无损的中空纤维微滤膜，在浓缩系统中安装孔径为300KD的无菌中空纤维超滤膜。
[0061]1.1.2系统完整性检测
[0062]压力保持法检测纯化系统的完整性。
[0063]1.1.3系统的处理
[0064]清洗及灭菌:
[0065]将0.5M NaOH溶液注满纯化系统的进料罐，浸泡处理20min，开启循环泵300rpm，进行系统的清洗及灭菌处理30min。
[0066]水洗及通量检测:
[0067]灭囷结束后，排尽系统内的NaOH溶液。将无囷超纯水注?两系统的进料--!，开启循环泵，300rpm循环30min，弃尽系统内的液体，如此反复水洗，直至系统内PH为7.0左右。
[0068]PBS 处理:
[0069]水洗结束后，弃尽最后一次超纯水。将0.1M PBS溶液注满进料罐，开启循环泵300rpm循环冲洗20min。
[0070]1.2病毒的澄清纯化
[0071]1.2.1病毒液的处理
[0072]将5L无菌吐温20加入100L猪伪狂犬病毒(PRV)病毒液中，振荡处理lOmin。
[0073]1.2.2病毒液的澄清
[0074]澄清系统处理完毕后，弃尽系统内的PBS溶液，将振荡处理后的病毒液，注入澄清纯化系统的进料罐中，开启循环泵，400rpm循环30min,经0.65 μ m中空纤维微滤柱进行纯化处理，收集透过液90L，进料罐内存留截留液10L。
[0075]1.2.3截留液的洗滤
[0076]第一次洗滤:
[0077]将IOL无菌的0.1M PBS加入进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵400rpm循环30min，收集透过液10L，记为洗滤液I。[0078]第二次洗滤:
[0079]将IOL无菌的0.1M PBS加入进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵400rpm循环30min,收集透过液10L，记为洗滤液2。
[0080]第三次洗滤:
[0081]将IOL无菌的0.1M PBS加入进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵400rpm循环30min,收集透过液10L，记为洗滤液3。
[0082]1.2.4病毒液的收集
[0083]将上述澄清纯化过程所收集的透过液及三次洗滤液混合均匀，得到混合液120L。
[0084]1.2.5初级浓缩
[0085]浓缩系统处理完毕后，将混合液注入浓缩系统的进料罐，开启循环泵，400rpm循环30min,经300KD中空纤维超滤柱进行纯化处理,弃去透过液,进料罐中剩余截留液10L,记为初级浓缩病毒液。
[0086]1.2.6浓缩液的洗滤
[0087]第一次洗滤:
[0088]将10L0.1M PBS注入进料罐中的初级浓缩液中，重悬，开启循环泵，400rpm循环30min，弃去透过液10L，进料罐中剩余截留液10L，记为二级浓缩病毒液。
[0089]第二次洗滤:
[0090]将10L0.1M PBS注入进料罐中的二级浓缩液，重悬，开启循环泵，400rpm循环30min，弃去洗滤液10L，进料罐中剩余截留液10L，记为三级浓缩病毒液。
[0091]第三次洗滤:
[0092] 将10L0.1M PBS注入进料罐中的三级浓缩液，重悬，开启循环泵，400rpm循环30min，弃去洗滤液10L，进料罐中剩余截留液10L，即为病毒浓缩液成品。
[0093]1.2.7病毒液的收集
[0094]将经过上述处理后的得到的病毒浓缩液成品进行收集，保存于_20°C。
[0095]2有效性检测
[0096]对纯化浓缩工艺过程中的病毒样品进行病毒滴度及蛋白浓度进行检测，以分析浓缩工艺的有效性。其中病毒滴度的检测方法为:
[0097]将浓缩后灭活前的病毒用细胞维持液做10倍系列稀释，取KT1~10_1(110个稀释度接种96孔培养板CEF细胞单层，每个稀释度重复8孔，每孔0.lml，5%C02、37°C培养120小时，观察细胞病变(CPE)，计算TCID5tl，每0.1ml病毒含量107_°TCID5(I，浓缩阶段的洗滤液无效价，病毒回收率接近100%。
[0098]蛋白含量的测定方法为:
[0099]取各样品以BCA蛋白浓度试剂盒进打测定，结果显不，可溶性蛋白残存率为9.5%。
[0100]3疫苗制备
[0101]以上述工艺制备的病毒浓缩液作为原料，进一步制备疫苗，其工艺步骤如下:
[0102]将纯化浓缩的PRV病毒液以0.01M的PBS按照浓缩倍数进行稀释。将稀释后的病毒液与纯化前的病毒液分别以体积比1:1与5%蔗糖脱脂乳稳定剂进行混合并分装冻干，20头份/瓶，分别记为PRV活疫苗1、PRV活疫苗2。
[0103]4疫苗安全检验[0104]用6~18月龄无伪狂犬病病毒中和抗体的绵羊8只，随机分成2组，每组4只，分别大剂量肌肉注射上述工艺制备的PRV灭活疫苗1，PRV灭活疫苗2，5ml/头(14头份)，另一组注射无菌生理盐水，5ml/头。注射后观察有无出现皮肤潮红、呼吸异常、口吐白沫等过敏反应，每日观察并记录绵羊采食、饮水、精神、被毛及注射部位均正常，连续观察14日。
[0105]5疫苗效力检验
[0106]以上述工艺制备的PRV灭活疫苗1，PRV灭活疫苗2，无菌0.1M PBS溶液作为实验材料，具体操作步骤如下:
[0107]将6~18月龄、无伪狂犬病毒中和抗体的绵羊12只，随机分成3组，每组4只，分别肌肉注射以上述工艺制备的PRV灭活疫苗1，PRV灭活疫苗2，无菌0.1M PBS溶液各Iml(0.2头份)。接种后14日，每只绵羊各肌肉注射伪狂犬强毒Iml (含IO3 0LD50),同条件下隔离饲养，连续观察14日，每日记录绵羊攻毒后采食、饮水、精神状况，记录死亡数量。
[0108]试验结果，本发明PRV灭活疫苗I组4只绵羊攻毒后采食、饮水、精神均正常，4只绵羊均健活，保护率为100% ；PRV灭活疫苗2组绵羊攻毒后有I只羊出现食欲下降，精神不振，最后死亡，保护率仅为75% ；PBS溶液对照组4只绵羊均食欲下降，几乎废食，精神萎靡，常靠墙站立或卧地，死亡3只，幸存绵羊体重减轻。
[0109]实施例2
[0110]I)将无菌吐温20按10%(v/v)的比例加入猪伪狂犬病毒(PRV)病毒液中，振荡处理；
[0111]2)将步骤I)振荡处理后的病毒液注入微滤澄清纯化系统的进料罐中，开启循环泵，循环一定时间后经0.45 μ m中空纤维微滤柱过滤处理，收集透过液待用；
[0112]3)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，收集透过液，得到第一洗滤液，4~10°C保存待用；
[0113]4)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，收集透过液，得到第二洗滤液，4~10°C保存待用；
[0114]5)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，收集透过液，得到第三洗滤液，4~10°C保存待用。
[0115]6)将上述透过液、第一洗滤液、第二洗滤液、第三洗滤液混合均匀，得到混合液；
[0116]7)将步骤6)得到的混合液注入超滤浓缩纯化系统的进料罐，开启循环泵循环一定时间，经100KD中空纤维超滤柱进行过滤处理，弃去透过液，收集进料罐中剩余截留液，即为初级浓缩病毒液；
[0117]8)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS注入进料罐中的初级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，弃去透过液，收集进料罐中剩余截留液，即为二级浓缩病毒液；
[0118]9)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS注入进料罐中的二级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵，循环一定时间，弃去洗滤液，收集进料罐中剩余截留液，即为三级浓缩病毒液；
[0119]10)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS注入进料罐中的三级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵，循环一定时间，弃去洗滤液，收集进料罐中剩余截留液，即为病毒浓缩液成品O[0120]实施例3
[0121]I)将无菌吐温20按0.5%(v/v)的比例加入猪伪狂犬病毒(PRV)病毒液中，800rpm振荡处理IOmin ；
[0122]2)将步骤I)振荡处理后的病毒液注入微滤澄清纯化系统的进料罐中，开启循环泵以400rpm的条件循环30min,而后经0.65 μ m中空纤维微滤柱微滤,收集透过液待用；
[0123]3)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵以400rpm的条件循环30min，收集透过液，得到第一洗滤液，4~10°C保存待用；
[0124]4)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵以400rpm的条件循环30min,收集透过液,得到第二洗滤液待用，4~10°C保存；
[0125]5)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵以400rpm的条件循环30min，收集透过液，得到第三洗滤液待用。
[0126]6)将上述透过液、第一洗滤液、第二洗滤液、第三洗滤液混合均匀，得到混合液；
[0127]7)将步骤6)得到的混合液注入超滤浓缩系统的进料罐，开启循环泵以400rpm的条件循环30min,经300KD中空纤维超滤柱进行超滤处理,弃去透过液,收集进料罐中剩余截留液，即为初级浓缩病毒液；
[0128]8)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS注入进料罐中的初级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵以400rpm的条件循环30min,弃去透过液,收集进料罐中剩余截留液，即为二级浓缩病毒液；
[0129]9)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS注入进料罐中的二级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵以400rpm的条件循环30min,弃去洗滤液,收集进料罐中剩余截留液，即为三级浓缩病毒液；
[0130]10)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS注入进料罐中的三级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵以400rpm的条件循环30min,弃去洗滤液,收集进料罐中剩余截留液，即为病毒浓缩液成品。
[0131] 以上对本发明实施例进行了详细说明，但所述内容仅为本发明的较佳实施例，并不用以限制本发明。凡在本发明的申请范围内所做的任何修改、等同替换和改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。
【权利要求】
1.一种猪伪狂犬病毒纯化方法，其特征在于使用微滤澄清纯化系统和超滤浓缩纯化系统，并包括以下步骤: 1)将无菌的吐温20按0.5%~10%(v/v)的比例加入猪伪狂犬病毒(PRV)病毒液中，振荡处理； 2)将步骤I)振荡处理后的病毒液注入微滤澄清纯化系统的进料罐中，开启循环泵，循环一定时间后经0.45或0.65 μ m中空纤维微滤柱微滤,收集透过液，待用； 3)以l:l(v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，收集透过液，得到第一洗滤液待用； 4)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入到步骤3)处理完毕的进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，收集透过液，得到第二洗滤液待用； 5)以1:1 (v/v)的比例将无菌的0.1M PBS缓冲液加入到步骤4)处理完毕的进料罐中的截留液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，收集透过液，得到第三洗滤液待用； 6)将上述透过液、第一洗滤液、第二洗滤液、第三洗滤液混合均匀，得到混合液； 7)将步骤6)得到的混合液注入超滤浓缩纯化系统的进料罐，开启循环泵循环一定时间，经100KD或300KD中空纤维超滤柱进行过滤处理，弃去透过液，收集进料罐中剩余截留液，即为初级浓缩病毒液； 8)以l:l(v/v)的比例将0.1M PBS注入进料罐中的初级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵循环一定时间，弃去透过液，收集进料罐中剩余截留液，即为二级浓缩病毒液； 9)以l:l(v/v)的比例将0.1M PBS注入进料罐中的二级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵，循环一定时间，弃去洗滤液，收集进料罐中剩余截留液，即为三级浓缩病毒液； 10)以1:1 (v/v)的比例将0.1M PBS注入进料罐中的三级浓缩病毒液中，重悬，开启循环泵，循环一定时间，弃去洗滤液，收集进料罐中剩余截留液，即为病毒浓缩液成品。
2.根据权利要求1所述的一种猪伪狂犬病毒纯化方法，其特征在于步骤I)所述的振荡处理时间为IOmin。
3.根据权利要求1所述的一种猪伪狂犬病毒纯化方法，其特征在于步骤I)所述的比例为5% ο
4.根据权利要求1所述的一种猪伪狂犬病毒纯化方法，其特征在于步骤2)所述的微滤的滤膜孔径为0.45或0.65 μ m,较优的为0.65 μ m。
5.根据权利要求1所述的一种猪伪狂犬病毒纯化方法，其特征在于步骤7)所述的超滤滤膜孔径为300KD。
6.根据权利要求1所述的一种猪伪狂犬病毒纯化方法，其特征在于步骤2、3、4、5、7、8、9、10中所述的开启循环泵循环一定时间的操作条件均为400rpm循环30min。
7.根据权利要求1~6所述的一种猪伪狂犬病毒纯化方法，其特征在于利用该方法制备的病毒浓缩液成品用于制备疫苗。
【文档编号】C12N7/02GK103937758SQ201410145991
【公开日】2014年7月23日 申请日期:2014年4月11日 优先权日:2014年4月11日
【发明者】吴全忠, 米娜, 李倬, 丁旭娜, 吕茂杰, 杨保收, 梁武, 李守军 申请人:天津瑞普生物技术股份有限公司